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猪流行性腹泻弱毒疫苗研究进展

2016-03-19胡鸿惠南文金龚中贵彭国良

安徽农业科学 2016年26期
关键词:传代二联保护剂

胡鸿惠, 南文金, 龚中贵, 彭国良

1.韶关学院,广东韶关 512005;2.韶关市动物卫生监督所,广东韶关 512000)



猪流行性腹泻弱毒疫苗研究进展

胡鸿惠1, 南文金1, 龚中贵2, 彭国良1

1.韶关学院,广东韶关 512005;2.韶关市动物卫生监督所,广东韶关 512000)

分析了我国猪流行性腹泻疫苗的使用现状,从疫苗毒株的选择、野毒株的分离和培养、毒株的致弱、疫苗安全性和免疫效力等方面综述了猪流行腹泻弱毒疫苗的研究进展,以期为新形势下进一步开展猪流行腹泻疫苗的研发提供借鉴与参考。

猪流行性腹泻;猪流行性腹泻病毒;弱毒疫苗;毒株

1971年英国首先发现猪流行性腹泻(Porcineepidemicdiarrhea,PED),随后比利时、荷兰、德国、瑞士、法国等均有该病的报道,我国于1976年首次报道该病的发生[1]。自2010年以来,我国大部分地区的猪场出现新的一轮仔猪腹泻疫情,甚至出现在一些广泛使用PED灭活苗和弱毒苗的猪场,与此同时韩国、日本、越南、泰国等亚洲国家也发生腹泻疫情[2-3]。自2013年4月以来,美国、加拿大、墨西哥等美洲国家,甚至欧洲国家均有猪腹泻疫情的报道[4-5]。2014年,日本大面积暴发仔猪腹泻病[6]。目前,猪流行性腹泻已成为危害世界养猪业的重要传染病之一,给养猪业带来巨大的经济损失,因此该病的防疫与控制至关重要。疫苗免疫是预防动物传染病的有效方式,也是亚洲国家PED防疫控制的主要方式之一。一直以来,猪流行腹泻疫苗的研制与应用备受国内外学者的重视。近年来,不少猪流行性腹泻相关疫苗陆续上市,2014年3月美国宣布猪病毒性腹泻RNA核酸疫苗上市,2015年3月我国宣布猪传染性胃肠炎-猪流行性腹泻-猪轮状病三联活疫苗上市等[7]。猪流行性腹泻病毒(Porcineepidemicdiarrheavirus,PEDV)主要寄生在猪的小肠,以细胞免疫为主,而弱毒疫苗是一种病原致病力减弱但仍然具有活力的完整病原疫苗,可以在免疫动物体内繁殖,具有使用剂量小、免疫原性好、不需佐剂、成本低、使用方便、可诱导较强的细胞免疫反应,一次免疫即可获得长久免疫力等优点[8-9]。笔者从疫苗毒株的选择、野毒株的分离和培养、毒株的致弱、疫苗安全性和免疫效力等方面综述猪流行性腹泻弱毒疫苗的研究进展。

1 我国猪流行性腹泻疫苗的使用现状

已研制的猪流行性腹泻疫苗有组织灭活苗、细胞灭活苗、细胞弱毒苗和转基因植物疫苗、联苗等,亚洲地区在很长一段时间内通过疫苗免疫接种很好地控制了猪流行性腹泻。国内市售的猪流行性腹泻相关疫苗以灭活苗为主,以弱毒苗为辅,其中大部分是联苗,包括猪流行性腹泻-猪传染性胃肠炎(TGE)二联苗和猪流行性腹泻-猪传染性胃肠炎-猪轮状病(PoR)三联疫苗等,国内生产厂家主要有哈维科、吉林正业、上海海利、成都天邦、普莱柯和诺倍威。灭活疫苗因其安全、稳定而一直备受青睐,其中二联灭活疫苗的市场份额相对较大。活疫苗可以诱导猪体产生分泌性IgA(sIgA),提供对病毒强毒攻击的免疫保护,已成为目前企业研发推出产品的热点。陈静等[10]研究表明,与灭活疫苗相比,接种活疫苗后动物攻毒保护性更好。尽管在一定程度上弱毒活疫苗存在毒力返强的危险,科研人员和企业仍在不断完善和加强弱毒疫苗的研发,并在近年先后推出PED-TGE二联活疫苗、PED-TGE-PoR三联活疫苗投入市场。同时,新型疫苗(如亚单位疫苗、DNA疫苗、转基因植物疫苗、重组活载体疫苗等基因工程疫苗)均在研发,但少有商品化。与传统疫苗相比,新型疫苗在研发和投入使用的过程中人们更为关注疫苗的免疫原性和安全性,在我国等亚洲国家暂时没有得到推广和应用[11-14]。

