转cry1Ab13基因玉米新种质的创制

陈沼汀， 董昭旭， 刘　双， 孙国旭， 李　晖， 魏晓禹， 孙　苏， 关淑艳

(吉林农业大学 生命科学学院， 吉林 长春 130118)



转cry1Ab13基因玉米新种质的创制

陈沼汀， 董昭旭， 刘双， 孙国旭， 李晖， 魏晓禹， 孙苏， 关淑艳

(吉林农业大学 生命科学学院， 吉林 长春 130118)

摘要：【目的】构建包含抗鳞翅目害虫基因cry1Ab13的重组植物表达载体，并利用其创制对玉米螟Ostrinia furnacalis具有优良抗性的转基因玉米Zea may L.新种质。【方法】利用同源重组法将cry1Ab13基因连接到表达载体pCAMBIA3300-Bar上，获得以抗除草剂Bar基因为筛选标记的植物表达载体pCAMBIA3300-cry1Ab13-Bar。通过农杆菌介导法转化玉米自交系H99幼胚，对再生植株进行逐代除草剂筛选、PCR检测及T2代植株的Southern blotting检测、实时荧光定量 PCR检测，并对转基因植株进行田间及室内抗虫性鉴定。【结果】构建了cry1Ab13基因的植物表达载体，转化玉米获得3株高抗玉米螟和1株抗玉米螟的T2代转基因植株。Southern blotting证明cry1Ab13基因已经整合到玉米基因组中，实时荧光定量PCR结果表明cry1Ab13基因已经在玉米植株内表达。抗虫性鉴定结果表明，与对照相比转基因植株对玉米螟的抗性显著提高。【结论】将cry1Ab13基因导入玉米并成功表达，显著提高了转基因玉米对玉米螟的抗性，为抗虫玉米新种质的创制奠定了基础。

关键词：抗虫性； cry1Ab13基因； 转基因玉米； 玉米螟

玉米ZeamayL.是我国重要的粮食作物，在粮食、饲料、工业、能源等方面都有着重要的应用[1]。据统计，到2020年我国将实现粮食增产500亿kg,其中玉米增产占53%[2]。提高玉米产量对于我国粮食安全及经济发展具有重要战略意义。

亚洲玉米螟Ostriniafurnacalis是鳞翅目螟蛾科昆虫，是影响我国玉米生产的主要害虫。玉米螟咬食玉米茎、叶、穗等，对玉米的产量及品质产生直接影响，其危害贯穿玉米生产的各个阶段，造成玉米减产20%～30%[3]。转Bt基因的玉米，通过表达cry1Ab、cry1Ac、cry1Ie等杀虫晶体蛋白，从而产生对玉米螟等害虫的抗性[4-5]。1990年科学家首次利用转基因技术获得转Bt基因的玉米植株[6-7]，近年来我国在抗虫转基因玉米的研究方面也取得了诸多成果[8-9]。cry1Ab是抗虫转基因玉米研发过程中的重要基因，是应用得最多且应用最成熟的抗虫基因。据ISAAA 2016年统计数据显示，世界各国已批准允许作为食物及饲料的抗虫转基因玉米有115个，其中有52个是含有cry1Ab基因的转基因玉米；BT11、BT176、MON810等转cry1Ab基因玉米自交系作为第1批抗虫转基因玉米材料在抗虫转基因玉米育种上具有广泛的应用并取得了显著的效果；近年来，有关转基因玉米食用安全性评价的研究报道不断出现，众多研究一致表明，其食用安全性及营养特性与非转基因玉米相比无显著差异[10-12]。因此，利用cry1Ab基因进行抗虫转基因玉米的研发在经验及理论上具有独特的优势，为加快我国抗虫转基因玉米的研发进程，有必要深入研究克隆得到的不同种cry1Ab基因。cry1Ab13基因是由中国农业科学院植物保护研究所病虫害生物学国家重点实验室从苏云金芽孢杆菌Bacillusthuringiensis(Bt)BtC005中克隆得到的抗虫基因，其编码的杀虫晶体蛋白对鳞翅目昆虫具有高效杀虫活性[13]。本研究利用分子生物学技术将cry1Ab13基因连接到含有Bar基因的植物表达载体pCAMBIA3300上，并利用农杆菌介导法将其导入玉米自交系H99中，通过除草剂筛选、PCR检测及抗虫性鉴定，以获得抗玉米螟的转基因玉米植株，为抗虫转基因玉米品种的种质创制提供材料。

