GPR30下调对子宫内膜癌细胞及裸鼠移植瘤组织PI3K/AKT信号通路的影响*
2015-12-04雷冬梅郭瑞霞刘泇希乔玉环
雷冬梅,郭瑞霞,刘泇希,葛 新,乔玉环
1)郑州大学第三附属医院病理科 郑州450052 2)郑州大学第一附属医院妇产科 郑州450052
子宫内膜癌是女性生殖系统最常见的恶性肿瘤之一,其发生与雌激素密切相关[1]。G 蛋白偶联受体30(G protein-coupled estrogen receptor 30,GPR30)是一种新型雌激素受体,可以快速与微量雌激素结合,激活细胞内第二信使,通过更快的非基因组细胞信号转录途径对雌激素发生反应[2]。作者所在的课题组前期研究[3]表明,GPR30 在子宫内膜癌细胞系HEC-1A 和Ishikawa 中均有不同程度的表达。GPR30 可能通过激活PI3K/Akt 信号通路参与肿瘤的发生发展[4-5];应用PI3K 抑制剂可以抑制子宫内膜癌细胞的增殖,促进细胞凋亡[6]。该研究观察了下调GPR30 的表达对子宫内膜癌细胞及裸鼠移植瘤组织中PI3K/Akt 信号通路的作用,探讨GPR30 用作治疗子宫内膜癌新靶点的可能。
1 材料与方法
1.1 材料 人子宫内膜癌腺癌细胞系HEC-1A 和Ishikawa 由北京大学人民医院魏丽惠教授惠赠。BALB/c 裸鼠28只(5~6 周龄,雌性,SPF 级)购自北京维通利华实验动物技术有限责任公司,饲养于河南省实验动物中心。兔抗人GPR30 多克隆抗体购自英国Abcam 公司,Akt 和磷酸化Akt(p-Akt)抗体购自美国Santa Cruz 公司,DMEM 培养基和胰蛋白酶购自北京索莱宝科技有限公司,免疫组化染色SP 法检测试剂盒购自北京中杉金桥生物技术有限公司,脂质体2000 购自Invitrogen 公司,干扰质粒购自GriGene 公司。
1.2 Ishikawa 和HEC-1A 细胞中GPR30、Akt 和p-Akt 蛋白表达部位的检测 采用免疫细胞化学SP法检测。Ishikawa 和HEC-1A 细胞加入含体积分数10%胎牛血清的DMEM 培养基,置于37℃、体积分数5%CO2中静置培养。取对数生长期的Ishikawa和HEC-1A 细胞用胰蛋白酶进行消化,以5 ×105/孔接种于6 孔板,铺满80%时终止培养,并于体积分数10%中性甲醛中固定10 min,封闭孵育30 min 后滴加一抗(GPR30、Akt 和p-Akt 抗体均按1∶1 000稀释)孵育,4℃过夜,滴加二抗,DAB 显色后苏木素复染。以PBS 代替一抗作为阴性对照。结果判定标准:细胞膜、细胞质或细胞核内存在清晰的棕黄色颗粒者判定为阳性表达。
1.3 GPR30 表达下调后Ishikawa 和HEC-1A 细胞中GPR30 及p-Akt 蛋白表达水平的变化 将pGFP-V-RS(对照)或pGFP-V-RS-GPR30(干扰)分别用脂质体2000 转染Ishikawa 和HEC-1A 细胞,传代扩大培养,加入潮霉素筛选稳定细胞株。取对数生长期的稳定转染细胞,应用蛋白印迹法检测。离心收集细胞,加入适量苯甲基磺酰氟和细胞裂解液,冰上裂解,离心后取上清。制胶、上样、电泳、转膜、洗膜。一抗均按1∶1 000 稀释;二抗按1∶5 000 稀释。最后曝光并扫描各蛋白条带,具体操作见文献[4]。以p-Akt 与Akt 蛋白条带灰度值的比值表示p-Akt 蛋白的相对表达水平;以GPR30 与β-actin 蛋白条带灰度值的比值表示GPR30 蛋白的相对表达水平。实验重复3次。
