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LncRNA与肾癌关系的研究进展

2016-04-04730030兰州大学第二医院泌尿外科研究所甘肃省泌尿系疾病研究重点实验室甘肃省泌尿系统疾病临床医学中心

实用癌症杂志 2016年4期

730030 兰州大学第二医院泌尿外科研究所,甘肃省泌尿系疾病研究重点实验室,甘肃省泌尿系统疾病临床医学中心



·综述与讲座·

LncRNA与肾癌关系的研究进展

田跃军综述洪梅陶燕郭琦王志平审校

730030 兰州大学第二医院泌尿外科研究所,甘肃省泌尿系疾病研究重点实验室,甘肃省泌尿系统疾病临床医学中心

关键词:肾细胞癌;lncRNA;药物靶点

lncRNA是一组内源性,长度大于200个核苷酸单位,缺少特异性开放阅读框,几乎不具备蛋白编码功能的RNA分子,也称为长链非编码RNA。lncRNA可在转录水平、转录后水平、表观遗传学水平等方面参与基因的表达调控,从而影响机体的生长、发育、衰老、死亡等生命过程。近年来研究发现lncRNA有着类似癌基因或抑癌基因的作用,并与肾癌细胞的增殖、侵袭、转移及预后密切相关。本文将对lncRNA在肾癌中的研究进展进行论述,并探讨lncRNA与肾癌发生、发展之间的关系,为寻找肾癌分子标志物、药物靶点提供新的方向。

1LncRNA的特性和作用机制

lncRNA是一类转录本长度在200 nt~100 kb之间的非编码RNA分子,多数由RNA聚合酶Ⅱ转录生成,其亚细胞定位多样化,在细胞核、细胞质和细胞器中均有分布。lncRNA多数情况下较长,具有mRNA样结构,有些具有poly(A)尾巴,而有些没有poly(A)尾巴,在分化过程中有动态的表达和不同的剪接方式,其与编码基因相比,lncRNA的表达量更低。不同组织之间的lncRNA表达量不相同,既具有组织特异性;同时lncRNA也具有时空特异性,即同一组织或器官在不同生长阶段,其中的lncRNA表达量也可以发生变化[1]。lncRNA不仅在肿瘤的发病机制,而且在心血管、自身免疫、感染性及神经性疾病等方面都有重要作用[2]。目前研究[3]证实lncRNA具有以下功能:①招募染色质重塑复合物到特定的基因组位点并使其发生催化活性。②结合转录因子在编码蛋白基因的上游启动子区域转录,进而干扰邻近蛋白编码基因的表达。③抑制RNA聚合酶Ⅱ,与编码蛋白基因的转录本形成互补双链,干扰mRNA的剪切,进而产生不同的剪切形式;或在Dicer酶作用下产生内源性的siRNA,调控基因的表达水平。④结合在特定的蛋白质上调节相应蛋白的活性或改变蛋白的胞质定位。⑤作为小分子RNA的前体分子转录,如微小RNA(microRNAs,miRNAs)、piRNA。所以lncRNA异常表达可以促使肿瘤在内的多种疾病的发生。

2LncRNA与肾癌

肾癌又称肾细胞癌(renal cell carcinoma,RCC),是一种来源于肾小管上皮细胞的恶性肿瘤。肾癌约占成人恶性肿瘤的3%,其发病率逐年升高[4]。手术切除是惟一有效的治愈方法,但是20%~30%的患者术后会出现转移或复发。而且肾癌对放化疗、免疫治疗等不敏感,所以一直是困扰临床医生的难题[5-6]。同时肾癌本身是多基因相关性肿瘤。现代分子生物学的发展揭示基因突变、缺失、重复和染色体重排等在肾癌的发生中起着重要的作用[7]。例如有文献报道[8]Zeste基因增强子同源物2(EZH2)通过上调血管内皮生长因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)的表达从而促进肾透明细胞癌的发生、发展。近年来的研究证实,在真核生物转录组中存在的大量lncRNA,它们参与了X染色体沉默、基因印记以及染色体修饰、转录激活、转录干扰、核内运输等调控过程,这也为我们对肾癌的研究提供了一个新的方向[9]。

