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小半夏加茯苓醇提物对HepG2、BGC823线粒体凋亡途径的影响*

2017-02-10贾亚玲何前松闫文娟陈丽丽罗俊刚

重庆医学 2017年3期
关键词:提物茯苓半夏

贾亚玲,何前松,冯 泳,闫文娟,陈丽丽,罗俊刚

(1.贵州省铜仁市万山区人民医院中医科 554200;2.贵阳中医学院第二附属医院神经内科,贵阳 550002;3.贵阳中医学院药学院,贵阳 550002)

论著·基础研究

小半夏加茯苓醇提物对HepG2、BGC823线粒体凋亡途径的影响*

贾亚玲1,何前松2,冯 泳3△,闫文娟3,陈丽丽3,罗俊刚1

(1.贵州省铜仁市万山区人民医院中医科 554200;2.贵阳中医学院第二附属医院神经内科,贵阳 550002;3.贵阳中医学院药学院,贵阳 550002)

目的 探讨小半夏加茯苓醇提物对人肝癌细胞HepG2和人胃腺癌细胞BGC823增殖抑制作用及线粒体凋亡途径的影响。方法 运用CCK-8法检测HepG2、BGC823的增殖抑制情况,计算生长抑制率及半数抑制浓度;运用流式细胞术和实时荧光定量PCR检测HepG2、BGC823的线粒体跨膜电位和bax、cjun基因的表达情况。结果 小半夏加茯苓醇提物对HepG2、BGC823均有显著的抑制作用(P<0.01),其半数抑制浓度分别为(781.50±13.00)μg/mL和(560.05±10.06)μg/mL;与空白对照组比,试验组HepG2的荧光强度升高(P<0.05),试验组BGC823的荧光强度显著升高(P<0.01);HepG2、BGC823试验组的bax、cjun基因的相对表达量与空白对照组比较,均显著升高(P<0.01)。结论 小半夏加茯苓醇提物诱导HepG2、BGC823凋亡的机制可能与激活线粒体途径有关。

半夏属;茯苓;肝肿瘤;胃肿瘤;小半夏加茯苓醇提物;肝癌细胞HepG2;胃腺癌细胞BGC823;线粒体凋亡途径

肿瘤是在多因素协同作用下发生的一种细胞分化异常,呈过度生长,并以遗传性方式产生子代细胞的新生物。虽然肿瘤的传统治疗手段具有一定的临床疗效,但是肿瘤的耐药性和高复发率及放化疗的不良反应仍是攻克肿瘤的重要障碍。因此,有学者提出中西医联合的肿瘤综合治疗方案。中医学认为,痰湿是肿瘤的致病因素之一。痰湿凝聚不除,久之阻碍气血运行而凝聚成块,形成肿瘤。因此,化痰祛湿法为肿瘤治疗的一种有效治法。小半夏加茯苓汤为中医经典燥湿化痰、降逆止呕的名方,本试验结合现代分子生物检测技术,探讨该复方诱导肿瘤细胞凋亡的线粒体机制,为临床应用该复方提供一定参考。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 药品及试剂 小半夏加茯苓醇提物,50%乙醇,DMEM高糖培养基,胎牛血清,胰蛋白酶,双抗,磷酸盐缓冲液,CCK-8,罗丹明123,TRNzol总RNA提取试剂,PrimeScriptTMRT reagent Kit with gDNA Eraser,SYBRTMPremix Ex Taq Ⅱ(Tli RNaseH Plus)ROX plus,DL2000 DNA标记物、引物。

1.1.2 实验仪器 CO2培养箱(美国热电公司,USA31311),超净工作台(上海博迅实业有限公司医疗设备,SW-CJ-2FD),离心机(湖南湘仪实验室仪器开发有限公司,L600),显微镜(Nicon,TS-100F),细胞计数仪(上海拜力生物科技公司,BIO-RAD),水浴锅(常州普天仪器制造有限公司金坛市晶玻实验仪器厂,LKTC-B1),冰箱(上海上菱百富勤,BCD-219),超低温冰箱(Haier,DW-86L386),酶标仪(BioTek,EIx808IU),流式细胞仪(BD,FACSAria),涡旋振荡仪(海门市其林贝尔仪器制造有限公司,QL-902),分光光度计(Therno scientific,NANODROP 2000),荧光定量PCR仪(Applied Biosystems,ABI7500)。

