糖皮质激素诱导重组转基因二元载体pElrLEG的构建
2015-12-22王宏归严秋香周春洪
王宏归,黄 晨,姜 雅,严秋香,周春洪
(1.扬州大学环境科学与工程学院,江苏扬州225127;2.扬州大学测试中心,江苏扬州225009)
常见的诱导型载体有四环素类、糖皮质激素类、雌激素类、酒精类、蜕皮(Ecdysone)激素类、金属类。这些类型的诱导载体各有优劣。四环素诱导型载体,其四环素使用量大,不仅对细胞产生毒害,而且对环境也会造成危害;雌激素诱导型载体,由于雌激素在植物体内不易扩散,局部诱导性强,因此不适宜对整株植物诱导;蜕皮激素诱导型载体,其缺点是叶片对蜕皮激素吸收差;酒精诱导型载体,其缺点:酒精对植物有毒害作用,且易挥发;铜诱导型载体,诱导素元铜对细胞有毒害作用,且其扩散有限;地塞米松是糖皮质激素诱导型表达载体的诱导剂,不仅无毒,而且可以高效地被运输到植物的各个组织。
正因为地塞米松具有以上优点,所以糖皮质激素诱导型表达载体适合用于植物转基因。目前研究大部分都是将GR-Cre重组酶片段和Loxp位点分别构建在2个Ti质粒的T-DNA上,要实现Loxp位点的重组,必须将2个质粒的转基因植株进行杂交,如果将GR-Cre重组酶片段和Loxp位点同时构建在同一个载体上,那么Loxp位点的重组无需通过杂交,这样既可以节省时间也可以减少工作量[1-3]。
由于重组酶能使Loxp位点的DNA发生重组,而DNA位于细胞核内,因此,Gre只能在细胞核内起作用。Cre与GR的融合蛋白,在不外加地塞米松时,GR-Cre通过GR结合在内质网上,DNA重组不能发生;当有地塞米松时,GR-Cre通过GR与地塞米松结合,使得GR-Cre从内质网上脱落,进入细胞核内,结合到Loxp位点上,引发重组[4-5]。在Loxp位点之间还含有一个Gateway cassette和多克隆位点(MCS),Gateway克隆技术的优点是不受酶切位点的限制,该载体的Gateway cassette含有attR1和attR2两个重组位点,这个位点用于克隆不同的启动子,而多克隆位点(MCS)位于Gateway cassette的后面,用于目的基因的克隆[6]。位于loxP位点之间的DNA,将在外加地塞米松的情况下,引发DNA重组而被敲除[7-11]。
1 材料与方法
1.1 材料 试验所用菌株是DH5α 与DB3.1,DB3.1用于进行克隆或者扩繁含有Gateway片段的质粒[6]。质粒是pJawoh18-RNAi、pCre、pUC57。限制性内切酶及 T4DNA 连接酶均购自于NEB公司。PCR引物由primer5设计,PrimerSTAR TM HS Polymerase购自于TaKaRa公司。试验中使用的引物:GR-Cre F:CGGGCTAGCATGTCCAATTTACTGACCGTACAC,R:CGG CCATGGTCATTTTTGATGAAACAGAAGCTT,2 059 bp;GatewayF:CGGCGTACGATCACAAGTTTGTACAAAAAAGCT GA,CassetteR:CGGGGTACCACCACTTTGTACAAGAAAG CTG1,1 706 bp。
1.2 方法 PCR反应体系:模板DNA 0.5 μl,正反向引物(10 μmol/L)各 1 μl,10 × buffer 5 μl,dNTPs(10 mmol/μl)5 μl,DNA 聚合酶 0.5 U,加水补齐 50 μl。酶切体系:DNA 1 μg,buffer 2 μl,内切酶各加1 U,加水补齐20 μl,37 ℃酶切过夜,连接体系:载体:目的片段为 1∶3~1∶9,T4连接酶 1 U,buffer 2 μl,加水补齐 20 μl,4 ℃连接过夜。
2 结果与分析
2.1 Loxp-nos-Loxp(XhoI-SofI-Loxp-NheI-NcoI-NOS-BsiwI-KpnI-StuI-BgIII-MfeI-AatII-1xMyc-Loxp-SpeI)片段的合成 Loxp-nos-Loxp(南京金斯瑞生物科技公司合成)是以XhoI及SpeI位点克隆在pUC57载体上。该片段含有2个同向Loxp位点,NOS终止信号序列位于NcoI与BsiwI位点之间。Myc标签用于蛋白表达检测,多克隆位点用于克隆基因(图1)。
2.2 工程质粒的构建 以pJawoh18-RNAi二元载体为骨架,利用XhoI及SpeI酶切位点将Loxp-nos-Loxp克隆到pJawoh18-RNAi载体上,即pElrL载体(图2)。利用GR-Cre的引物从pCre载体[12-13]上扩增 GR-Cre片段,再利用 NheI与NcoI酶切位点,将GR-Cre克隆到pElrL载体上,即pElrLC载体(图2)。将Gateway扩增片段,经BsiwI与KpnI酶切后并回收,并克隆至pElrLC上,即pElrLCG载体(图2)。
3 讨论
Cre是从噬菌体P1分离出来的DNA特异位点重组酶。Loxp位点是Cre识别位点,其最早也是在P1噬菌体中被发现。loxP在两端有13个反向重复的碱基,中间核心序列是8个非回文结构的碱基,共34个碱基。Cre重组酶识别并结合在loxP位点的两端,并从中间核心序列区将loxP切开。2个同向的loxP位点,在重组酶的作用下将2个loxP切开从而产生4个黏性末端,loxP位点之间的序列会自我连接成环,从而从基因组中环出丢失。