1材料与方法

1.1供试材料与试剂

含pUC57-cry1Ab13质粒菌株及植物表达载体pCAMBIA3300-Bar由吉林省农业科学院提供。基因受体玉米自交系H99幼胚、大肠埃希菌Escherichiacoli菌株DH5α、农杆菌Agrobacterium菌株EHA105均由吉林农业大学植物生物技术中心提供。亚洲玉米螟幼虫由吉林农业大学农业综合技术现代化研究所提供。构建表达载体所用ClonExpress MultiS One Step Cloning Kit试剂盒购自Vazyme公司。玉米基因组提取试剂盒购自康为世纪公司。试验所用培养基：LB、YEP、诱导、侵染、共培养、筛选、分化和生根培养基均参照关淑艳等[14]方法。

1.2重组植物表达载体的构建

提取pUC57-cry1Ab13质粒及pCAMBIA3300-Bar质粒，以CaMV35S启动子下游BamH I识别位点作为cry1Ab13基因插入位点，根据ClonExpress MultiS One Step Cloning Kit所提供的Clon Express快速克隆技术要求对载体及目的片段进行分析，设计特异性引物 (表1)。以pUC57-cry1Ab13质粒为模板PCR扩增cry1Ab13基因，回收目的基因片段(1 971 bp)和BamH I酶切pCAMBIA3300-Bar质粒所得的线性化载体，根据ClonExpress MultiS One Step Cloning Kit说明书进行操作，同源重组反应得到重组植物表达载体pCAMBIA3300-CaMV35S-cry1Ab13-Nos-CaMV35S-Bar-Nos(图1)。

1.3农杆菌介导的玉米幼胚的遗传转化

玉米自交系H99自交授粉11 d后挑取幼胚用作工程菌侵染宿主,玉米幼胚挑取见郭新梅等[15]的方法。农杆菌介导玉米幼胚的遗传转化及转化后玉米组织培养再生植株，参见刘强等[16]的方法。

表1引物信息1)

Tab. 1Primer information

目的片段名称上游引物(5'-3')下游引物(5'-3')扩增序列/bpcry1Ab13*AGAACACGGGGGACTCTAGATCTA-GACCC-GGGCCTATGATCGGGGAAATTCGAGCTCTTAT-CAAAGTTCATCCTT1971cry1Ab13**TTTGGAGAGAGTGTGGGGTGATCCCTCGATACCCTGAGC155CaMV35STAGAGGACCTAACAGAACCCGTGTTCTCTCCAAATG500BarTCAAATCTCGGTGACGGGCATGAGCCCAGAACGACGC552ActinATCTTGACTGAGCGTGGTTATTCCGCTGGTCCTGGCTGTCTCC75

1)*、**分别表示该引物用于cry1Ab13基因的PCR扩增和荧光定量PCR检测；划线处为BamH I酶切位点及同源臂。

图1　重组植物表达载体T-DNA区结构图

1.4转基因植株的分子检测

1.4.1转基因玉米植株的PCR检测对6叶期玉米叶片涂抹3倍正常工作浓度草胺膦溶液逐代进行抗除草剂转基因植株筛选，提取对草胺膦表现抗性的植株基因组DNA，方法见康为世纪公司植物基因组DNA提取试剂盒说明书。以玉米转基因植株基因组DNA为模板，分别以非转基因植株基因组DNA和重组植物表达载体质粒为对照(CK)和阳性对照，利用表1所示特异性引物对cry1Ab13基因、CaMV35S启动子、Bar基因分别进行扩增。PCR程序为94 ℃预变性5 min；94 ℃变性57 s，退火温度分别为56 ℃、 50 ℃、 55 ℃，反应57 s，72 ℃延伸70 s，30个循环；72 ℃后延伸10 min；经PCR检测呈阳性的转基因植株进行套袋自交，以同样的方法进行逐代筛选。