2.1MALAT-1

MALAT-1(metastasis-associated lung adenocarcinoma transcript-1)即肺腺癌转移相关转录本1,主要位于人染色体11q13.1,长约8.7 kb,最早在非小细胞肺癌中被报道[10]。研究同时还发现在肾癌中MALAT-1与转录因子TFFB形成融合体,TFFB作为转录因子调控多个重要通路,两者融合后可以保护TFFB的整个编码序列,显著增加TFFB蛋白表达水平,促进肿瘤的进展[11]。Zhang等[12]用PCR分析发现肾透明细胞癌组织和癌细胞株786-O和ACHN中MALAT-1的表达水平明显高于癌旁组织和正常肾细胞株HK-2,伴随着MALAT-1在肾透明癌中的表达水平越高,患者有一个更加不良的预后。此外,Hirashi等[13]发现沉默MALAT-1的表达时,E-cadherin被激活,同时β-catenin的表达通过EZH2被降低,他们认为MALAT-1过表达促进了肾癌上皮间质转化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)的发生,进而促进肾癌细胞的转移。同时他们还发现了MALAT-1和miR-205之间的关系,即MALAT-1对miR-205有一种负性调控作用,MALAT-1通过下游效应分子EZH2特异性通道,使miR-205沉默,促使肾癌细胞的增殖和侵袭能力增强,因此他们认为MALAT-1在肾癌中可能是一种促癌因子。

2.2SPRY4-IT1

SPRY4-IT1 (Gen Bank accession ID AK024556) 位于人染色体5p31.3,长约708 nt,是一种典型的内含子lncRNA,在黑色素瘤中表达较高,SPRY4-IT1的二级结构含有多个茎环和假结,而目前研究显示lncRNA的特殊二级结构可与蛋白分子结合发挥生物学功能,从而促进肿瘤的形成[14]。Peng等[15]研究发现SPRY4-IT1的表达水平在胃癌组织和细胞中明显高于正常人胃组织和细胞,而且随着SPRY4-IT1表达水平的增高,患者预后更差,当沉默SPRY4-IT1的表达水平后,胃癌细胞的侵袭和转移能力减弱。他们进一步发现在胃癌细胞株和组织中,SPRY4-IT1主要通过激活cyclin D1、MMP2、 MMP9的表达,促进胃癌细胞的增殖。他们认为SPRY4-IT1在胃癌中起到一个促癌基因的作用。Zhang等[16]用PCR检测4对标本中SPRY4-IT1的表达情况,结果显示SPRY4-IT1在肾癌组织中的表达量显著高于正常癌旁组织。用siRNA干扰SPRY4-IT1表达后,分别采用wound healing法、流式细胞仪和Transwell法检测其对细胞增殖、凋亡和迁移的影响,发现肾癌细胞株迁移能力与对照组相比明显降低,但细胞增殖无明显变化,细胞凋亡变化亦不明显。他们认为SPRY4-IT1在肾细胞癌组织中高表达,并且能促进肾癌细胞迁移,可能成为判断肾癌预后的重要分子标志物。

2.3HOTAIR

HOTAIR全长约2158 nt,位于染色体12q13.13的HOXC11与HOXC12基因之间,共含6个外显子,包括5个短外显子及1个长外显子[17]。研究证实PRC2(poly-comb repressive complex 2)和LSD1(lysine specific demethylase 1)与HOTAIR结合的结构域具有广泛不同的二级结构,HOTAIR存在2个独立的结合位点(分别结合PRC2及LSD1),在PRC2及LSD1之间起着“桥梁”作用。HOTAIR通过特异性双向结合的能力结合PRC2与LSD1位点,引起复杂的生物学级联效应[18]。Pei等[19]通过PCR发现HOTAIR在多种肾癌细胞株中高表达,在姜黄色素的介导作用下,表达HOTAIR的肾癌细胞株的转移能力显著高于不表达HOTAIR的肾癌细胞株,他们认为HOTAIR可能是在姜黄色素诱导的作用下促进了肾癌细胞的转移。Chiyomaru等[20]研究证实在肾癌细胞中,HOTAIR同样表现为高表达,而miR-141低表达,当降低免疫复合物Ago2时,miR-141表达上调,HOTAIR的表达沉默,他们miR-141对HOTAIR有一种负性调控作用时,这也为我们研究miRNA与lncRNA之间的关系提供了一个新的证据。Wu等[21]研究发现当沉默HOTAIR表达时,肾癌细胞的生长周期被阻滞在G0/G1期,癌细胞的增殖和侵袭能力明显受到抑制,同时HOTAIR与基因EZH2和组蛋白H3K27三甲基化(H3K27me3)结合能力减弱。而既往研究[22]认为EZH2和H3K27me3在肾癌中扮演着抑癌基因作用,其高表达预示肾癌患者更差的预后。Wu等认为HOTAIR与基因EZH2和H3K27me3之间存在着正相关,同时HOTAIR在肾癌中发挥着抑癌基因作用。