2 弱毒疫苗毒株的选择

已经实现商品化的弱毒疫苗所使用的猪流行性腹泻病毒毒株主要有CV777株、P-5V株、KPED-9株和DR13株[15]。其中,CV777毒株最早由比利时Pensaert等分离得到,我国童有恩等[16]首次开展了CV777强毒株的致弱培育,随后又开展了PED和TGE二联弱毒苗的研制,并在2003年获得TGE-PED二联活疫苗新兽药证书。目前,国内很多企业仍然使用该毒株作为疫苗毒株进行生产。在日本,广泛用于活疫苗生产的毒株为P-5V。在韩国,Kweon等[17]成功从新生小猪小肠内容物分离到的野毒株KPEDV-9,通过传代适应Vero细胞连续传代致弱,并后续用于疫苗生产。Song等[18]也从新生仔猪小肠内容物中分离到DR13毒株,经过连续传代并成功研制成口服疫苗,该疫苗口服效果强于肌注,并于2011年在菲律宾注册商标。此外,也有很多未能实现商品化的疫苗研发和正在研发中的腹泻疫苗,童昆周等[19]开展了PEDV-G1的致弱培育工作。Sato等[20]开展了83P-5毒株的致弱培育。陶晓珊等[21]开展了SD10A1毒株的致弱研究。张许科等[22]开展HN1301强毒株的致弱研究。

近年来,随着猪流行性腹泻疫情的暴发,研究人员发现以CV777毒株为代表的经典毒株生产的疫苗对猪的保护力不足,造成免疫失败的现象屡屡发生[23]。通过对流行毒株的分子流行病学调查,发现我国2010年以来的流行毒株与CV777相比,毒力基因发生了较大的改变,而2013~2014美国、韩国、日本的流行毒株与过去10年的流行毒株相比,也发生了变异。Chen等[24]在我国分离的LC毒株与CV777毒株相比有897个核苷酸不同,大部分差异主要存在ORF1和S基基因上,同样的基因缺失和插入存在2010~2012年的中国分离株BJ-2011-1、CH/FJND-3/2011和GD-B中。SuzikiT等[25 ]于2013~2014年在日本分离的2个毒株(TTR-2/JPN/2014和MYG-1/JPN/2014)的S基因和ORF3基因上发现大范围的缺失,这2个毒株与2013~2014年美国和韩国的广泛流行的分离株有较近的亲源关系,与经典毒株相比在已知的中和表位中存在氨基酸的突变。

总之,毒株的选择及其免疫原性、毒价是弱毒疫苗研发和投入生产并能实现市场化的关键因素之一。在新的养殖新形势下,由于经典疫苗对猪流行性腹泻病毒感染的保护力不足和该病毒基因的变异,又一次启发了新一轮的猪流行性腹泻疫苗的研发之路,研究者们正从这些变异毒株中筛选代表性强、免疫原性好的毒株研发新的疫苗。

3 弱毒疫苗的分离培养与致弱

3.1毒株的分离和培养猪流行性腹泻病毒野毒株的分离培养较为困难,有研究人员应用猪胎肾、猪甲状腺细胞进行PEDV的分离未能成功。宣华等[26]应用猪胎小肠组织原代单层细胞培养获得成功,病毒滴度可达2×106.5~2×109.0TCID50/mL。Hofmann等首次在Vero细胞中成功传代和培养PEDV。此后,陆续有成功应用Vero细胞进行PEDV的分离的报道[27-28]。此外,也有应用PK15 细胞和Marc-145 细胞中成功分离或传代PEDV的报道[29-30]。总体而言,PEDV分离率非常低,有的培养后基本检测不到组织细胞感染量(TCID50),给病毒的扩大生产及病毒量的确定造成困难。

