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二甲戊乐灵在溪黄草及土壤中的残留分析方法研究

2016-10-16刘凯丽段敏敏吴加伦王德勤张慧晔徐友阳

分析科学学报 2016年3期
关键词:黄草丙酮正己烷

刘凯丽, 段敏敏, 吴加伦*, 王德勤, 张慧晔, 徐友阳

(1.农业部植物病原及昆虫分子生物学重点实验室,浙江大学农药与环境毒理研究所,浙江杭州 310058;2.广州白云山和记黄埔中药有限公司,广东广州 510000)

溪黄草为唇形科植物线纹香茶菜[Rabdosialophanthoides(Ham.exD.Don)Hara]的干燥全草[1],别名山熊胆、风血草等,它具有清热利湿、退黄、凉血散瘀之功,用于湿热黄疸、跌打瘀肿[2],对肝癌细胞、肺癌细胞、胃癌细胞也有一定的抑制作用[3 - 5]。但溪黄草在种植过程中经常受到杂草的危害,而除草剂的使用可以大大降低除草成本,且能有效提高产量,因此,农药残留量的检测对中草药的安全生产十分重要。

二甲戊乐灵(Pendimethalin)具有毒性低,酸碱中稳定,杀草谱广的特点[6],可有效防除田间多种杂草,尤其对禾本科杂草有较好的防除效果。其检测方法有多种,如李永新等[7]用高效液相色谱(HPLC)测定水中的二甲戊乐灵;杨挺等[8]用气相色谱-电子捕获检测法(GC-ECD)检测豆类蔬菜中二甲戊乐灵的残留;Esrtuk等[9]建立了测定生菜中二甲戊乐灵等多残留的液相色谱-串联质谱(LC-MS/MS)方法。但尚未见二甲戊乐灵在溪黄草中的残留分析方法的报道。本文建立了一种简便、高效检测溪黄草及土壤中二甲戊乐灵残留的GC-ECD分析方法,该方法精确度和准确度均符合残留分析的要求。

1 实验部分

1.1 主要仪器与试剂

Agilent-7890A型气相色谱仪(美国,Agilent公司),带63Ni-μECD检测器;KQ5200DE型数控超声波清洗器(昆山市超声仪器有限公司);UITRA-TURRAX型匀浆机(德国,IKA公司);DD01型中药粉碎机(浙江温岭市大德中药机械有限公司);Heidolph Laborota 4010 digital旋转蒸发仪(德国,Heidolph集团)。

二甲戊乐灵(Pendimethalin)标准品,纯度为98.4%,购于迪马科技有限公司。助滤剂Celite545(硅藻土载体);活性炭(分析纯,浓盐酸中加热煮沸1 h,用蒸馏水洗至中性,烘干后在600 ℃灼烧2 h)。中性氧化铝(粒径75~150 μm),弗罗里硅土(粒径150~250 μm)。中性氧化铝、弗罗里硅土、无水Na2SO4需600 ℃灼烧4 h,用前130 ℃烘2 h。中性氧化铝、弗罗里硅土用前加入3%的水脱活;正己烷(色谱纯),丙酮、正己烷、苯、乙腈均经过全玻璃蒸馏装置重蒸(分析纯)。

溪黄草及土壤样品采自广东清远溪黄草GAP基地(未施用过二甲戊乐灵),土壤用采样器取试验基地0~10 cm的土层,磨碎过20目筛,备用。

1.2 样品制备

1.2.1土壤样品制备称取过20目筛的土壤样品20.0 g,置于250 mL的带螺纹盖样品瓶中,准确加入乙腈80 mL,旋紧螺纹盖,超声提取30 min,过滤,准确量取滤液40 mL,经无水Na2SO4脱水后,减压浓缩近干,氮吹仪吹干,正己烷定容至4 mL,待测。

1.2.2溪黄草样品制备称取溪黄草鲜样5.0 g(精确至0.01 g),置于250 mL的带螺纹盖样品瓶中,准确加入60 mL丙酮∶正己烷=1∶1(V/V),高速匀浆1 min,加入1 g助滤剂,超声提取30 min,提取液经布氏漏斗过滤,30 mL提取液洗涤残渣,合并滤液,转入250 mL平底烧瓶中,经旋转蒸发仪浓缩至近干,氮吹仪吹干,待净化。

层析柱(从下至上依次为2 cm无水Na2SO4,0.15 g活性炭、5 g中性氧化铝和2 g弗罗里硅土混合物,2 cm无水Na2SO4)均匀敲实,淋洗液为正己烷∶苯=4∶1(V/V)。先用30 mL正己烷预淋洗,弃去淋出液,将上述样品转入柱中,用80 mL淋洗液洗脱,收集洗脱液于250 mL平底烧瓶中,经旋转蒸发仪浓缩近干,氮吹仪吹干,正己烷定容至4 mL,待测。