1.2 实验方法

1.2.1 小半夏加茯苓醇提物的制备 参考前期试验提取流程,取生半夏18 g,茯苓9 g,另将生姜切碎,称取15 g,置于500 mL圆底烧瓶中,加入8倍量的50%乙醇于85 ℃水浴锅中提取,溶剂沸腾开始计时,提取2 h,过滤;残渣再加入8倍量50%乙醇,同条件提取,过滤,合并两次滤液,摇匀,干燥,备用[1]。

1.2.2 细胞培养 人肝癌细胞(HepG2)购自上海细胞库,人胃腺癌细胞(BGC823)购自协和细胞库,采用DMEM高糖培养基(含10%胎牛血清)贴壁培养HepG2、BGC823于含CO2、37 ℃饱和湿度的恒温培养箱内。

1.2.3 肿瘤细胞增殖抑制检测 根据有效浓度范围,设置HepG2的用药浓度分别为900、800、700、600、500 μg/mL,BGC823的用药浓度分别为800、700、600、500、400 μg/mL;取对数生长期的细胞,按照7×104/mL的密度接种于96孔板中;待细胞贴壁后,将不同浓度的醇提物加入96孔板,每组设至少3个平行孔;药物干预24 h后,加入CCK-8;孵育1~4 h后,在酶联免疫监测仪上测定各孔吸光度(A)值,计算抑制率和半数抑制浓度(IC50)。IC50用SPSS16.0统计软件进行计算。计算公式:生长抑制率=(1-A试验组/A对照组)×100%。

1.2.4 肿瘤细胞线粒体跨膜电位检测 将细胞分为空白对照组和试验组,根据IC50值设试验组为终浓度800 μg/mL的醇提物溶液,空白对照组加入与试验组等量的50%乙醇;取对数生长期的细胞接种于6孔板中;待细胞贴壁后,分别加入空白对照组和试验组的药液;药物干预24 h后,加入罗丹明123进行染色,孵育10~30 min后,上流式细胞仪检测,每份样品检测细胞数量1×104,测定门控内相对荧光强度。

1.2.5 肿瘤细胞bax、cjun基因表达检测 将细胞分为空白对照组和试验组,根据IC50值设试验组为终浓度800 μg/mL的醇提物溶液,空白对照组加入与试验组等量的50%乙醇;取对数生长期的细胞接种于6孔板中;待细胞贴壁后,分别加入空白对照组和试验组的药液;药物干预48 h后,参照TRNzol总RNA提取试剂盒说明书和PrimeScriptTMRT reagent Kit with gDNA Eraser逆转录试剂盒说明书提取肿瘤细胞RNA,并将提取的RNA逆转录成cDNA;参照SYBR®Premix Ex TaqTMⅡ(Tli RNaseH Plus),ROX plus说明书,分别用目的基因引物和内参基因引物进行扩增,采用2-△△CT法进行数据的相对定量分析。扩增程序为:95 ℃ 30 s;95 ℃ 5 s,60 ℃ 40 s,45个循环。引物序列见表1。

2 结 果

2.1 小半夏加茯苓醇提物对肿瘤细胞形态的影响 倒置相差显微镜下观察各组细胞的生长状态,发现空白对照组细胞形态饱满,边界清晰,细胞质丰富,胞核呈圆形或椭圆形;小半夏加茯苓醇提物干预细胞后,形态发生改变,细胞外形不规则,边界模糊,并出现很多悬浮的圆形透亮细胞,见图1、2。

表1 引物序列

A:空白对照组;B:试验组。

图1 两组人肝癌细胞HepG2细胞形态(×400)

A:空白对照组;B:试验组。

图2 两组人胃腺癌细胞BGC823细胞形态(×400)

