菊粉对反式脂肪酸致小鼠胰岛素抵抗的影响
2015-12-07李晓月张晶晶张红建肖安红
李晓月,张晶晶,张红建,周 聪,肖安红,2,*
(1.武汉轻工大学食品科学与工程学院,湖北 武汉 430023;2.湖北省农产品加工与转化重点实验室,湖北 武汉 430023)
菊粉对反式脂肪酸致小鼠胰岛素抵抗的影响
李晓月1,张晶晶1,张红建1,周 聪1,肖安红1,2,*
(1.武汉轻工大学食品科学与工程学院,湖北 武汉 430023;2.湖北省农产品加工与转化重点实验室,湖北 武汉 430023)
目的:研究菊粉对反式脂肪酸所致小鼠胰岛素抵抗的影响。方法:采用反式脂肪酸饲料诱导建立小鼠高脂血症模型,分别给予低、中、高3 种剂量的菊粉,测定小鼠胰岛素抵抗相关指标。结果:反式脂肪酸的摄入导致小鼠血糖、血清胰岛素水平和胰岛素抵抗指数极显著增加(P<0.01),胰岛素敏感指数、胰岛β细胞功能指数和总超氧化物歧化酶活性极显著降低(P<0.01)。菊粉干预能够降低小鼠血糖水平和胰岛素抵抗指数,提高胰岛素敏感指数和增强胰岛β细胞功能,且菊粉高剂量干预组与反式脂肪酸组相比,差异均极显著(P<0.01),效果最好。结论:反式脂肪酸能够导致小鼠胰岛素抵抗,菊粉干预能够改善小鼠的胰岛素抵抗状况,且高剂量组效果最好。
反式脂肪酸;菊粉;小鼠;胰岛素抵抗;高脂血症
胰岛素抵抗(insulin resistance,IR)是指胰岛素靶器官如脂肪组织、肝脏、肌肉对胰岛素的敏感性降低[1]。“共同土壤学说”[2-4]认为IR普遍存在于糖尿病、高血压、血脂紊乱及肥胖等疾病中[2-5],是多种代谢性疾病的共同危险因素,是代谢紊乱的重要表现。氧化应激是指机体在遭受各种有害刺激时,体内高活性分子如活性氧自由基(reactive oxygen species,ROS)和活性氮自由基(reactive nitrogen species,RNS)产生过多,氧化程度超出氧化物的清除速度,氧化系统和抗氧化系统失衡,从而导致组织损伤[6]。氧化应激与IR关系密切,是IR的病理学基础之一[7]。反式脂肪酸(trans fatty acids,TFA)是具有反式构象碳-碳双键的所有非共轭不饱和脂肪酸的总称。研究表明,TFA的过多摄入会导致机体血脂异常及糖尿病等疾病[8]。
菊粉又称菊糖,主要来源于菊芋块根,是D-呋喃果糖经β-1,2-糖苷键聚合而成的一种果聚糖。菊粉是自然界中天然存在的可溶性膳食纤维之一,广泛存在于约3.6万 种植物中[9]。研究表明,每日摄食2 g菊粉对控制人的体质量,改善肠道功能,控制血糖水平及防止机体失调有很大帮助[10],因此,研究菊粉对IR的改善作用具有重要意义。
本实验以高脂血症-IR-氧化应激为主线,探讨菊粉对反式脂肪酸致高脂血症小鼠IR的影响。首先用反式脂肪酸饲料喂养小鼠,建立小鼠高脂血症模型,按人体推荐量[11]的5、10、20 倍设计菊粉低、中、高3 个剂量组对高脂血症模型小鼠进行灌胃,研究菊粉对反式脂肪酸诱导小鼠IR的影响。
1 材料与方法
1.1 动物、材料与试剂
昆明种雄性小鼠90 只,体质量(20±2)g,湖北省疾病预防控制中心提供,动物合格许可证编号:SCXK(鄂)2008-0005。
菊粉(纯度94.46%)基本成分(质量分数,下同):水分4.37%、蛋白质0.02%、脂肪1.1%、灰分0.13%、总糖98.24%、还原糖3.78%。
高密度脂蛋白胆固醇(high density lipoprotein cholesterol,HDL-C)试剂盒、低密度脂蛋白胆固醇(low density lipoprotein cholesterol,LDL-C)试剂盒、甘油三酯(triglyceride,TG)试剂盒、总胆固醇(total cholesterol,TC)试剂盒、总超氧化物歧化酶(total superoxide dismutase,T-SOD)试剂盒 南京建成生物工程研究所;胰岛素酶联免疫吸附试剂盒 上海博古生物科技有限公司。
小鼠饲料:普通基础饲料由湖北省疾病预防控制中心提供,高脂饲料和10% TFA饲料均为本实验自制[12]。饲料配方见表1。
表1 饲料配方及成分Table 1 Formula and ingredients of feeds %
1.2 仪器与设备
ELX800型酶标仪 美国Bio-Tek公司;血糖试纸、便携式血糖仪 北京怡成生物电子技术有限公司。
1.3 方法
1.3.1 高脂血症小鼠模型建立
实验采用普通高脂模型[13]和10% TFA高脂模型两种方法[14]。造模成功的标志为:血清TC含量>5.72 mmol/L,或血清TG含量>1.70 mmol/L,或TC含量>5.72 mmol/L且TG含量>1.70 mmol/L,或HDL-C含量<0.9 mmol/L[12]。
