APP下载

IL-4及IL-9在D-IBS患者外周血中的表达及其与肠道MC活化的关系

2016-02-21沈敏瑾

浙江临床医学 2016年12期
关键词:孔内活化外周血

沈敏瑾

IL-4及IL-9在D-IBS患者外周血中的表达及其与肠道MC活化的关系

沈敏瑾

目的 通过入组腹泻性肠易激综合征(D-IBS)患者,观察外周血中IL-4及IL-9的表达及肠道肥大细胞(MC)活化情况。方法 依据罗马III诊断标准入选D-IBS患者30例,健康对照组30例,采用甲苯胺蓝染色法计数回盲部结肠黏膜MC,ELISA法检测血清中IL-4、IL-9表达。结果 与正常对照组比较,IBS患者MC数量增多(4.43±0.21 vs 2.12±0.27)(P<0.05),黏膜IL-4及血清IL-9的表达均高于对照组(42.76±5.71 vs 21.19±6.17,30.43±7.45 vs 26.74±5.12)(P<0.05)。结论 D-IBS患者血清中存在IL-4、IL-9的表达升高,其可能通过促进MC活化脱颗粒,从而引起IBS临床症状。

肠易激综合征 肥大细胞 白介素4 白介素9

肠易激综合征(IBS)是最常见的功能性胃肠病,全球范围内IBS发病率波动在3.3%~31.6%,目前亚洲国家IBS发病率已达9.6%[1]。据临床表现,IBS可进一步分为腹泻型、便秘型及混合型,其中以腹泻型居多。内脏高敏感是IBS症状产生的主要原因,但其具体产生机制至今尚未清楚阐明。目前,肥大细胞(MC)在IBS中的重要作用已被肯定[2],白介素4(IL-4)及白介素9(IL-9)与MC活化密切相关,但是其在IBS中的相关研究较少。在本研究中,作者通过检测腹泻型IBS(D-IBS)患者与健康人群外周血中IL-4及IL-9表达水平及肠道MC活化情况,拟初步探讨IL-4及IL-9介导MC活化在IBS发病中的作用。

1 临床资料

1.1 一般资料 2015年6月至12月在本院消化科住院及门诊就诊的D-IBS患者30例(观察组),其中男13例,女17例,平均年龄(43.2±12.6)岁。均符合罗马III中D-IBS诊断标准[3]:反复发作腹痛或腹部不适,且近3个月内≥3d/1个月,且伴有以下≥2条:排便后缓解;发作时伴排便次数的改变;发作时伴排便性状的改变。诊断前症状出现≥6个月,最近3个月有典型的症状发作。D-IBS亚型:稀/水样便>25%,且块状/硬便<25%。须经肠镜等检查排除引起这些症状的器质性疾病。所有患者需排除任何已知的食物不耐受,吸收不良,有胃肠道手术史,器质性胃肠道疾病当前诊断或病史。选取同期健康体检者30例(对照组),其中男12例,女18例,平均年龄(40.2±14.1)岁。所有患者均签署知情同意书。两组性别、年龄及BMI各亚型之间比较差异无统计学意义(P>0.05),具有可比性。

1.2 方法 (1)标本采集:收集D-IBS患者及健康对照者空腹静脉血5ml,2500r/min,离心5min。分离血清后置于-80℃冰箱保存备用。肠镜检查中获取回盲部活检组织2块,用生理盐水清洗干净,分别浸泡入10%中性福尔马林中或液氮中。(2)血清IL-4及IL-9检测:采用酶联免疫吸附法(ELISA)测定血清IL-4及IL-9表达,人IL-4试剂盒购自美国eBioscience公司,人IL-9试剂盒购自美国GUSABIO公司,操作严格按照说明书进行,在0孔内加入100μl标准稀释液,留3孔不加为空白孔。标准孔内加入标准品50μl/孔。试验孔内加入生物素标记的抗IL-4或抗IL-9 50μl/孔,室温孵育2h,洗板3次。加入链霉素标记的HRP工作液100μl/孔,室温孵育30min,洗板3次。加入100μl色素底物液100μl/孔,孔内液体将会变为蓝色。室温避光孵育30min。加入终止液100μl/孔,缓慢混匀。孔内液体将会由蓝色变为黄色。在加入终止液2h内在酶标仪上检测各孔吸光度(OD值)。通过标准曲线作图分析计算样品浓度。(3)肠道MC甲苯胺蓝染色:采用10%中性福尔马林固定新鲜标本,系列脱水、透明后石蜡包埋,4μm连续切片,75℃烤30min,常规脱蜡至水;滴加甲苯胺蓝液反应30min;水洗,入冰醋酸液分化,至胞核和颗粒清晰;水洗,用冷风吹干;二甲苯透明,中性树胶封固。然后于显微镜下观察课件MC胞质颗粒呈红紫色,胞核呈蓝色。每个样本取随机5个高倍视野(×200),连续计数并取平均值。