2.4MEG3

母系表达基因3(materally expressed gene3,MEG3)定位于人类染色体14q32.3,长度约为1.6 kb,隶属于人类母源性印记基因DLK1-MEG3单元,主要通过转录产物长链非编码RNA MEG3发挥抑癌作用。MEG3在多种正常细胞中表达,尤其在脑组织中高表达。MEG3能通过促进p53蛋白表达来抑制肿瘤细胞的增殖,同时通过调节VEGH和Notch信号传导途径抑制血管生成,进而参与细胞增殖、分化、凋亡等生命活动[23]。受表观遗传控制,其启动子CpG岛,尤其位于该基因功能区重要序列的5' 侧翼1和4区域的高甲基化,可以导致包括p53在内的多种转录因子的永久性失活,从而失去抗增殖能力,导致肿瘤的发生。Kawakami等[24]研究发现DLK1在肾癌中可作为抑癌基因存在。DLK1在正常肾组织较为常见,但多数原发性肾细胞癌(RCCs)及RCC来源的癌细胞株出现DLK1的表达缺失,同时发现MEG3上游的甲基化导致RCCs来源的DLK1失活。若将DLK1重新导入裸鼠体内,发现裸鼠体内肿瘤细胞的生长受到抑制。Kawakami等[24]在研究中也发现,在肾细胞癌中,MEG3表达缺失与其被甲基化有关,MEG3区域高甲基化是导致肾癌发生的主要因素,所以他们证实MEG3在肾癌的形成中起着抑制作用,是一种抑癌基因。

2.5H19

H19基因位于人染色体11p15.5,全长2.3 kb,共有5个外显子及4个内含子,主要存在于细胞质内,高度表达于胚胎发育期,主要集中表达于内胚层及中胚层来源的组织,与胰岛素样生长因子2 (IGF2)是一对交互印记基因。H19是第一个被发现的肿瘤相关lncRNA,具有致癌和抑癌的双重作用[25]。H19和IGF2基因通常一起受差异甲基化区域(differentially methylated region,DMR)调控,H19调控区DMR有绝缘子蛋白(CCCTC-binding factor,CTCF)的结合位点,CTCF能和母本染色体上非甲基化的DNA结合,从而阻断H19下游的增强子和母本IGF2等位基因的相互作用[26]。Ludgate等研究通过[27]肾母细胞瘤(Wilms瘤)患者与正常肾细胞比较发现,Wilms瘤患者中印记基因IGF2/H19调控区DMR异常甲基化,其H19表达明显缺失。Charlton等[28]检测了13个肾母细胞瘤患者,发现其中的11个患者的H19基因位点调控区DMR发生显著甲基化,正常肾组织(normal kidneys,NKs)低于肾源性残余(nephrogenic rests,NRs)的甲基化水平,NRs甲基化水平低于Wilms瘤的甲基化水平。而且随着Wilms瘤的恶性程度增加,肾癌细胞的甲基化水平越高,即H19的表达水平越低。他们认为H19是肾母细胞瘤的一个抑癌基因。

2.6GAS5

生长停滞特异性转录本5(growth arrest-specific 5,GAS5)是通过差减杂交技术从大鼠NIH3T3细胞克隆得到的,位于人类染色体1q25.1,通过选择性剪切可产生多种异构体[29]。Pickard等[30]发现GAS5表达的缺失在前列腺癌在内的多种恶性肿瘤中发生,在前列腺癌中当降低GAS5的表达水平时,可以显著抑制前列腺癌细胞的增殖和转移能力。Liu等[31]研究发现GAS5在膀胱癌组织中的表达水平显著低于癌旁组织,当降低GAS5的表达量时,膀胱癌细胞的侵袭能力显著增强。他们进一步证明GAS5在一定程度上通过调控细胞周期蛋白(cyclin-dependent protein kinase 6,CDK6)的表达来抑制膀胱癌的增殖。Qiao等[32]通过挑选12个肾透明细胞癌的临床样品,发现肾癌组织中GAS5的表达水平显著低于正常肾组织,而且肾癌细胞株A498中的GAS5表达量低于正常肾细胞系HK-2。此外,他们进一步实验发现在肾癌细胞株A498细胞中,GAS5过表达抑制肾透明细胞癌增殖,诱导细胞凋亡并阻滞细胞周期,与对照组相比肾癌细胞株A498的转移和侵袭能力被明显抑制。因此,他们认为GAS5可能是肾癌的一个抑癌基因。