1.3.2 分组及喂养方法
实验初期小鼠适应性喂养,1 周后随机分为9 组,每组10 只(分组及饲养方法见表2)。4 周后,小鼠空腹24 h后取血测TG、TC、HDL-C、LDL-C水平,T-SOD活性、空腹血糖(fasting blood glucose,FBG)含量和空腹胰岛素(fasting insulin,FIN)水平。实验过程中小鼠自由饮水摄食,每日上午灌胃。饲养环境:温度18~22 ℃,相对湿度45%~60%、明暗12 h/12 h。
表2 实验小鼠分组Table 2 Experimental groups
1.3.3 各项指标的测定及计算方法
1.3.3.1 血清学指标的测定
禁食24 h后,小鼠眼眶取血,离心取上清液,测TC、TG、HDL-C、LDL-C水平,T-SOD活性及FIN水平。
1.3.3.2 FBG含量的测定
小鼠空腹24 h后,鼠尾取血,采用怡成血糖仪和血糖试纸进行测定。
1.3.3.3 胰岛素抵抗指数(homeostasis model assessmentinsulin resistance, HOMA-IR)测定
根据已测定的FBG和FIN水平,由公式(1)计算HOMA-IR。
1.3.3.4 胰岛β细胞功能指数(homeostasis model assessment-β,HOMA-β)测定
根据已测定的FBG和FIN水平,由公式(2)计算HOMA-β。
1.3.3.5 小鼠胰岛素敏感指数(insulin sensitivity index,ISI)测定
根据已测定的FBG和FIN水平,由公式(3)计算ISI。
1.4 数据处理
2 结果与分析
2.1 高脂血症小鼠造模结果
表3 高脂血症小鼠造模结果Table 3 Successful establishment of hyperlipidemia mouse model
由表3可知,HF组TC>5.72 mmol/L、TG>1.70 mmol/L;TFA组TC>5.72 mmol/L,TG>1.70 mmol/L,HDL-C<0.9 mmol/L。因造模成功的标志为:血清TC>5.72 mmol/L,或血清TG>1.70 mmol/L,或TC>5.72 mmol/L且TG>1.70 mmol/L,或HDL-C<0.9 mmol/L[12]。由以上结果可知,HF组和TFA组高脂血症小鼠造模成功。且TFA组各项指标与HF组相比差异极显著(P<0.01),说明TFA与HF相比对高脂血症有加剧作用。
2.2 TFA对高脂血症小鼠IR的影响
正常血糖钳夹技术是目前国际公认的检测胰岛素敏感性的方法,被认为是检测胰岛素抵抗的金标准[15]。但由于其操作过程复杂、费用昂贵而使得其应用受限。稳态模型和胰岛素敏感指数[16-17]由于操作和测定过程简单、准确性高而成为临床上评价IR的主要标准。稳态模型的两个主要指标HOMA-IR和HOMA-β分别与机体IR程度和胰岛β细胞功能存在良好的相关性[18],HOMA-IR升高说明IR程度增强,HOMA-β降低表明胰岛β细胞功能减弱。
人体代谢活动可以产生少量ROS,当机体受到损伤时,ROS产生过多或清除减少,导致机体抗氧化防御系统失衡,造成机体氧化应激。高脂饮食能诱导机体处于氧化应激状态,导致机体氧化损伤,干扰骨骼肌组织对葡萄糖的摄取而诱导IR[19-21]。T-SOD是机体内酶类主要自由基清除剂之一,可减轻自由基对生物膜和其他组织造成的损伤。因此可以利用T-SOD活力高低间接反映机体抗氧化系统的功能水平[22]。
表4 TFA对高脂血症小鼠IR的影响Table 4 Effects of transtrans fatty acids on insulin resistance in mice
由表4可知,HF、TFA两组与C组相比,FBG、FIN水平和HOMA-IR显著升高(P<0.01),ISI、HOMA-β和T-SOD活力显著降低(P<0.01)。说明高脂血症小鼠产生了IR。TFA组与HF组相比,FBG水平,HOMA-IR、ISI和T-SOD活力差异均极显著(P<0.01),HOMA-β显著降低(P<0.05),FIN水平升高但差异并不显著(P>0.05)。可能是由于喂养时间过短,在FBG水平极显著升高的情况下,胰岛β细胞无须分泌大量的胰岛素来满足机体代谢的需要[23]。以上结果说明TFA更易导致高脂血症小鼠IR。
2.3 菊粉对高脂血症小鼠IR影响的结果及分析
2.3.1 菊粉对小鼠血糖水平的影响
