APP下载

T—2毒素的毒性及其作用机制与代谢研究进展

2015-11-26李丽霞尚书凤

湖北农业科学 2015年21期
关键词:微粒体醛酸环氧

李丽霞++尚书凤

摘要:T-2毒素是A类单端孢霉烯族真菌毒素。T-2毒素自然发生,严重污染粮食作物及其加工产品,造成巨大的经济损失。T-2毒素污染饲料,威胁畜禽健康,严重影响畜禽养殖业。T-2毒素及其在动物体内的代谢产物在可食组织器官残留,通过食物链传递到人类,威胁到人类的健康。因此,T-2毒素受到广泛关注。综述了有关T-2毒素的毒性及其毒理机制与代谢等的研究进展。

关键词:T-2毒素;毒性;作用机制;代谢

中图分类号:Q935 文献标识码:A 文章编号:0439-8114(2015)21-5207-04

DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2015.21.002

单端孢霉烯族毒素是一大类结构相关的真菌毒素,主要是由镰刀菌属(Fusarium genus)产生的,如拟枝孢镰刀菌(Fusarium sporotrichioides)、三线镰刀菌(Fusarium tricinctum)和木贼镰刀菌(Fusarium equiseti)[1]。根据单端孢霉烯族毒素的功能团,将其分为A、B、C、D 4类。T-2毒素属于A类单端孢霉烯族毒素,是单端孢霉烯族毒素中毒性最强的毒素之一。T-2毒素损害肝、皮肤、消化系统、免疫系统、神经系统等,能够使农场动物亚中毒甚至致死。由于T-2毒素的毒性及其稳定性,T-2毒素被用作生化武器[2]。T-2毒素抑制蛋白质合成,从而抑制DNA、RNA合成。T-2毒素诱导哺乳动物细胞凋亡。T-2在体内通过异戊基侧链3′碳的羟化、酰基水解、环氧键打开的脱环氧产生20多种产物。最典型的代谢产物是HT-2、T-2 triol、T-2 tetraol、Neosolaniol、3′OH-T-2、3′-OH-HT-2、3′-OH-T-2 triol、Dihydroxy HT-2、 Deepoxy-3′-OH-HT-2、 Deepoxy-3′-OH-T-2。参与T-2毒素羟化作用的酶主要有细胞色素P450 1A5、3A4、3A22、3A29、3A37、3A46,参与酯键水解的酶有羧酸酯酶[3,4], T-2毒素环氧键打开的脱环氧反应是由肠道微生物催化的[5]。Fuchs等[6]报道了一种细菌BBSH 797可以将T-2 三醇环氧键打开生成T-2 四醇。

1 T-2毒素的发现及理化性质

20世纪中期,在美国用发霉的玉米喂养动物,一些动物表现出中毒症状。在威斯康星州,从发霉的有毒玉米中分离到许多真菌,三线镰刀菌是发霉玉米中最常见真菌之一,其提取物毒性是最大的。1968年Bamburg等[7]利用Gregory培养基培养三线镰刀菌菌株T-2,从乙酸乙酯提取物中获得毒素并结晶,将其命名为T-2毒素,首次确定了T-2毒素的分子式为C24H3O9,化学名为4β-15-二乙酰氧基-3α-羟基-8α-(3-甲基丁酰氧)-12,13-环氧单端孢霉-9-烯,四环的倍半萜烯,C-9与C-10之间形成一个双键,C-12与C-13之间形成环氧键(图1)。环氧键是T-2毒素毒性和生物活性的重要活性基团[8]。此外,R2、R3和R5也是T-2毒素重要的活性基团,Chanh等[9]利用T-2毒素单克隆抗体HDⅡ研究其结构与功能的关系,发现这些功能基团是毒素结合到靶细胞所必需的。

2 T-2毒素的毒性

在体内,T-2毒素主要毒害的组织是肝,致使肝脏生物膜形态和功能改变。T-2毒素抑制蛋白质合成,减弱代谢药物所必需的酶活性,诱发脂质过氧化,产生类似于自由基所致的溶血。T-2毒素对皮肤损害的典型特征是皮炎,一些动物暴露于T-2毒素,诱发腿部色素沉淀、胳膊黄萎病,还诱发皮下水肿、出血和皮肤坏死[10]。2012年Agrawal等[11]研究T-2毒素对小鼠的皮肤损伤,T-2毒素应用于局部导致氧化应激,活性氧、脂质过氧化、髓过氧化物酶活性增加,导致皮肤炎症因子(TNF-α、IL-6、IL-1β)的mRNA显著增加,抗炎症因子IL-10表达也显著上调。免疫印迹分析显示磷酸化p38丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)水平显著增加。所以推测T-2毒素诱导的皮肤炎与以下因素相关:氧化应激、髓过氧化物酶的激活、炎症性细胞因子活性增加、p38 MAPK的激活和表皮细胞凋亡导致的皮肤退行性病理变化等[11]。