1.4.2转基因玉米植株的Southern blotting检测利用CTAB法大量提取T2代PCR检测为阳性和非转基因植株5～6叶期心叶基因组，利用HindⅢ对基因组DNA进行充分单酶切过夜，扩增cry1Ab13基因并纯化目的片段用于制备杂交探针，利用随机引物法根据Roche公司的DIG High Prime DNA Labeling and Detection Starter Kit I说明书进行探针标记，用10 g·L-1的琼脂糖凝胶对基因组酶切片段进行分离，转膜、固定、杂交等具体操作步骤及所用试剂配制参照文献[17]。

1.4.3转基因玉米植株的实时荧光定量PCR检测以非转基因植株为对照，分别提取非转基因植株和Southern杂交检测为阳性的T2转基因植株6叶期心叶总RNA，并反转录成cDNA作为PCR扩增模板，以引物(表1)扩增cry1Ab13，以肌动蛋白Actin基因(GenBank登录号：NM_001252731.2)作为内参基因同时进行PCR扩增。扩增条件为：95 ℃预变性3 min；95 ℃变性20 s，56 ℃反应30 s，共40次循环。利用SYBR Green染料标记的实时荧光定量PCR对来自不同转化事件的转基因植株cry1Ab13基因的相对表达量进行分析(SYBR Premix Ex TaqTM试剂盒购自TaKaRa公司)。每个样本设置3次生物学重复，并进行3次技术重复。

1.5转基因玉米植株的抗虫性鉴定

1.5.1转基因植株的田间抗虫性鉴定将T2代转基因种子与H99自交系种子(对照)播种于大田，并对转基因群体材料进行筛选，选取筛选到的阳性植株进行接虫试验。于植株6～8叶期时，将初孵玉米螟幼虫于清晨湿度较高时接于玉米心叶中，每株植株接虫30头，14 d后调查食叶级别，抗虫性评价标准参照文献[18]，1～3 级：虫孔针刺状；4～6 级：虫孔火柴头大小；7～9 级：虫孔大于火柴头。抗性级别分类: 1.00～2.09 级(高抗)，2.10～ 4.09级(抗虫)，4.10～6.09级(中抗)，6.10～8.09级(感虫)，8.10～9.00级(高感)。

1.5.2转基因植株的苗期室内抗虫性鉴定将经Southern检测阳性的植株收获的转基因种子与非转基因植株种子(对照)按株系分别种于塑料盆内，每盆15粒，经除草剂筛选及PCR检测后去除阴性及多余植株，每盆保留5株转基因阳性植株。待植株长至5～6叶期时进行接虫，每株植株接25头初孵玉米螟幼虫于心叶中，置于人工气候室培养，接虫14 d后调查玉米虫害级别，逐株调查，以5株的均值作为该株系的抗虫级别，抗虫性鉴定标准同“1.5.1”。

1.5.3转基因植株籽粒及苞叶抗虫性鉴定取Southern blotting检测阳性的转基因玉米授粉后13 d的籽粒和最内层苞叶分别饲喂玉米螟幼虫，以非转基因玉米材料作为对照。将等量的籽粒和苞叶分别置于培养皿内，每个培养皿内接10头初孵玉米螟幼虫，置于人工气候室培养。每株设3次重复，每天检查玉米螟取食和存活情况，及时更换同1株的籽粒及苞叶，分别在第4、 8、 12 天统计玉米螟死亡率。

2结果与分析

2.1重组植物表达载体的鉴定

提取重组表达载体质粒，利用cry1Ab13基因特异性引物进行目的基因扩增，得到特异性扩增产物，大小与目的基因cry1Ab13(1 971bp)大小一致(图2)。重组质粒经BamHⅠ单酶切，可得到2个大小不等片段，大片段长度与线性化pCAMBIA3300-Bar长度一致，小片段与cry1Ab13基因大小一致。进一步对重组质粒中的插入片段进行测序，测序结果与目的基因cry1Ab13相似性达100%。综上可以证明cry1Ab13基因已经成功连接到pCAMBIA3300-Bar插入位点处，表达载体pCAMBIA3300-cry1Ab13-Bar构建成功。

2.2农杆菌介导的玉米转化植株的获得

利用农杆菌介导法将pCAMBIA3300-cry1Ab13-Bar导入玉米幼胚，经过筛选培养、分化和生根共获得50株再生苗，将50株三叶期再生幼苗室内移栽到土壤，共有30株幼苗成活。