表5 菊粉对反式脂肪酸致高脂血症小鼠IR的影响Table 5 Effect of inulin on insulin resistance in trans fatty acids-fed mice
由表5可知,采用低、中、高3 种剂量的菊粉对高脂血症小鼠进行干预,均能不同程度地降低小鼠的FBG水平。其中,高剂量组的效果最好(P<0.01)。Kim等[24]使用含10 mmol/L葡萄糖和10 g/L菊粉的等渗电解质溶液(pH 7.4)对大鼠进行灌肠实验,结果表明灌注液中的菊粉能明显抑制空肠对葡萄糖的吸收(P<0.05),研究人员指出可能是菊粉提高了黏度,导致肠黏膜厚度增加,从而降低葡萄糖吸收的程度。
2.3.2 菊粉对小鼠血清胰岛素水平的影响
由表5可知,菊粉干预能够降低小鼠的FIN水平,但是差异并不显著(P>0.05)。Causey等[25]证明菊粉可以降低血糖水平(P<0.05),但是对胰岛素水平没有显著影响(P>0.05),其原因可能是菊粉添加量低且喂养时间短,不足以改善严重受损的胰岛β细胞的功能。
2.3.3 菊粉对小鼠ISI、HOMA-IR和HOMA-β的影响
由表5可知,菊粉干预增强了小鼠的ISI和HOMA-β,降低了小鼠的HOMA-IR。其中高剂量组效果最佳。Kumar等[26]发现麦麸和瓜尔胶能增强糖尿病大鼠的ISI,降低HOMA-IR,与本实验结果基本一致。
2.3.4 菊粉对小鼠抗氧化能力的影响
由表5可知,菊粉干预使小鼠的T-SOD活力极显著升高(P<0.01),增强了小鼠的抗氧化能力,且高剂量组的效果最好。原因可能是菊粉能够清除体内积累的自由基,减轻了过多自由基对机体的损伤。
3 结 论
添加10% TFA的高脂饲料可致小鼠高脂血症并能够诱导小鼠产生IR。菊粉能够改善小鼠的IR状况,且高剂量组效果优于中、低剂量组。菊粉可使高脂血症小鼠的抗氧化能力提高,从而缓解IR程度。
[1] 石梅兰, 李强翔. 大黄素在糖尿病胰岛素抵抗中的作用[J]. 中国老年学杂志, 2012, 32(19): 4351-4353.
[2] RESNICK H E, HOWARD B V. Diabetes and cardiovascular disease[J]. Annual Review of Medicine, 2002, 53(1): 245-267.
[3] ZEYDA M, STULNIG T M. Obesity, inflammation, and insulin resistance-a mini-review[J]. Gerontology, 2009, 55(4): 379-386.
[4] 杨晖, 李艺, 程玲, 等. 电针与饮食调整对营养性肥胖大鼠胰岛素抵抗的影响[J]. 中西医结合学报, 2007, 5(5): 546-549.
[5] CHEUNG O, SANYAL A J. Recent advances in nonalcoholic fatty liver disease[J]. Current Opinion in Gastroenterology, 2010, 26(3): 202-208.
[6] 赵丽. Nrf2/HO-1途径对高脂饮食诱导的大鼠胰岛素抵抗的保护作用和机制研究[D]. 西安: 第四军医大学, 2012: 25-26.
[7] SUCIU I, NEGREAN V, SAMPELEAN D. The oxidative stress in the development of diabetes chronic complications in the elderly[J]. Romanian Journal of Internal Medicine, 2003, 42(2): 395-406.
[8] 李璇, 郑建仙. 脂肪与心血管疾病相互关系最新进展及对食品工业的指导意义[J]. 食品与发酵工业, 1998, 24(1): 74-79.
[9] 许勤虎. 菊粉的功能及应用研究[J]. 食品工业科技, 2002, 23(增刊1): 141-145.
[10] 汤锋, 杨武, 王丽, 等. 菊粉功能特性的研究[J]. 食品工业科技, 2010, 31(5): 318-320.
[11] World Health Organization. Diet, nutrition and the prevention of chronic disease[R]. Geneva: WHO, 1991.
[12] 李晓月, 张晶晶, 张红建, 等. 玉米皮膳食纤维对反式脂肪酸致高脂血症小鼠脂代谢的影响[J]. 中国酿造, 2013, 32(11): 32-35.