1.3 色谱条件

色谱柱:DB -5柱(30 m×0.32 mm×0.25 μm);进样口温度:250 ℃;检测器温度:300 ℃;程序升温:起始温度为100 ℃,以20 ℃/min升至220 ℃,保持10 min,以30 ℃/min升至280 ℃,保持5 min;不分流进样;柱流速:1 mL/min;尾吹:30.0 mL/min;进样体积:1 μL。

2 结果与讨论

2.1 二甲戊乐灵提取溶剂的选择

土壤样品用丙酮或乙腈提取,两者回收率均能达到90%以上,但丙酮提取,进样后杂质峰较多,而乙腈提取,杂质峰较少,故土壤样品采用乙腈提取。溪黄草鲜样分别采用正己烷、丙酮、乙腈和体积比为1∶1的丙酮∶正己烷提取,正己烷回收率低,仅为15%左右;丙酮提取色素太重,层析柱净化后杂质仍很多;乙腈提取有干扰峰;而用丙酮∶正己烷=1∶1(V/V)提取,无干扰峰,且回收率可达85%以上。

2.2 溪黄草中二甲戊乐灵的净化

李闯等[10]采用中性氧化铝和活性炭净化,研究了乙氧氟草醚、二甲戊乐灵和乙草胺在大蒜植株和土壤中的残留分析方法。Engebretson等[11]采用固相萃取(SPE)净化,建立了二甲戊乐灵在水果、蔬菜、坚果和薄荷中的残留分析方法。本实验对溪黄草的净化手段和洗脱溶剂选取了几种方法,并进行了比较,结果如表1。

表1 4种净化手段和2种洗脱液的净化效果比较

最终选择0.15 g活性炭、5 g中性氧化铝、2 g弗罗里硅土层析柱净化,正己烷∶苯(8∶2,V/V)80 mL洗脱的方法,其他净化方法回收率虽然普遍高于本方法,但有些杂质会对目标峰产生干扰,同时浓缩定容后色素含量高,进样后会严重影响色谱柱柱效。

2.3 检测器的选择

目前,二甲戊乐灵的检测方法有多种,普遍采用气相色谱法或高效液相色谱法。气相色谱法当前广泛采用电子捕获检测器(ECD)。林爱军等[12]等采用气相色谱-氢火焰离子化检测器(FID)测定菘蓝中二甲戊乐灵含量,但ECD检测器灵敏度高,稳定性好,故本方法采用气相色谱法,ECD检测器检测。

2.4 标准曲线

准确称取二甲戊乐灵标准品0.1016 g,用正己烷配制成1 000 mg/L的标准储备液,进而再稀释成质量浓度分别为2、1、0.5、0.2、0.05和0.02 mg/L的系列标准工作溶液,由低浓度向高浓度进行检测,平行测定6次。以标准溶液质量浓度X(mg/L)为横坐标,峰面积Y为纵坐标,建立线性回归方程。线性回归方程为:Y=36295X-425,相关系数R2为0.9998,二甲戊乐灵在质量浓度为0.01~2 mg/L之间时具有良好的线性关系。

2.5 方法的准确度和精密度

选取适量土壤及溪黄草空白样品,分别进行二甲戊乐灵的添加回收率试验。分别称取土壤样品20.0 g和溪黄草样品5.0 g,土壤样品的添加水平分别为1.0、0.1、0.01 mg/kg,溪黄草样品的添加水平分别为1.0、0.5、0.01 mg/kg。分别按1.2和1.3的方法进行样品处理和仪器分析,测定二甲戊乐灵的添加回收率和相对标准偏差(RSD),每个添加水平重复3次,结果见表2。

表2 二甲戊乐灵在土壤及溪黄草中添加回收率(n=3)

结果表明,土壤的回收率在89.92%~101.34%之间,相对标准偏差(RSD)为4.67%~4.80%;溪黄草的回收率在88.53%~90.45%之间,相对标准偏差(RSD)为1.33%~2.76%。分别以3倍和10倍信噪比(S/N)确定得二甲戊乐灵的最小检出量(LOD)为0.1 ng, 土壤和溪黄草中最低检测浓度(LOQ)均为0.01 mg/kg。

3 结论

中草药的安全问题近年来备受重视,二甲戊乐灵作为世界上销售额最大的选择性除草剂,其残留检测的需求极为迫切。本文建立的溪黄草和土壤中二甲戊乐灵残留的分析方法,操作简单,分析速度快,定性定量准确,灵敏度高,稳定性好,同时可为制定二甲戊乐灵(二硝基苯胺类)在成分更加复杂的中草药中的检测方法标准提供一定的参考。

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