M：DNA marker DL 2000；P：阳性对照；N：阴性对照；1～6：重组质粒。

2.3转基因植株的分子鉴定

2.3.1转基因植株的PCR检测结果提取抗除草剂转基因植株基因组DNA，分别对cry1Ab13基因、CaMV35S启动子及Bar基因进行特异性PCR扩增，扩增产物进行10 g·L-1的琼脂糖凝胶检测，筛选具有以上3种基因条带的T1代和T2代转基因植株如图3、4所示，筛选到的转基因阳性植株按株系逐代编号，结果见表2。

M：DNA marker DL 2000；P：阳性对照；N：阴性对照；CK：非转基因植株；1～5：转基因植株;A、B、C分别为对cry1Ab13基因、CaMV35S启动子及Bar基因的扩增结果。

图3部分T1代转基因玉米PCR检测结果

Fig.3PCR detection of some T1generation transgenic maize

M：DNA marker DL 2000；P：阳性对照；N：阴性对照；CK：非转基因植株；1～5：转基因植株;A、B、C分别为对cry1Ab13基因、CaMV35S启动子及Bar基因的扩增结果。

图4部分T2代转基因玉米PCR检测结果

Fig.4PCR detection of some T2generation transgenic maize

2.3.2转基因植株的Southern blotting选取T2代植株PCR检测结果为阳性的植株进行Southern blotting检测，以cry1Ab13基因扩增片段作为阳性对照，非转基因植株DNA作为阴性对照，20株PCR阳性植株中有5株经Southern杂交出现明显杂交信号(图5)，其中T2-2-3-1为3拷贝，其余均为单拷贝，非转基因植株无明显杂交信号出现，并且不同植株的杂交条带位置存在差异。证明外源基因cry1Ab13已整合到了玉米基因组中，并且随机整合到了玉米基因组的不同位置。

表2PCR检测阳性玉米植株

Tab.2PCR-positive maize plants

世代来源植株数编号T08T0-1～T0-8T1T0-11T1-1-1T0-24T1-2-1～T1-2-4T0-31T1-3-1T0-42T1-4-1～T1-4-2T0-51T1-5-1T0-81T1-8-1T2T1-1-12T2-1-1-1～T2-1-1-2T1-2-11T2-2-1-1T1-2-35T2-2-3-1～T2-2-3-5T1-2-43T2-2-4-1～T2-2-4-3T1-3-12T2-3-1-1～T2-3-1-2T1-4-14T2-4-1-1～T2-4-1-4T1-5-13T2-5-1-1～T2-5-1-3

M：λHind Ⅲ DNA marker；P：阳性对照；CK：非转基因植株；1～5分别为转基因植株T2-1-1-2、T2-2-3-1、T2-3-1-2、T2-4-2-1和T2-5-1-3。

图5T2代转基因玉米cry1Ab13基因的Southern杂交检测

Fig.5Southern blotting detection of cry1Ab13 gene in T2transgenic maize

2.3.3转基因植株的实时荧光定量PCR检测实时荧光定量PCR结果显示,溶解曲线均有单峰出现，表明反应特异性较好，无引物二聚体及非特异性产物的干扰；扩增曲线光滑平稳，荧光吸收图谱S型曲线性状完好，符合定量检测要求。各株内参基因Ct值在19～20之间，目的基因Ct值在25～34之间，不同植株cry1Ab13基因的Ct值具有明显的差异，且植株T2-2-3-1内参基因Ct=19.34，cry1Ab13基因在设定的40个循环内未检测到Ct值，说明外源基因在不同转基因事件中表达量具有明显差异，转基因植株T2-2-3-1中cry1Ab13基因未表达。各植株中cry1Ab13基因相对表达量见图6。

图6转基因玉米中cry1Ab13基因相对表达量

Fig.6Relative expression of cry1Ab13 gene in transgenic maize

2.4转基因玉米植株抗虫性鉴定

2.4.1田间抗虫性试验T2代转基因植株的田间接虫试验表明，PCR阳性T2代转基因植株对亚洲玉米螟具有较强的抗性(图7A)，接虫14 d后植株生长良好，心叶大多表现为未受虫害或仅有少量针状虫孔，而非转基因的对照组则受虫害严重(图7B)，心叶及外部叶片均有大量较大虫孔，对玉米螟表现为高度敏感性，但也有个别PCR阳性植株抗虫性较差,与对照组无显著差异。