[13] 张世卿, 佟丽. 胰岛素抵抗作用发生机制及实验模型的研究进展[J].中药新药与临床药理, 2012, 23(3): 364-368.
[14] 席路. 玉米皮膳食纤维对TFA致高脂血症小鼠血脂调节及抗氧化能力的研究[D]. 武汉: 武汉工业学院, 2011: 51-58.
[15] 柏建清. 有氧运动对大鼠胰岛素敏感性的时相性影响[J]. 中国老年学杂志, 2012, 32(20): 4467-4469.
[16] 李光伟, 潘孝仁, LILLIOJASS S, 等. 检测人群胰岛素敏感性的一项新指数[J]. 中华内科杂志, 1993, 32(10): 656-660.
[17] DUNCAN M H, SINGH B M, WISE P H, et al. A simple measure of insulin resistance[J]. The Lancet, 1995, 346: 120-121.
[18] 崔庆荣, 安小平, 康学东, 等. 黄金胶囊改善2型糖尿病胰岛素抵抗大鼠胰岛素敏感性研究[J]. 中国实验方剂学杂志, 2010(5): 150-152.
[19] MATSUZAWA-NAGATA N, TAKAMURA T, ANDO H, et al. Increased oxidative stress precedes the onset of high-fat diet-induced insulin resistance and obesity[J]. Metabolism, 2008, 57(8): 1071-1077.
[20] REBOLLEDO O R, MARRA C A, RASCHIA A, et al. Abdominal adipose tissue: early metabolic dysfunction associated to insulin resistance and oxidative stress induced by an unbalanced diet[J]. Hormone and Metabolic Research, 2008, 40(11): 794-800.
[21] LI Lanfang, LI Jian. Link between oxidative stress and insulin resistance[J]. Chinese Medical Sciences Journal, 2007, 22(4): 254-259.
[22] 高丹红. 叶黄素改善高脂饲料喂养大鼠动脉粥样硬化危险因素的初步研究[D]. 武汉: 华中科技大学, 2012: 36-38.
[23] MUNIYAPPA R, LEE S, CHEN H, et al. Current approaches for assessing insulin sensitivity and resistance in vivo: advantages, limitations, and appropriate usage[J]. American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism, 2008, 294(1): E15-E26.
[24] KIM M, SHIN H K. The water-soluble extract of chicory reduces glucose uptake from the perfused jejunum in rats[J]. The Journal of Nutrition, 1996, 126(9): 2236-2242.
[25] CAUSEY J L, FEIRTAG J M, GALLAHER D D, et al. Effects of dietary inulin on serum lipids, blood glucose and the gastrointestinal environment in hypercholesterolemic men[J]. Nutrition Research, 2000, 20(2): 191-201.
[26] KUMAR C M, RACHAPPAJI K S, NANDINI C D, et al. Modulatory effect of butyric acid-a product of dietary fiber fermentation in experimentally induced diabetic rats[J]. The Journal of Nutritional Biochemistry, 2002, 13(9): 522-527.
Effect of Inulin on Insulin Resistance Prevention in Trans Fatty Acids-Fed Mice
LI Xiaoyue1, ZHANG Jingjing1, ZHANG Hongjian1, ZHOU Cong1, XIAO Anhong1,2,*
(1. College of Food Science and Engineering, Wuhan Polytechnic University, Wuhan 430023, China; 2. Hubei Key Laboratory for Agro-processing and Transformation, Wuhan 430023, China)
Objective: To evaluate the effect of inulin on insulin resistance in trans fatty acids-fed mice. Methods: Inulin was given at low, medium and high doses. Results: The intake of trans fatty acids elevated fasting blood glucose, fasting serum insulin, insulin resistance index signifi cantly (P < 0.01), and reduced insulin sensitivity index, islet β-cell function and T-SOD signifi cantly (P < 0.01). Inulin reduced fasting blood glucose and insulin resistance index, and increased insulin sensitivity index and islet β-cell function, especially at the high dose, showing signifi cant differences (P < 0.01) when compared with the trans fatty acid group. Conclusion: Trans fatty acids can lead to insulin resistance in mice, and the intervention of inulin can improve the symptoms, in particular at the high dose.
trans fatty acids; inulin; mice; insulin resistance; hyperlipidemia
TS202.3;TS201.4
A
1002-6630(2015)01-0201-04
10.7506/spkx1002-6630-201501038
2014-03-04
国家高技术研究发展计划(863计划)项目(2010AA023003-01);武汉市科技计划项目(201220837298-5);武汉工业学院研究生创新基金项目(2012cx016)
李晓月(1989—),女,硕士研究生,研究方向为食品科学。E-mail:lixiaoyue-540@163.com
*通信作者:肖安红(1963—),女,教授,博士,研究方向为粮食油脂及植物蛋白。E-mail:1090106395@qq.com