自噬对多发性骨髓瘤细胞增殖的影响
2015-12-13高灵素虞国慧
高灵素,虞国慧
(安徽省六安市人民医院,安徽六安 215004)
多发性骨髓瘤(MM)是造血系统恶性肿瘤,异常的浆细胞能分泌大量异常的单克隆免疫球蛋白[1],正常途径难以降解异常克隆的免疫球蛋白,异常M蛋白会聚集在细胞的内质网内。能诱导细胞内产生未折叠蛋白反应(UPR),即大量未折叠或错误折叠的蛋白在内质网产生,进而会导致细胞死亡。诱导细胞自噬(autophagy)则是MM细胞保护其免受未折叠蛋白影响的重要途经之一[2-3],本研究观察体外经自噬诱导及阻断剂作用后MM细胞增殖能力的变化,并检测自噬相关调节基因的变化,从不同角度探讨MM的发病机制。
1 材料和方法
1.1 细胞株来源及细胞分组 本实验使用细胞株均由苏州大学邱玉华教授惠赠;实验过程中,U266细胞随机分为正常培养细胞组、雷帕霉素处理组、3-MA处理组,对照组如下:无血清培养条件下的U266细胞组、无血清培养条件下雷帕霉素处理U266细胞组、无血清培养条件下3-MA处理U266细胞,正常培养和无血清条件下培养的Jurkat细胞。雷帕霉素和3-MA药物浓度均为1 000 μg·L-1。
1.2 CCK8法检测细胞活力 调整细胞密度为2×108·L-1,接种于 96 孔培养板,立即加入 10 μL CCK-8试剂,后分别间隔24 h加入CCK-8试剂,直至培养4 d,加入试剂后均继续在培养箱内培养3 h,取出后在450 nm波长处测定各实验分组的吸光度,根据吸光度绘制增殖曲线。
1.3 细胞凋亡水平及自噬泡测定 U266细胞以2×108·L-1密度接种于培养瓶,按实验分组分别加入雷帕霉素及3-MA处理,于正常培养的24及72 h收集细胞,采用流式细胞术检测细胞凋亡水平。培养96 h后离心洗涤去除处理因素,继续培养48 h,检测各实验组细胞内凋亡水平。同时检测对照组U266细胞内凋亡率。Atg8为自噬小体形成的第2个泛素样蛋白结合系统,可以特异性的与MDC结合,因此,我们通过荧光染色进行标记,在荧光显微镜下可见浆细胞核周区域点状结构荧光。培养24及72 h时均取少量U266细胞进行MDC染色,孵育15 min后置于荧光显微镜下观察染色情况。
1.4 免疫印迹分析细胞内LC3蛋白水平 按实验分组分别收集培养24及72 h的U266细胞,按操作说明提取细胞内总蛋白,统一调整所提取的各组蛋白浓度至4 g·L-1。每孔加入60 μg蛋白进行蛋白凝胶电泳(SDS-PAGE)。设置电泳的电压为恒压70 mV,放入电泳槽内,直至蛋白电泳至分离胶底部;取出凝胶,按顺序放置好纤维素膜,在90 mV条件下在转移槽内转移40 min。取下纤维素膜,脱色摇床上用含5%的脱脂奶粉的TBST封闭1 h。TBST清洗3次,将一抗至1∶1000的浓度(LC3∶兔抗人IgG),在4℃条件下孵育过夜,然后再次用TBST清洗3次,稀释辣根过氧化物酶标记的二抗(1∶1000)与纤维素膜作用1 h,反应后TBST清洗共3次。使用化学发光法显影于X胶片上。样本的免疫印迹条带均与同一样本的内参比较后作统计学分析。
1.5 自噬相关基因 mtor、Beclin1、Atg5分析 分别收集培养24及72 h的各实验组细胞,采用RNeasy kit(Qiagen)试剂盒提取U266细胞RNA样本,设置反应条件,每次取试验各组细胞1 μg RNA进行逆转录,按同等剂量cDNA进行PCR反应。取PCR产物4 μL,加入指示剂 5 × Loading Buffer 2 μL,120 V,100 mA下进行凝胶电泳30 min。结束后进行凝胶成像仪成像并保存结果。引物序列由上海生物工程公司设计并合成,以β-actin为内参(表1)。操作按说明进行,PCR共32个循环。
1.6 统计方法 数据以均数±标准差表示,应用SPSS 17.0软件进行分析。细胞增殖及细胞凋亡率采用t检验,以α=0.05为检验水准。
表1 引物序列及片段大小
2 结果
2.1 自噬水平变化对MM细胞增殖的作用 根据绘制的增殖曲线我们发现,无血清培养条件下Jurkat细胞增殖基本停止,显著低于正常对照及无血清培养U266细胞。我们的实验结果表明,3-MA或雷帕霉素处理组细胞的增殖水平与对照组相比,在培养24及72 h有显著区别(P<0.05),故确定实验时间点为24及72 h。而正常条件下培养24 h,雷帕霉素及3-MA处理的细胞增殖水平有呈上升趋势,较未处理组缓慢。但随着培养时间延长至72 h,处理组细胞增殖处于缓慢上升趋势(图1)。
2.2 药物处理对自噬水平的影响 自噬泡可以通过荧光染色后在电镜下观察到,如图所见,正常培养U266细胞核周围环绕蓝色点状荧光,加入雷帕霉素处理24 h后细胞核周荧光增多,表明与正常培养组相比自噬水平有增多。自噬抑制剂3-MA作用24 h后U266细胞核周荧光减少,提示自噬泡减少,自噬水平减低。而继续延长培养时间后观察发现,培养72 h雷帕霉素处理细胞内自噬水平明显增高。而延长培养时间至72 h 3-MA处理组细胞内核周蓝色点状荧光同样增多(图2)。