综上所述,随着高通量检测技术的成熟和应用以及生物信息学的迅猛发展,lncRNA具有的表达调控功能相继被发现,不仅丰富了基因组的复杂性,而且使我们认识到一些lncRNA在肾癌中的异常表达情况,使得我们对lncRNA与肾癌的联系研究更加深入[33]。但是肾癌中lncRNA的生物学认识过程依然缓慢,其功能和机制尚有诸多不明确,而且与肾癌联系密切的lncRNA为数不多,未来仍需进一步探讨其与影响肾癌发生发展的作用机制。现有研究发现在肾癌中异常表达lncRNA的机制以及lncRNA异常表达对肾癌的发生、发展、转移、侵袭所产生影响的机制,为我们下一步治疗肾癌打下了基础,能否有效的控制lncRNA在肾癌中适当的表达量是我们下一步需要克服的难题。相信随着研究深入,lncRNA在肾癌的分子靶向治疗和药物研发等方面必将揭开一个新的篇章。

参考文献

[1]Maass PG,Luft FC,Bahring S.Long non-coding RNA in health and disease〔J〕.J Mol Med (Berl),2014,92 (4):337-346.

[2]Santosh B,Varshney A,Yadava PK.Non-coding RNAs:biological fu-

nctions and applications〔J〕.Cell Biochem Funct,2015,33 (1):14-22.

[3]Wilusz JE,Sunwoo H,Spector DL.Long noncoding RNAs:functional surprises from the RNA world〔J〕.Genes Dev,2009,23 (13):1494-504.

[4]Torre LA,Bray F,Siegel RL,et al.Global cancer statistics,2012〔J〕.CA Cancer J Clin,2015,65 (2):87-108.

[5]Bianchi M,Gandaglia G,Trinh QD,et al.A population-based competing-risks analysis of survival after nephrectomy for renal cell carcinoma〔J〕.Urol Oncol,2014,32 (1):46.e1-7.

[6]Funakoshi T,Lee CH,Hsieh JJ.A systematic review of predictive and prognostic biomarkers for VEGF-targeted therapy in renal cell carcinoma〔J〕.Cancer Treat Rev,2014,40 (4):533-547.

[7]Nickerson ML,Jaeger E,Shi Y,et al.Improved identification of von Hippel-Lindau gene alterations in clear cell renal tumors〔J〕.Clin Cancer Res,2008,14 (15):4726-4734.

[8]Xu ZQ,Zhang L,Gao BS,et al.EZH2 promotes tumor progression by increasing VEGF expression in clear cell renal cell carcinoma〔J〕.Clin Transl Oncol,2015,17 (1):41-49.

[9]Guttman M,Rinn JL.Modular regulatory principles of large non-coding RNAs〔J〕.Nature,2012,482 (7385):339-346.

[10]Ji P,Diederichs S,Wang W,et al.MALAT-1,a novel noncoding RN-

A,and thymosin beta4 predict metastasis and survival in early-stage non-small cell lung cancer〔J〕.Oncogene,2003,22 (39):8031-8041.

[11]Kauffman EC,Ricketts CJ,Rais-Bahrami S,et al.Molecular genetics and cellular features of TFE3 and TFEB fusion kidney cancers〔J〕.Nat Rev Urol,2014,11 (8):465-475.

[12]Zhang HM,Yang FQ,Chen SJ,et al.Upregulation of long non-coding RNA MALAT1 correlates with tumor progression and poor prognosis in clear cell renal cell carcinoma〔J〕.Tumour Biol,2015,36 (4):2947-2955.

[13]Hirata H,Hinoda Y,Shahryari V,et al.Long noncoding RNA MALAT1 promotes aggressive renal cell carcinoma through Ezh2 and interacts with miR-205〔J〕.Cancer Res,2015,75 (7):1322-1331.

[14]Khaitan D,Dinger ME,Mazar J,et al.The melanoma-upregulated long noncoding RNA SPRY4-IT1 modulates apoptosis and invasion〔J〕.Cancer Res,2011,71 (11):3852-3862.

[15]Peng W,Wu G,Fan H,et al.Long noncoding RNA SPRY4-IT1 predicts poor patient prognosis and promotes tumorigenesis in gastric cancer〔J〕.Tumour Biol,2015,36(9):6751-6758.

[16]Zhang HM,Yang FQ,Yan Y,et al.High expression of long non-coding RNA SPRY4-IT1 predicts poor prognosis of clear cell renal cell carcinoma〔J〕.Int J Clin Exp Pathol,2014,7 (9):5801-5809.