1.4 裸鼠移植瘤组织中p-Akt 蛋白表达的变化28只裸鼠适应喂养3 d,分4组,每组7只。收集对数生长期的干扰组和对照组的Ishikawa 和HEC-1A细胞,接种于BALB/c 裸鼠右背部皮下,1 周左右可触及肿瘤小结节,当移植瘤生长至直径15~20 mm时,处死裸鼠,取部分肿瘤组织,用体积分数10%中性甲醛固定、切片。通过脱蜡、抗原修复后,加入血清封闭,分别添加p-Akt 一抗(按1∶1 000 稀释)、二抗(按1∶5 000 稀释),PBS 冲洗,滴加SP,加显色剂、复染、脱水、封片。以PBS 代替一抗作为阴性对照。结果判定标准:细胞质内有清晰的棕黄色颗粒者判定为阳性表达。
1.5 统计学处理 应用SPSS 17.0 处理数据,经方差齐性检验后,行两独立样本的t 检验分析对照组和干扰组两种细胞中GPR30 和p-Akt 蛋白表达水平的差异,检验水准α=0.05。
2 结果
2.1 Ishikawa 和HEC-1A 细胞中GPR30、Akt 和p-Akt 蛋白的表达部位 免疫细胞化学SP 法结果显示,Ishikawa 和HEC-1A 细胞中GPR30、Akt、p-Akt蛋白均在细胞质表达,呈棕黄色染色。见图1。
2.2 GPR30 表达下调后Ishikawa 和HEC-1A 细胞中p-Akt 及GPR30 蛋白表达水平的变化 结果见图2,表1、2。
2.3 裸鼠移植瘤组织中p-Akt 蛋白的表达 免疫组化结果(图3)显示,接种对照组肿瘤细胞的裸鼠移植瘤组织中p-Akt 的表达强于接种干扰组肿瘤细胞的裸鼠移植瘤组织。
图1 HEC-1A 和Ishikawa 细胞中2种蛋白的表达(SP,×200)
图2 Ishikawa 和HEC-1A细胞中GPR30 及p-Akt 蛋白的表达水平
表1 Ishikawa 细胞中GPR30、p-Akt 蛋白的表达水平
表2 HEC-1A 细胞中GPR30、p-Akt 蛋白的表达水平
图3 裸鼠移植瘤组织中p-Akt 蛋白的表达(SP,×200)
3 讨论
GPR30 基因位于7p22.3,并广泛表达于心脏、脑、淋巴、卵巢、乳腺、子宫、肝脏、肾脏等[7]组织中。有关GPR30 的表达和定位一直存在争议,以往多认为GPR30 存在于细胞膜上。该研究结果显示,GPR30 蛋白在子宫内膜癌细胞Ishikawa 和HEC-1A中定位于胞质,这一结果与Revankar 等[8-9]用免疫组化和荧光标记等方法发现的GPR30 定位于内质网的结果一致。
Akt 是一种丝氨酸苏氨酸蛋白激酶,Akt 活化需要苏氨酸磷酸化位点和丝氨酸磷酸化位点的磷酸化[10]。Akt 异常活化对肿瘤的发生发展起着重要的作用。雌激素与其受体结合后可通过“基因转录效应”发挥作用,也可以通过快速的“非基因转录效应”发挥作用。近年来,部分学者[11]开始重视信号通路和子宫内膜癌的关系。Revankar 等[8]发现在雌激素核受体表达缺失且GPR30 表达阳性的乳癌细胞中,雌激素可通过GPR30 激活PI3K/Akt 信号通路,从而促进乳癌细胞的增殖。前期研究[12]显示,17β-E2处理后Ishikawa 和HEC-1A细胞中PI3K/Akt 的信号通路被激活。该研究通过转染下调GPR30 蛋白的表达,观察Ishikawa 和HEC-1A 细胞中GPR30 和p-Akt 蛋白表达的变化。结果显示,p-Akt 表达下降,说明两种细胞PI3K/Akt 信号通路的活化均受到抑制。此外,接种干扰组两种肿瘤细胞的裸鼠移植瘤组织中p-Akt 蛋白的表达均较接种对照组肿瘤细胞的裸鼠移植瘤组织减弱,与体外细胞实验结果一致,提示下调GPR30 蛋白的表达可能会抑制PI3K/Akt 信号通路的活化。
综上所述,下调GPR30 的表达可能抑制了PI3K/Akt 信号通路的活化,为GPR30 成为治疗子宫内膜癌的新靶点提供了参考和依据。
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