pElrLCG该载体的优点:①地塞米松作为诱导化学物质对植物无毒害作用,而且可以高效地被运输到植物的各个组。②该载体可以同时使用Gateway克隆技术以及常规酶切连接克隆技术。③GR-Cre重组酶表达后,可以通过是否施加地塞米松来控制Cre的入核,从而人为控制何时把转入的基因从基因组中删除掉。④该载体在杂交育种中也有很大潜力,如花粉不育的性状优良的母本,利用含有目的基因的载体即可得到花粉可育(转基因)和花粉不育(转入的目的基因环出丢失)的植株,这样花粉可育的植株可以用来繁殖种子,而花粉不育的植株可以用作杂交育种的母本。⑤该载体的Myc标签可以用于检测转入的基因是否表达。⑥该载体在施加地塞米松诱导后,GR-Cre进入核引发Loxp位点重组,Loxp位点之间的DNA片段从基因组里环出,由于环出的DNA片段包含了GR-Cre以及转入的基因,而又不含有启动子与3'末端加尾信号。因此,只要Loxp位点重组发生,GR-Cre及目的基因的转录即终止。总之,该载体在实现转基因,可以选择性地关闭/删除目的基因。
[1]VIVI K,MAKOTO M,KAZUNARI T.Control of siRNA expression using the Cre-loxPrecombination system[J].Nucleic acids research,2004,32(7):66 -66.
[2]VAN DUYNE G D.A structural view of cre-loxP site-specific recombination[J].Annual Review of Biophysics and Biomolecular Structure,2001,30:87-104.
[3]SHAIKH A C,SADOWSKI P D J.The Cre Recombinase Cleaves the lox site intrans[J].Biol Chem,1997,272(9):5695 -5702.
[4]WALDEN R,FRITZE K,HAYASHI H,et al.Activation tagging:a means of isolating genes implicated as playing a role in plant growth and development[J].J Plant Mol Biol,1994,26:1521 -1528.
[5]KACZMARCZYK S J,GREEN J E.A single vector containing modified crerecombinase and LOX recombination sequences for inducible tissuespecific amplification of gene expression[J].Nucl.Acids Res,2001,29(12):56.
[6]CURTIS M D,GROSSNIKLAUS U A.Gateway cloning vector set for highthroughput functional analysis of genes in plant[J].Plant Physiol,2003,103(2):462-469.
[7]JASINSKIENE N,COATES C J,ASHIKYAN A,et al.High efficiency,sitespecific excision of a marker gene by the phage P1 cre-loxP system in the yellow fever mosquito,Aedes aegypti[J].Nucl Acids Res,2003,31(22):147.
[8]JULLIEN N,SAMPIERI F,ENJALBERT A,et al.Regulation of Cre recombinase by ligand-induced complementation of inactive fragments[J].Nucl Acids Res,2003,31(21):131.
[9]LAUTH M,SPREAFICO F,DETHLEFFSEN K,et al.Stable and efficient cassette exchange under nonselectable conditions by combined use of two site-specific recombinases[J].Nucl acids res,2002,30(21):115.
[10]OW D W.Recombinase-directed plant transformation for thepost-genomic era[J].Plant molecular biology,2002,48:183 -200.
[11]RAMACHANDRAN S,HIRATSUKA K,CHUA N H.Transcription factors in plant growth and development[J].Curr Opin Genet Dev,1994,4(5):642 -646.
[12]POGORELKO G V,FURSOVA O V,OGARKOVA O A,et al.New vector system for induction of gene expression in dicotyledonous plants[J].Russian journal of genetics,2007,43(2):194 -201.
[13]POGORELKO G V,FURSOVA O V,OGARKOVA O A,et al.A new technique for activation tagging in Arabidopsis[J].Gene,2008,414(1/2):67-75.