[17]He S,Liu S,Zhu H.The sequence,structure and evolutionary features of HOTAIR in mammals〔J〕.BMC Evol Biol,2011,11:102.

[18]Tsai MC,Manor O,Wan Y,et al.Long noncoding RNA as modular scaffold of histone modification complexes〔J〕.Science,2010,329 (5992):689-693.

[19]Pei CS,Wu HY,Fan FT,et al.Influence of curcumin on HOTAIR-mediated migration of human renal cell carcinoma cells〔J〕.Asian Pac J Cancer Prev,2014,15(10):4239-4243.

[20]Chiyomaru T,Fukuhara S,Saini S,et al.Long non-coding RNA HOTAIR is targeted and regulated by miR-141 in human cancer cells〔J〕.J Biol Chem,2014,289 (18):12550-12565.

[21]Wu Y,Liu J,Zheng Y,et al.Suppressed expression of long non-coding RNA HOTAIR inhibits proliferation and tumourigenicity of renal carcinoma cells〔J〕.Tumour Biol,2014,35 (12):11887-11894.

[22]Liu L,Xu Z,Zhong L,et al.Prognostic value of EZH2 expression and activity in renal cell carcinoma:a prospective study〔J〕.PloS one,2013,8 (11):e81484.

[23]Zhou Y,Zhang X,Klibanski A.MEG3 noncoding RNA:a tumor suppressor〔J〕.J Mol Endocrinol,2012,48 (3):R45-53.

[24]Kawakami T,Chano T,Minami K,et al.Imprinted DLK1 is a putative tumor suppressor gene and inactivated by epimutation at the region upstream of GTL2 in human renal cell carcinoma〔J〕.Hum Mol Genet,2006,15 (6):821-830.

[25]Schoenfelder S,Smits G,Fraser P,et al.Non-coding transcripts in the H19 imprinting control region mediate gene silencing in transgenic Drosophila〔J〕.EMBO Rep,2007,8 (11):1068-1073.

[26]Gao ZH,Suppola S,Liu J,et al.Association of H19 promoter methylation with the expression of H19 and IGF-II genes in adrenocortical tumors〔J〕.J Clin Endocrinol Metab,2002,87 (3):1170-1176.

[27]Ludgate JL,Le Mee G,Fukuzawa R,et al.Global demethylation in loss of imprinting subtype of Wilms tumor〔J〕.Genes Chromosomes Cancer,2013,52 (2):174-184.

[28]Charlton J,Williams RD,Sebire NJ,et al.Comparative me-

thylome analysis identifies new tumour subtypes and biomarkers for transformation of nephrogenic rests into Wilms tumour〔J〕.Genome Med,2015,7 (1):11.

[29]Smith CM,Steitz JA.Classification of gas5 as a multi-small-nucleolar-RNA (snoRNA) host gene and a member of the 5'-terminal oligopyrimidine gene family reveals common features of snoRNA host genes〔J〕.Mol Cell Biol,1998,18 (12):6897-6909.

[30]Pickard MR,Mourtada-Maarabouni M,Williams GT.Long non-coding RNA GAS5 regulates apoptosis in prostate cancer cell lines〔J〕.Biochim Biophys Acta,2013,1832 (10):1613-1623.

[31]Liu Z,Wang W,Jiang J,et al.Downregulation of GAS5 promotes bladder cancer cell proliferation,partly by regulating CDK6〔J〕.PloS one,2013,8 (9):e73991.

[32]Qiao HP,Gao WS,Huo JX,et al.Long non-coding RNA G-

AS5 functions as a tumor suppressor in renal cell carcinoma〔J〕.Asian Pac J Cancer Prev,2013,14 (2):1077-1082.

[33]Blondeau JJ,Deng M,Syring I,et al.Identification of novel long non-coding RNAs in clear cell renal cell carcinoma〔J〕.Clin Epigenetics,2015,7 (1):10.

(编辑:甘艳)

(收稿日期2015-06-22修回日期 2015-09-28)

文章编号:1001-5930(2016)04-0685-03

中图分类号:R737.11

文献标识码:B

DOI:10.3969/j.issn.1001-5930.2016.04.053

通信作者:王志平

基金项目:国家自然科学基金(编号:81302240);甘肃省科技计划(编号:145RJZA153);兰州大学中央高校基本科研业务费(编号:lzujbky-2013-134、lzujbky-2014-165);甘肃省泌尿系疾病临床医学中心开放课题(编号:mnlczxkf-23)