为了提高PEDV的临床分离效率、在疫苗生产中提高病毒的低度,研究人员不断探索研究。有些PEDV的分离会在第1代出现细胞病变,有的则需要盲传多代后才出现病变[31]。冯晓声等[32]通过使用细胞亲和剂来改变病毒与细胞之间的关系,增加病毒和细胞之间的亲和度,使得病毒更容易感染细胞。佟有恩等[33]采用加胰酶的办法将二联活疫苗的PEDV的毒价提高2个滴度。周靓靓等[34]试验发现Vero细胞采用0.02%EDTA+0.25%胰酶为分散液与用PBS+0.25%胰酶为分散液,其使单层细胞的消化时间缩短,进而缩短了病毒繁殖时间,且毒价能达到要求。王琳等[35]探索并优化CV777疫苗株的培养条件,发现当胰酶浓度为5.0~7.5μg/mL时,病毒增殖速度随胰酶浓度的增加有所上升,且不同代次Vero细胞对病毒增殖的敏感性不同。为降低生产成本,有企业驯化疫苗毒株,以适应低血清培养,采用分代次递进式减少营养液中的血清浓度[36]。除病毒本身的特性以外,提高PEDV病毒培养的滴度不仅可以从培养基着手,也可以考虑培养条件、细胞系等。同时,需要建立一个敏感性高的检测方法辅助病毒分离与鉴定,如荧光定量RT-PCR方法相比普通方法更具定量、敏感的优越性。

3.2毒株的致弱常用的病毒致弱方法有4种:①从自然界中筛选弱毒株;②通过异种动物或细胞传代致弱;③采用物理和化学方法致弱;④利用基因工程技术对病原进行重组。目前,应用于猪流行性腹泻病毒的致弱方法主要是通过细胞传代致弱和利用基因工程技术对病原进行重组致弱。

选择合适的毒株进行致弱是弱毒疫苗研发的关键环节之一,而不同的毒株由于其毒力的强弱不同,因此通过传代致弱的代次会有一定的差距。童昆周等[19]通过使用Vero细胞的传代,并在一定代次用PK15和ST细胞进行交替传代将PEDV-G1强毒株致弱,后续试验结果表明PEDV-G1 第83代毒具有较高的免疫原性并具备作为弱毒疫苗株的条件。佟有恩等[16]将CV777强毒株的在Vero细胞上连续传代进行致弱,83代以后适应了仔猪肾原代细胞(PK),并自90代起做空斑培养,进行病毒克隆纯化,克隆后25代弱毒株稳定性试验表明经6代返祖传代毒力未见返强,符合弱毒株标准。Kweon等[17]成功分离到野毒株KPEDV-9,通过传代适应Vero细胞,并连续传代至93 代 。Song等[18,37]将DR13毒株经过在Vero细胞上连续传代100代致弱。日本Sato等[20]开展83P-5毒株的传代致弱,该毒株在传代22代时开始适应细胞,并连续传代至100代。陶晓珊等[21]对分离的SD10A1毒株进行传代致弱,第16代出现稳定的细胞病变,病毒含量高于106.0TCID50/mL,在Vero细胞上传代至121代时对未吃初乳仔猪安全,并命名为SD10。张许科等[22]将HN1301分离株经Vero细胞传代致第46代时成功致弱,并命名为HN1302株。P-5V毒株虽已经应用于疫苗生产, 但无相关的致弱研究报道。已有的研究表明,PEDV在细胞传代培养的过程中,随着代次的增加,其毒力逐渐减弱,但也存在散失病毒复制能力的风险。目前使用的不同弱毒疫苗毒株致弱的代次各不相同。笔者认为PED疫苗毒株的致弱方面仍然存在很多不足之处,比如可以考虑改良培养基缩短病毒复制周期、 改变病毒培养温度致弱病毒、研发培育新的适应性细胞系等。此外,在病毒的致弱研究中可以关注毒株的致弱标志,有助于疫苗投入使用后的鉴别诊断。

4 冻干保护剂

动物疫苗保护剂可以减少疫苗在高温和长时间保存中可能发生的物理和化学变化。常用的冻干保护剂有糖类、蛋白类、聚乙二醇等。国内动物疫苗最常使用的冻干保护剂主要有脱脂牛奶、蔗糖、明胶,其中一般蔗糖脱脂牛奶的比例为5%,明胶的比例为1.5%~3.0%,这些保护剂具有溶解性好、外型稳定、保存方便和成本低廉等优点,但具有热稳定性差和保护功能较弱的缺点,一般2~8 ℃下保存期为4~6个月。国外对耐热冻干保护剂的研究起步较早,已有商品化的产品,2~8 ℃下保存期可达2年以上。近年来,国内有研究人员探索以二糖类海藻糖、聚乙烯吡咯烷酮、白蛋白等为组分的耐热性冻干保护剂的研究工作[38-39]。关于PEDV的冻干保护剂的研发鲜有报道。陶晓珊等[21]选择蔗糖和明胶为保护剂,其在疫苗中的质量百分比终浓度分别为5%和1%,在保护剂中添加0.5%的酪蛋白酸钠。冻干保护剂的选择和质量会影响疫苗的质量、效价和稳定性。总体来看,国内对耐热冻干保护剂的研究报道较少,仅有少量禽病疫苗的研发过程中对耐热冻干保护剂进行了研究,猪病疫苗普遍采用的是普通冻干保护剂。对PED疫苗在内的猪病疫苗的冻干保护剂的研发具有一定的市场潜力。