2.2 小半夏加茯苓醇提物对肿瘤细胞的抑制率和IC50值 试验结果表明,不同浓度的小半夏加茯苓醇提物对HepG2、BGC823均有显著的抑制作用(P<0.01);随着醇提物浓度的减小,抑制率逐次降低(P<0.01)。小半夏加茯苓醇提物作用于HepG2、BGC823的IC50分别为(781.50±13.00)μg/mL和(560.05±10.06)μg/mL,两种细胞的IC50差异有统计学意义(P<0.01),见表2、图3。

图3 小半夏加茯苓醇提物对HepG2、BGC823的抑制作用表2 小半夏加茯苓醇提物对肿瘤细胞的抑制作用±s)

醇提物浓度(μg/mL)抑制率(%)HepG2BGC823IC50(μg/mL)HepG2BGC82390068.79±3.09a781.50±13.00a560.05±10.0680050.78±0.33a71.86±0.9170032.54±0.72a57.66±1.2860025.42±1.10a50.81±0.9550017.31±0.91a44.12±0.4340035.31±0.93b

a:P<0.01,与BGC823比较。

表3 小半夏加茯苓醇提物对肿瘤细胞荧光强度、bax、cjun的影响±s)

a:P<0.05,与空白对照组比较。

2.3 小半夏加茯苓醇提物对肿瘤细胞线粒体跨膜电位的影响 结果显示,与空白对照组相比,试验组HepG2的荧光强度升高(P<0.05),试验组BGC823的荧光强度显著升高(P<0.01),见表3。

2.4 小半夏加茯苓醇提物对肿瘤细胞凋亡相关基因的影响 检测发现,与空白对照组相比,HepG2、BGC823试验组bax、cjun基因的相对表达量均显著升高(P<0.01),见表3。

3 讨 论

目前大多数人认为,肿瘤的发生是细胞增殖失控和(或)凋亡受阻的结果。细胞凋亡又称细胞程序性死亡,是指机体为了维持细胞内环境稳定,而由基因控制的一种细胞自主性死亡。它既是机体组织和器官发育的维护者,又是机体防御致病因素危害作用的监护者。近年来,随着细胞和分子生物学的飞速发展,人们日益认识到程序性细胞死亡可直接影响到肿瘤治疗的有效性。线粒体介导的凋亡途径是细胞凋亡的主要途径之一。凋亡信号可通过激活多条上游通路而作用于线粒体,线粒体将凋亡信息整合后,发生形态或功能的改变,导致线粒体膜间隙的促凋亡因子释放,活化半胱天冬酶(Caspase)家族,促使细胞进入不可逆的凋亡程序之中。

本试验检测的指标包括线粒体跨膜电位(MMP)、bax和cjun基因。MMP是由线粒体的内膜与外膜的特点决定,低通透性的内膜依靠质子泵将基质中的质子泵入外室,导致线粒体膜间隙呈现正电荷,基质为负电荷,从而形成外正内负的MMP;MMP降低甚至消失,引起线粒体的呼吸链发生断裂,膜间隙的促凋亡因子释放,从而启动细胞凋亡过程。可以说,MMP的降低是细胞凋亡的早期反应。bax是Bcl-2基因家族中的促凋亡成员,它从线粒体中释放后,会与高同源性的bak发生寡聚化而插入线粒体外膜,引起MMP降低,启动细胞凋亡过程;bax/bak还可通过开放线粒体通透性转运孔使小分子物质大量涌入线粒体内,引起线粒体形态膨胀,甚至撑破外膜,导致促凋亡因子进一步释放[2-4];同时bax还可以与Bcl-2结合,形成异源二聚体,抑制Bcl-2的抗凋亡作用[5]。另有研究发现,凋亡早期存在线粒体从网管状向点状表型的转换,并且bax基因的高表达可以加速这种转换[6]。cjun属于即早反应基因,它能够对细胞内外的各种刺激和DNA损伤做出反应,且参与调控胞内转录因子的生物作用[7];cjun与cfos可形成异源二聚体jun-fos,又称AP-1,AP-1作为转录激活因子,可以通过调控bax而引起线粒体膜通透性的改变,释放线粒体膜间隙促凋亡因子,最终导致细胞凋亡[8]。