A:转基因植株； B：非转基因植株。

Fig.7Evaluation of resistance of transgenic maize plants to Ostrinia furnacalis in the field

2.4.2室内接虫试验为更准确地鉴定转基因植株的抗虫性，将Southern杂交阳性植株自交后代于室内按株系(编号L1～L5)种植，接虫试验结果表明，各Southern blotting阳性植株后代株系对玉米螟抗性表现不同，L1、L5植株的心叶有少量针刺状(直径≤1 mm)虫孔；L4的虫孔为针刺状，数量稍多于L1与L5；L3的心叶上有大量的针刺状虫孔；L2的心叶上有少量直径大于2 mm的虫孔；对照株系心叶上的虫孔稍多于L2，虫孔的直径也大于2 mm。逐株统计各株系的抗虫级别，对相同接虫处理条件下的转基因株系与对照株系抗虫性差异显著性进行t检验，检验结果(表3)与试验观测结果相符，L1、L4、L5达到高抗水平，L3达到3级抗性水平，转化事件T2-2-3-1后代株系L2对玉米螟抗性较差，与对照组无显著差异(P>0.05)。

表3室内转基因玉米株系苗期对玉米螟的抗性级别

Tab.3The resistant levels of transgenic maize lines to Ostrinia furnacalis at seeding stage indoor

转化事件株系号食叶级别1)抗性级别T2-1-1-2L11.40±0.21**高抗T2-2-3-1L27.02±2.17易感T2-3-1-2L33.62±0.42**抗T2-4-2-1L42.22±0.19**高抗T2-5-1-3L51.46±0.36**高抗未转化CK7.62±0.42易感

2.4.3灌浆期苞叶及籽粒抗虫性鉴定分别在饲喂转基因玉米籽粒及苞叶4、 8、 12 d后统计3次重复试验各组玉米螟死亡率，并对各组结果与非转基因的对照组结果进行独立样本t检验，结果见图8。除植株T2-2-3-1的籽粒及苞叶对玉米螟的抗性较差，与对照组无显著差异外，转基因植株对玉米螟的抗性明显高于非转基因对照株。转cry1Ab13基因的试验组玉米螟幼虫生长缓慢，随饲喂时间增加死亡率不断提高，喂食8 d后试验组玉米螟死亡率达到80%左右，而非转基因的对照组玉米螟幼虫生长速度快，死亡率低，饲喂8 d后死亡率只有10%左右。不同转基因植株对玉米螟的抗性表现也不同，各转基因植株对玉米螟的相对抗性水平与实时荧光定量PCR检测到cry1Ab13基因相对表达量基本一致。

图8饲喂转基因玉米籽粒及苞叶对玉米螟死亡率的影响

Fig.8Effects of feeding transgenic corn kernels or bracts of ears on the mortality rate of Ostrinia furnacalis