5 疫苗的安全性和免疫效力

疫苗的安全性试验主要包括垂直传播和水平传播能力、不同日龄猪和妊娠母猪的免疫安全性、阳性猪群的免疫安全性、超剂量免疫的安全性以及毒力返强试验等。免疫效力试验则包括最小免疫剂量、免疫产生期与免疫持续期、不同的免疫途径等。

童昆周等[19]将PEDV-G1第83代致弱毒株进行免疫效力试验 ,结果表明弱毒疫苗总免疫效力达94.6%。其中,口服或肌注免疫1~4 个发病量强毒攻击的免疫猪均获得100 %保护;6 个发病量攻击的免疫猪, 则口服免疫获得50%保护, 肌注免疫获得100 %保护。1998年,佟有恩等[16]将适应Vero细胞系的不同代次的CV777 毒株进行感染性及免疫效力试验,结果表明致弱毒株毒价可达3.33×107.0~3.33×107.5TCID50/mL,第83-7-斑5的克隆传代毒的主动免疫试验保护率为95.92%,被动免疫试验保护率为96.2%,且该毒株经6 代次返祖传代毒力未返强。佟有恩等[32]又研制了TGE-PED二联活疫苗,免疫效力试验结果表明弱毒株的毒力稳定,免疫后主动保护率为97.7%,被动保护率为98%,比二联灭活疫苗约高10个百分点,而免疫剂量减少50%,免疫期可达7个月,仔猪的被动免疫期可至断奶后1 周,免疫后14d可产生较强的保护力,6 个猪场的田间试验保护率为95%~98%,紧急预防接种效果明显。1999年,Kweon等[17]用KPEDV-9弱毒株免疫妊娠母猪,结果发现母猪的免疫力明显提高。初乳前仔猪的致病性试验发现母猪所产生的抗体对抵抗PEDV野毒能力较强。怀孕母猪安全性试验表明接种KPEDV-9的母猪平均每窝产活仔数与对照组相同,无任何临床症状。2000 年,李树根等[40]将PEDV弱毒株G1-P83和TGE弱毒株AG1制成弱毒二联疫苗,发现该疫苗可以使初生仔猪、断奶仔猪和肥育猪对TGEV和PEDV强毒的攻击有一定的抵抗能力,其中初生仔猪在8~10日龄用弱毒二联疫苗口服免疫,在断奶时能够较好地保护仔猪,免受TGEV和PEDV强毒的感染。2007年,Song等[18]将13 株DR弱毒株通过口服及肌肉注射免疫妊娠母猪,其中口服免疫组发病率为13%,而肌肉免疫组为60%,口服组仔猪的IgA含量高于肌肉注射组,在强毒株攻毒情况下,新生仔猪口服组比肌肉注射组获得了更好的免疫保护,病毒株在猪体内连续3 次传代毒力不返强。2014年,陶晓珊等[21]开展以SD10为毒株的弱毒疫苗研发,单剂量和超剂量试验均表明该毒株对小猪安全,主动免疫妊娠母猪后其产仔猪攻毒保护率为100%,而仔猪的主动免疫保护率也达100%,对照组发生典型的发病症状。2015年,张许科等[22]研究弱毒株HN1302的免疫保护效力,试验结果表明攻毒后第14天血清中和抗体水平逐渐升高,多数达到1∶32的水平,此后随着攻毒时间的增加,中和抗体水平增高,在攻毒后第28天达到最高,与CV777相比,弱毒株HN1302产生免疫效力较快,且能维持在一个较高的水平,能够充分保护猪流行性腹泻的攻击。疫苗的免疫效力决定了动物能否有效抵抗病毒的感染,弱毒疫苗接种后可以快速、持续地产生抵抗力,国内PED弱毒疫苗推出市场后其占有的市场份额逐渐提升。同时,在研发过程中需要关注的一个问题是PED疫苗的免疫持续期,弱毒疫苗的免疫持续期越长可以减少疫苗的免疫次数,减低生产成本、减少应激,尤其是当前养殖状况复杂,猪场接种疫苗种类较多、相互干扰已成为影响疫苗免疫效果的因素之一。