小半夏加茯苓汤源自《金匮要略痰饮咳嗽病脉证并治十二》,是一首化痰降逆、和胃止呕的名方。该方以“病痰饮者,当以温药和之”为制方原则,选用辛温性燥之半夏为君,燥湿化痰,和胃降逆;配以辛温之生姜为臣,既增强半夏之功,又制半夏之毒;茯苓淡渗利湿,宁心健脾,使水去脾健则痰饮无以由生,为佐使。三药相合,标本兼顾,燥湿降逆祛已生之痰,健脾祛湿杜生痰之源[9]。现代研究表明,小半夏加茯苓汤及组成该复方的各单味药均有抑制肿瘤增殖的作用[10-12]。

本试验发现,小半夏加茯苓醇提物有抑制HepG2、BGC823增殖,并激活线粒体凋亡途径的作用,其机制可能为小半夏加茯苓醇提物增强了肿瘤细胞中cjun和bax基因的表达,使bax与bak发生寡聚化,导致MMP降低,激活线粒体途径,诱导肿瘤细胞凋亡。通过对比分析两种肿瘤细胞的数据,本试验发现,小半夏加茯苓醇提物对BGC823的抑制效应高于HepG2,与该复方长于调节胃腑升降功能相一致,其作用于BGC823的抑瘤机制有待进一步研究。

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Impacts of small Banxia plus fuling ethanol extract on mitochondrial apoptotic pathway of HepG2 and BGC823*

JiaYaling1,HeQiansong2,FengYong3△,YanWenjuan3,ChenLili3,LuoJungang1

(1.DepartmentofTraditionalChineseMedicine,WanshanDistrictPeople′sHospital,Tongren,Guizhou554200,China;2.DepartmentofNeurology,SecondAffiliatedHospitalofGuiyangCollegeofTraditionalChineseMedicine,Guiyang,Guizhou550002,China;3.CollegeofPharmacy,GuiyangCollegeofTraditionalChineseMedicine,Guiyang,Guizhou550002,China)

Objective To investigate the inhibition effect of small Banxia plus Fuling ethanol extract on proliferation of human liver cancer cells HepG2 and human gastric cancer cells BGC823 and its influence on mitochondrial apoptotic pathway.Methods CCK-8 was used to test the growth inhibition of HepG2 and BGC823.The growth inhibition rate and the half inhibitory concentration(IC50) of HepG2 and BGC823 were calculated;the flow cytometry and real-time fluorescence quantitative PCR were adopted to detect the mitochondrial transmembrane potential and the expression of cjun and bax genes of HepG2 and BGC823.Results HepG2 and BGC823 are significantly inhibited by small Banxia plus fuling ethanol extract (P<0.01),IC50was (781.50±13.00)μg/mL and (560.05±10.06)μg/mL respectively.Compared with the blank control group,the fluorescence intensity of HepG2 in the experimental group was increased (P<0.05),and which of BGC823 was increased more obviously(P<0.01);compared with those of the blank control group,the bax and cjun genes relative expressions in experimental group of HepG2 and BGC823 were significantly increased (P<0.01).Conclusion The mechanism of small Banxia plus Fuling ethanol extract inducing HepG2 and BGC823 apoptosis may be related to activate the mitochondrial pathway.

pinellia;poria cocos;liver neoplasms;stomach neoplasms;small banxia plus fuling ethanol extract;human hepatocellular carcinoma cell HepG2;human gastric cancer cell BGC823;mitochondrial apoptosis pathway

10.3969/j.issn.1671-8348.2017.03.003

国家自然科学基金项目(81160425/H2705);贵阳中医学院研究生教育创新项目(ZYY14034)。 作者简介:贾亚玲(1988-),住院医师,硕士,主要从事方剂配伍规律与作用机制方面研究。△

R289.5

A

1671-8348(2017)03-0296-03

2016-07-11

2016-09-26)

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