3讨论与结论

1995年Armstrong等[19]的研究证明cry1Ab毒蛋白的结构赋予其对小菜蛾Plutellaxylostella、烟草天蛾Manducasexta等较强的杀虫活性。随后国内外许多研究人员将cry1Ab基因导入玉米，并证明表达cry1Ab蛋白的转基因玉米对亚洲玉米螟O.furnacalis及欧洲玉米螟O.nubilalis都有很好的田间抗性，能高效控制心叶期及穗期玉米螟的危害。本研究在檀建新等[13]的研究基础上，利用同源重组的方法将抗虫基因cry1Ab13连接到含有抗除草剂草胺膦的Bar基因的植物表达载体上，遗传转化玉米得到5株稳定遗传至T2代的转基因植株，cry1Ab13基因在玉米中的表达赋予转基因植株抗玉米螟的特性。外源基因稳定高效的表达是转基因工作的重要目标，王忠华等[20]的研究表明，cry1Ab基因水稻转化植株经 4～5次自交后，目的基因仍能稳定遗传且呈单位点显性方式遗传。本研究通过Southern杂交、实时荧光定量 PCR技术对cry1Ab13基因在植株中的整合及表达情况进行分析。试验结果表明除转基因事件T2-2-3-1外其余各转基因植株中cry1Ab13均为单拷贝形式整合在基因组中，且成功转录表达，但各单株间相对表达水平存在一定的差异。而转基因事件T2-2-3-1中cry1Ab13基因以3拷贝形式存在，且表达受到抑制，转录水平与非转基因植株无显著差异，分析原因可能是由于cry1Ab13基因的多拷贝整合或位置效应引起的转录水平的基因沉默[21]。岳同卿等[22]的抗虫转基因玉米的研究结果显示，不同转化事件的抗虫效果存在一定的差异，本研究得出同样的结论。Day等[23]指出外源基因在基因组内的整合位置不同可以导致基因表达水平不同，为解释上述现象提供了理论参考。转基因植株田间及室内对玉米螟抗性评价结果表明，转入cry1Ab13基因能够显著提高植株对玉米螟的抗性，本试验中转cry1Ab13基因玉米的杀虫效果与cry1Ab13基因的表达水平基本一致，与王培等[24]研究结果相符，但也有研究表明转基因作物Bt蛋白表达量与杀虫效果并不一致[25-26]。

本研究构建了植物表达载体pCAMBIA3300-cry1Ab13-Bar，并通过农杆菌介导法将其导入玉米自交系H99，获得了4株抗玉米螟及抗除草剂的T2代转基因植株。下一步将通过优化植物重组表达载体中的表达调控元件来提高转基因植株的抗虫效果，并继续进行转基因株系的自交扩繁及严格的筛选鉴定，为抗虫玉米新品种的研发提供材料。

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【责任编辑庄延，李晓卉】

收稿日期：2016- 02- 15优先出版时间：2016- 07- 05

作者简介：陈沼汀(1990—)，女，硕士研究生，E-mail:562770926@qq.com; 通信作者：关淑艳(1971—)，女，教授，博士，E-mail:458194095@qq.com

基金项目：吉林省省级粮食生产发展专项(2015001)；吉林农业大学科研启动基金(201242)

中图分类号：S433.4

文献标志码：A

文章编号：1001- 411X(2016)05- 0031- 07

Creation of new transgenic maize germplasm harboring cry1Ab13 gene

CHEN Zhaoting, DONG Zhaoxu, LIU Shuang, SUN Guoxu, LI Hui, WEI Xiaoyu, SUN Su, GUAN Shuyan

(College of Life Science， Jilin Agricultural University， Changchun 130118， China)

Abstract：【Objective】 To construct a plant expression vector including a lepidopteran-resistant gene cry1Ab13 and use it to create a new transgenic maize germplasm with high resistance to Ostrinia furnacalis.【Method】The cry1Ab13 gene was inserted into expression plasmid pCAMBIA3300-Bar by homologous recombination method，and the plant expression vector pCAMBIA3300-cry1Ab13-Bar with Bar gene as a selection marker was obtained. Following Agrobacterium mediated transformation of the immature embryo of maize inbred line H99, the regenerated plants were detected by PCR and herbicide-resistance selection for each generation. T2 generation plants were also detected by Southern blotting and real-time quantitative PCR. The resistance of transgenic plants to O. furnacalis was tested indoor and in the fields.【Result】A plant expression vector containing the cry1Ab13 gene was successfully constructed and three T2transgenic maize with high resistance and one T2 transgenic maize with resistance to O. furnacalis were obtained. The cry1Ab13 gene was integrated into maize genome as confirmed by Southern blotting, and it was expressed in maize as shown by real-time quantitative PCR.The resistance of transgenic plants to O. furnacalis was improved significantly compared to non-transgenic control.【Conclusion】We introduced the cry1Ab13 gene into maize and its expression significantly improved the resistance of maize to O. furnacalis, which will promote the development of new insect-resistant maize germplasm.

Key words：insect resistance; cry1Ab13 gene; transgenic maize; Ostrinia furnacalis

优先出版网址：http://www.cnki.net/kcms/detail/44.1110.s.20160705.1200.044.html

陈沼汀， 董昭旭， 刘双，等.转cry1Ab13基因玉米新种质的创制[J].华南农业大学学报，2016,37(5):31- 37.