6 展望

近年来,国内外腹泻疫情屡屡发生,猪流行性腹泻的给全球养猪业造成巨大的经济损失。该病流行的相关问题主要集中在病毒发生较多的变异,与其他肠病毒共感染的比例逐年上升,疫苗的质量问题等[41]。很多因素使得猪流行性腹泻的防治成为今后一段时间内集约化养猪面临的亟待解决的问题之一。面对近年来的腹泻疫情,在临床生产实践中一些经典的腹泻疫苗不能很好地抵抗疾病,有的发病猪场通过返饲、自家苗的制备和使用,在一定程度内很好地控制了腹泻疫情,但返饲、自家苗的使用缺乏规范的方法,且病毒的滴度难以控制,又存在其他疫病感染的风险,不能长期使用。因此,饲养者们通过选择合适的疫苗进行免疫防疫才是科学有效的防控手段。

几十年来,学者们对PED疫苗的研发工作一直没有停滞。筛选和培育出具有良好免疫原性、高毒价的毒株是疫苗研制成功的关键。动物机体抗感染免疫的过程中,体液免疫和细胞免疫都非常重要。由于PEDV的肠道亲嗜性,局部肠黏膜免疫也发挥了重要作用,而活疫苗毒力减弱但保持完整的具有活力的病原,可以诱导良好粘膜免疫,是一个可持续发展和不断完善的研究方向。但是,与灭活疫苗相比,弱毒疫苗的安全更为受到关注。弱毒疫苗的研发主要分为弱毒疫苗株的培育、疫苗的安全性检验和疫苗的效力检验等3个阶段。

目前,基于腹泻疫情发生形势的变化,结合现有腹泻疫苗研究概况,笔者认为今后对猪流性腹泻疫苗的研发可以从以下方面加以重视:①猪流行性腹泻具有一定的地方流行性特征,研究人员可以长期监测腹泻疫情的发生,筛选地方流行毒株作为疫苗的候选毒株,追踪变异的PEDV毒株,加强企业-高校-研究院所的合作,将工厂化的疫苗生产工艺与高校、研究院所的资源优势相结合。以临床分离培养的变异毒株作为候选,优化和改进现有的商品化疫苗,加快科技转化为生产力的进度,加快实验室研发转化为生产的速度,也使养猪业受惠。②有针对性地考虑加强联苗的研发。持续追踪调查,检测和分离临床上与PEDV共感染的其他肠病毒,作为多联疫苗毒株的候选。③考虑基因工程活疫苗的研发与应用,保持活疫苗的免疫原性,但又减少活疫苗毒力返强的风险。

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ResearchProgressofPocineEpidemicDiarrheaAttenutedVirusVaccine

HUHong-hui1,NANWen-jin1,GONGZhong-gui2etal

1.ShaoguanUniversity,Shaoguan,Guangdong512005; 2.ShaoguanAnimalHealthSupervisionInstitute,Shaoguan,Guangdong512000)

Inthispaper,thecurrentusagesituationofpocineepidemicdiarrheavaccine(PEDV)inChinawasdescribed,andtheresearchprogressofpocineepidemicdiarrhea(PED)attenutedvirusvaccinewassummarizedfromtheaspectsoftheselectionofvaccinestrains,theseparationandcultureofwildstrains,theattenuationofstrains,thesafetyandimmuneefficiencyofvaccine,andsoon.Itprovides< class="emphasis_italic">references

fortheresearchanddevelopmentofpocineepidemicdiarrheavaccineinthenewepidemicsituation.

PED;PEDV;Attenutedvirusvaccine;Strain

广东省现代农业产业体系建设专项;广东省协同创新发展中心平台项目(YJK-2014-52-16);韶关市科技计划项目(2013CX/N06,韶科[2015]72号);2016年韶关学院校级科研项目;广东省科技计划项目(2016A040402038)。

胡鸿惠(1982- ),女,湖南郴州人,助理研究员,硕士,从事动物生产与疾病研究。

2016-08-05

S852.5

A

0517-6611(2016)26-0069-04

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