1.3 统计学方法 采用SPSS 17.0统计软件。计量资料以(x±s)表示,两个样本均数比较采用独立样本t检验,P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 外周血中IL-4及IL-9的表达水平比较 与对照组比较,D-IBS患者血清IL-4的表达显著升高(42.76±5.71) vs (21.19±6.17)(P<0.05),同时,血清IL-9的表达亦上调(30.43±7.45) vs (26.74±5.12)(P<0.05)。

2.2 回盲部MC计数比较 MC主要分布于疏松结缔组织,外形多呈椭圆形,胞核蓝色,胞质内可见紫红色颗粒,部分可见胞内颗粒释放现象(见图1)。与正常对照组比较,D-IBS患者MC数量明显增多(4.43±0.21) vs (2.12±0.27)(P<0.05)。

图1 两组MC HE染色图

3 讨论

肠道MC活化是IBS人群重要特征之一[4],研究发现,在IBS人群中,小肠及大肠MC分布均增多,进一步研究发现,MC的分布受性别[5]、不同肠段[6]及IBS亚型影响,其中,与便秘型IBS比较,D-IBS患者肠道MC分布更多[7-8]。MC活化后可以脱颗粒释放一系列炎症因子,如蛋白酶、前列腺素、组胺、细胞因子等,研究发现,IBS患者肠道中MC分布更靠近肠神经末梢,并且与内脏痛觉过敏密切相关[9]。进一步研究发现,MC释放的相关物质可以活化肠神经元[10],其中,多种细胞因子,如IL-6、IL-8、TNF-α等可以调控肠道动力及肠道感觉神经元,参与IBS症状的产生[11]。在本研究中,D-IBS患者回盲部MC数量增多,与前期研究结果一致。

多种途径参与介导MC活化,一般认为,当MC偶联交联有特异性抗原的IgE/IgG,或者游离免疫球蛋白轻链(IgFLC)后,自身可以被激活。此外,MC的活化尚与包括补体、神经递质、激素等在内多种物质有关。在IBS发病中,研究认为,来源于肠腔的食物抗原、致病菌等可以通过经典途径引起MC活化[12],而中枢应激则主要通过释放CRF参与介导MC活化。除此之外,已证实多种细胞因子与MC活化有关,但是其在IBS发病中的作用尚不清楚。

IL-4与MC的活化密切相关:IL-4的表达上调可以引起抗原特异性IgE产生,从而导致MC活化。目前,有关IBS外周血IL-4表达情况的相关临床研究较少,有研究认为,作为TH2类细胞因子,IL-4在IBS患者外周血表达与正常对照组比较无明显变化,然而,在基础研究方面,有文献报道,采用旋毛虫灌胃构建感染后肠易激综合征(PI-IBS)小鼠模型并检测肠道中IL-4的表达,结果发现其在肠道急性感染期表达上调,而随后表达恢复正常甚至降低,提示IL-4通过活化MC可能在IBS早期发挥作用。此外,近期有研究发现,肠道中树突状细胞活化可以通过刺激T淋巴细胞分泌IL-4,其可能通过活化MC参与IBS大鼠内脏高敏感的产生。在本研究中,D-IBD患者肠道中存在MC数量增多,同时伴随有外周血表达IL-4上调,提示IL-4通过活化MC可能在IBS的发生中发挥重要作用。

IL-9最初被认为是一种T淋巴细胞生长因子,从其细胞来源分析,包括Th2类细胞、Th9细胞、Th17细胞、Treg细胞及其MC等在内的多种细胞均可以分泌IL-9,其中,MC是分泌IL-9的主要细胞类型,其可以通过自分泌的形式增加MC表面FceRIα的表达,促进细胞表面IgE交联,启动下游信号,从而引起MC活化并脱颗粒释放组胺等炎性介质,形成正反馈进一步促进IL-9分泌,从而促进免疫应答中MC的生长和增殖。目前,有关IL-9与IBS关系目前未见报道,本研究发现,D-IBS患者外周血中IL-9表达显著升高,并且伴随有肠道MC数量增加,提示D-IBS患者中,可能存在IL-9-MC-IL-9的正反馈调节方式,IL-9本身是引起MC活化的主要因子,而MC活化后,又进一步促进IL-9的分泌。