2.3 U266细胞凋亡水平检测 加入雷帕霉素或3-MA的U266细胞培养24 h后检测凋亡水平。我们发现各组细胞凋亡水平均升高,分别为1.7% ±0.2%(对照组);16.8% ±0.61%(3-MA 处理组);19.1% ±1.0%(雷帕霉素处理组);且 P <0.01,延长培养时间至72 h,雷帕霉素处理组U266细胞凋亡水与培养24 h无明显变化16.9% ±0.46%,而3-MA处理组凋亡水平明显下降9.0% ±0.70%(图3)。
2.4 正常培养U266细胞内LC3蛋白表达 LC3蛋白为自噬相关蛋白,在自噬泡形成过程中始终可检测到,当哺乳动物发生自噬时,随着自噬泡的形成,细胞内LC3的含量明显增加。本实验经蛋白质印迹法检测发现U266细胞内存在低水平表达的LC3蛋白,并发现其高于正常培养的Jurkat细胞(图4)。
2.5 药物处理后正常培养下U266细胞自噬相关基因表达的影响 正常培养条件下U266细胞培养瓶内加入雷帕霉素培养24 h,通过RT-PCR检测发现mtor基因表达水平上升,而加入3-MA培养24 h后mtor基因表达水平也同样呈上升表现。而培养至72 h正常培养组、雷帕霉素处理组及3-MA处理组mtor基因表达水平继续上升(图5)。同时检测Atg5及Beclin1基因水平发现,Atg5基因表达趋势与mtor基因一致(图6)。而3-MA处理细胞组内Beclin1基因表达水平均较其余2组低(图7)。内参如下(图8),各组数据均与同一内参进行比较。
3 讨论
多发性骨髓瘤细胞是一种恶性浆细胞病,其肿瘤细胞起源于骨髓中的浆细胞,其特征为骨髓浆细胞异常增生伴有单克隆免疫球蛋白或轻链(M蛋白)过度生成,极少数患者可以是不产生M蛋白的未分泌型MM。在一般情况下细胞内存在的异常蛋白能导致细胞死亡,细胞能通过多种途径降解蛋白,研究发现自噬具有降解异常蛋白的能力。自噬可以降解胞内堆积的毒性蛋白质,故而我们推断自噬是维持多发性骨髓瘤细胞发生、发展的重要因素。已有研究证实抗肿瘤药物通过自噬途径起作用[4]。但同时研究发现,自噬对细胞的生存和增殖起到不利的作用,过度的自噬能导致细胞死亡[5]。
研究资料发现,Hoang等研究了MM细胞株中的自噬情况,结果表明其中存在一定水平的自噬现象[6],当细胞暴露于蛋白酶体抑制剂硼替佐米、受到内质网应激,或用mTOR抑制剂处理时,细胞内的自噬水平会上升,帮助在上述环境下维持细胞长期生存。同样的,研究证明饥饿条件同样可抑制mTOR蛋白的活化,进而诱导细胞自噬发生,通过对自身细胞内各种营养元素物质的降解来维持细胞增殖[7]。雷帕霉素为现有的mTOR蛋白抑制剂,研究发现,培养液内加入雷帕霉素可诱导自噬的发生[8-9]。同时研究发现,自噬过程中有Ⅰ/Ⅲ型磷脂酰肌醇3磷酸激酶系统参与。3-MA可通过抑制Ⅲ型磷脂酰肌醇3磷酸激酶(classⅢPI3K)来抑制自噬的发生,所以该药物广泛作为自噬抑制剂使用。然而又有研究发现,如果在正常培养条件下延长3-MA和骨髓瘤细胞的作用时间,其自噬水平反而呈明显上调状态[10]。这可能是由于3-MA同时对I型PI3K系统也有抑制作用,起到诱导自噬的作用。故3-MA对自噬起到抑制及诱导的双重作用。
多发性骨髓瘤细胞内存在基础自噬,为了研究其对细胞增殖的作用,我们绘制了饥饿培养条件下U266细胞及Jurkat细胞的增殖曲线。结果发现在体外饥饿条件下U266细胞仍具有增殖能力直至培养72 h。而对照组Jurkat细胞的增殖成低平曲线,基本停止增殖;在血清培养液条件下加入雷帕霉素及3-MA,细胞增殖水平较未加入试剂的U266细胞增殖水平明显低下。
本实验研究了 mtor、Atg5及 Beclin1基因在U266细胞内的表达。雷帕霉素可上调细胞内自噬,而3-MA在处理24 h时对自噬起到抑制的作用,到培养72 h,检测自噬相关基因表达我们发现示3-MA反而对自噬起到诱导作用。这就证明了培养时间延长到一定程度,3-MA对I型磷脂酰肌醇3磷酸激酶系统的抑制起主导作用,诱导自噬发生。Beclin1蛋白是Ⅲ型磷脂酰肌醇3磷酸激酶系统的组成部分,故Beclin1基因与Atg5基因相比,3-MA处理组培养24及72 h后Beclin1基因表达水平均较正常培养及雷帕霉素处理组低。故而我们可以得出结论,提示在培养过程中3-MA对Ⅲ型PI3K系统的抑制作用一直存在,故而导致Beclin1基因表达水平下降。
虽然我们的实验发现正常培养条件下雷帕霉素及3-MA对细胞内自噬的影响不同,但多发性骨髓瘤细胞的增殖曲线为相同趋势。故可推测过度诱导自噬及抑制自噬均可能造成细胞死亡,抑制细胞增殖。接下来本实验研究细胞内凋亡水平。