综上所述,D-IBS患者外周血IL-4及IL-9表达上调,并伴随有肠道MC数量增多,提示IL-4及IL-9介导的MC活化可能在D-IBS发病中发挥重要作用。当然,本研究尚存在的不足之处:仅观察D-IBS患者外周血中IL-4及IL-9的表达水平,而肠黏膜中相关细胞因子的表达变化并未检测,且其对象仅为D-IBS患者,MC相关细胞因子在IBS其他亚型中的表达变化尚需要更深入的研究进行探讨。

[1] Sperber AD, Dumitrascu D, Fukudo S, et al.The global prevalence of IBS in adults remains elusive due to the heterogeneity of studies: a Rome Foundation working team literature review.Gut, 2016.Epub ahead of print.

[2] Zhang L, Song J, Hou X.Mast Cells and Irritable Bowel Syndrome: From the Bench to the Bedside.J Neurogastroenterol Motil, 2016, 22(2):181-192.

[3] Douglas DA. RomeⅢ-the functional gastrointestinal disorders.3rded. Mclean, VA:Degnon Associates Inc, 2006.

[4] Wouters MM, Vicario M, Santos J.The role of mast cells in functional GI disorders.Gut, 2016, 65(1):155-168.

[5] Cremon C, Gargano L, Morselli-Labate AM, et al.Mucosal immune activation in irritable bowel syndrome: gender-dependence and association with digestive symptoms.Am J Gastroenterol, 2009, 104(2):392-400.

[6] Song J, Zhang L, Bai T, et al.Mast cell-dependent mesenteric afferent activation by mucosal supernatant from different bowel segments of guinea pigs with post-infectious irritable bowel syndrome.J Neurogastroenterol Motil, 2015, 21(2):236-246.

[7] Philpott H, Gibson P, Thien F.Irritable bowel syndrome-an inflammatory disease involving mast cells.Asia Pac Allergy, 2011, 1(1): 36-42.

[8] Goral V, Kucukoner M, Buyukbayram H.Mast cells count and serum cytokine levels in patients with irritable bowel syndrome.Hepatogastroenterology 2010, 57(101):751-754.

[9] Barbara G, Stanghellini V, De Giorgio R, et al.Activated mast cells in proximity to colonic nerves correlate with abdominal pain in irritable bowel syndrome.Gastroenterology, 2004, 126(3):693-702.

[10] Buhner S, Li Q, Vignali S, et al.Activation of human enteric neurons by supernatants of colonic biopsy specimens from patients with irritable bowel syndrome.Gastroenterology, 2009, 137(4): 1425-1434

[11] Barbara G, Wang B, Stanghellini V, et al.Mast cell-dependent excitation of visceral-nociceptive sensory neurons in irritable bowel syndrome.Gastroenterology, 2007, 132(1):26-37

[12] Kalliomäki MA.Food allergy and irritable bowel syndrome.Curr Opin Gastroenterol, 2005, 265(13):708-711.

Objective To investigate the level of serum IL-4 and IL-9 in D-IBS patients as well as the number of MC in colon. Methods 30 D-IBS patients according to Rome III diagnostic criteria were enrolled in the study,and 30 healthy individuals as a normal control. Toluidine blue staining was used to determine the number of mast cells(MCs). Expression of IL-4 and IL-9 in serum were measured by enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA). Results The number of colonic MC in D-IBS group was more than that in control group(4.43±0.21vs2.12±0.27)(P<0.05). Expression of serum IL-4 and IL-9 in D-IBS group were higher than that in control group(42.76±5.71 vs21.19±6.17,30.43±7.45 vs26.74±5.12)(P<0.05).Conclusions The hypothesis was supported that the increased expression of serum IL-4 and IL-9 may lead to mast cells degranulation,which resulting in the clinical symptoms of D-IBS.

Irritable bowel syndrome Mast cell Interleukin-4 Interleukin-9

321000 浙江省金华市中心医院消化科

猜你喜欢

孔内活化外周血
无Sn-Pd活化法制备PANI/Cu导电织物
外周血B细胞耗竭治疗在狼疮性肾炎中的应用进展
论非物质文化遗产“活化”传承
某水库大坝右岸绕坝渗流监测性态分析
工程地质钻探孔内事故的处理及预防探讨
小学生活化写作教学思考
如何积累小学生活化作文素材
钻探孔内事故及其处理浅议
煤田地质钻探中孔内情况及事故处理措施
冠心病患者外周血SIRT1 mRNA的表达及氨氯地平对其影响