自噬与凋亡均属于程序性细胞死亡范畴,但越来越多的研究发现二者在某些情况下存在着联系[11-12],有着相互协同发展或拮抗的作用。本实验发现雷帕霉素及3-MA处理24 h后骨髓瘤细胞内内凋亡水平均升高。但是到培养72 h时,3-MA处理的细胞组内凋亡水平较培养24 h时下降。表明培养时间延长,培养液内营养物质逐渐降解,接近饥饿环境,3-MA通过对抗细胞凋亡来延长细胞生存。
综上所述,自噬可促进MM细胞增殖,并维持其长期生存,但自噬抑制剂、阻断剂如雷帕霉素及3-MA也可同时抑制MM细胞增殖,促进细胞凋亡。证实自噬对MM细胞生存具双重作用,或双向调节左右,有必要进一步深入探讨,可能对多发性骨髓瘤的治疗提供新的治疗靶点。
[1]Barnhart BC,Simon MC.Taking aim at translation for tumor therapy[J].J Clin Invest,2007,117:2385-2388.
[2]White E,DiPaola RS.The double-edged sword of autophagymodulation in cancer[J].Clin Cancer Res,2009,15:5308-5316.
[3]Hφyer-Hansen M,Jäättelä M.Connecting endoplasmic reticulum stress to autophagy by unfolded protein response and calcium[J].Cell Death and Differentiation,2007,14:1576-1582.
[4]Zhang X,Chen LX,Ouyang L,et al.Plant natural compounds:targeting pathways of autophagy as anti-cancer therapeutic agents[J].Cell Prolif,2012,45(5):466-476.
[5]Shigeomi Shimizu,Tatsushi Yoshida,Masatsune Tsujioka,et al.Autophagic Cell Death and Cancer[J].Int J Mol Sci,2014,15:3145-3153.
[6]Hoang B,Benavides A,ShiY,et al.Effect of autophagy on multiple myeloma cell viability[J].Mol Cancer Ther,2009,8:1974-1984.
[7]Scott RC,Schuldiner O,Neufeld TP.Role and regulation of starvation-induced autophagy in the Drosophila fat body[J].Dev Cell,2004,7:167-178.
[8]Sarbassov DD,Ali SM,Sabatini DM.Growing roles for the mTOR pathway[J].Curr Opin Cell Biol,2005,17:596-603.
[9]Copp J,Manning G,Hunter T.TORC-specific phosphorylation of mammalian target of rapamycin(mTOR):phospho-Ser2481 is a marker for intact mTOR signaling complex 2[J].Cancer Res,69:1821-1827.
[10]Wu YT,Tan HL,Shui G,et al.Dual Role of 3-Methyladenine in Modulation of Autophagyvia Different Temporal Patterns of Inhibition on Class I and III Phosphoinositide 3-Kinase[J].Journal of biological chemistry,2010,285:10850-10861.
[11]Maiuri MC,Zalckvar E,Kimchi A,et al.Self-eating and self-killing:crosstalk between autophagy and apoptosis[J].Nat Rev Mol Cell Biol,2007,8:741-752.
[12]Gordy C,He YW.The crosstalk between autophagy andapoptosis:where does this lead?[J].Protein Cell,2012,3:17-27.