对免疫系统的损害是T-2毒素对动物和人所造成的主要毒害之一。用亚临床剂量的T-2毒素喂养猪29 d,用卵清蛋白免疫猪,检测激素和细胞免疫应答,猪产生的抗体大大减少[12],验证了T-2毒素对免疫系统的毒性,尤其是对激素免疫应答的毒性。动物体暴露于T-2毒素,致使白细胞减少和淋巴器官细胞坏死,抑制骨髓和脾脏促细胞生成,减少淋巴细胞增殖。无论是体液免疫还是细胞免疫,无论是T-依赖免疫应答还是T-非依赖免疫应答,都受T-2毒素影响[10]。T-2毒素几乎对整个消化系统的所有细胞都有毒性。T-2毒素导致的坏死性病变,其典型特征是消化道出现黄白色干酪样的坏死性隆起,出现在口腔、肠黏膜、肫和肝等[13]。T-2毒素的刺激增加胃肠推进率,从而影响到胃肠消化运输和营养物质的吸收,T-2毒素导致胃肠功能紊乱,部分原因是由于T-2毒素改变肠系膜血流量,T-2毒素急性作用导致胃肠上皮细胞出血及坏死[14]。T-2毒素致使大鼠大脑单胺类神经递质水平发生改变、运动能力下降、小鼠脑组织氧化损伤。T-2毒素对血脑屏障具有强的细胞毒性,干扰血脑屏障功能[15]。

3 T-2毒素细胞毒性的分子机制

T-2毒素对60 S核糖体亚基亲和力很强,与肽基转移酶高亲和力,抑制肽基转移酶活性,从而抑制蛋白质合成的起始阶段。T-2毒素抑制DNA、RNA合成,T-2毒素诱导淋巴细胞单链DNA断裂[16,17]。Chaudhari等[18]报道T-2毒素引起活性氧生成和氧化应激发生,紧接着观察到P53蛋白表达量上调,也发现Bax/Bcl2比率增加,更利于细胞凋亡的发生。线粒体细胞凋亡因子Bax、Bcl-2、Cytochrome-c水平增加后,激活Caspases-9,-3,-7,导致细胞凋亡。关于T-2毒素诱导神经细胞凋亡的报道较少,Agrawal等[19] 报道T-2毒素诱导神经细胞胞外信号调节激酶(ERK)、c-Jun氨基末端激酶(JNK)和p38-丝裂原活化蛋白激酶(MAPKs)磷酸化,ERK途径上游的Grb2、Ras和Raf以及下游的转录因子c-fos和c-jun表达均显著上调。所以,T-2毒素通过多种途径诱导神经细胞凋亡。endprint

4 T-2毒素的代谢

T-2毒素在体内半衰期很短,在啮齿动物、鸡、牛、猪体内,T-2毒素被吸收后很快被代谢为多种产物。T-2毒素发现以来的几十年,科学家鉴定了许多种T-2毒素的代谢产物。Ⅰ相代谢产物可以分为3类:异戊基侧链3碳的羟化产物、酰基水解产物、环氧键打开的脱环氧产物。进入体内的T-2毒素及其Ⅰ相代谢产物很快与葡萄糖醛酸结合生成糖苷类化合物。在不同生物体,T-2毒素代谢产物有所不同。已经研究了多种动物体内(鼠、鸡、牛、猪)T-2毒素的代谢、组织分布、排泄。下面主要探讨T-2毒素在禽类代表动物鸡、畜类代表动物猪、啮齿类动物代表鼠体内体外代谢。

除了肠道和肝这两个主要代谢T-2毒素的场所以外,皮肤、血液和胃也在T-2毒素代谢过程中起到重要作用。用溶于DMSO的T-2毒素经注射渗透到皮肤,发现T-2毒素经皮肤渗透在生物体广泛存在,兔与人皮肤渗透性最相似,猴皮肤渗透性比人快2~3倍,HT-2是其主要代谢产物,也检测到T-2 triol和T-2 tetraol[20]。血细胞也能代谢T-2毒素,人和鼠血细胞经两个不同途径代谢T-2毒素分别生成HT-2和Neosolaniol,鼠红细胞代谢T-2毒素生成Neosolaniol作为主要代谢产物,而白细胞则生成HT-2;人红细胞代谢T-2毒素生成Neosolaniol和HT-2,而白细胞则仅仅产生HT-2。用特异抑制剂研究发现白细胞和红细胞中负责T-2毒素水解的酶是羧酸酯酶,血液代谢T-2毒素生成Neosolaniol的途径不同于肝代谢[21]。胃肠道在T-2毒素解毒过程中起到重要作用,鼠和牛胃肠代谢T-2毒素的研究为肝外组织代谢提供大量信息,牛瘤胃微生物在厌氧条件下与T-2毒素孵育,代谢生成HT-2和T-2 triol两种水解产物以及Deepoxy HT-2、Deepoxy T-2 triol、 Deepoxy T-2 tetraol 3种脱环氧产物[22,23]。研究发现鼠胃在不同pH条件下生成的产物有所不同,pH 2.2,孵育60 min后,HT-2是惟一代谢产物;pH 7.5,孵育3 h后,检测到HT-2 (18%)、Neosolaniol(4.4%)、4-deacetylneosolaniol(3.5%)。所以推测在不同组织代谢途径可能不同,因为不同亚型酶的底物特异性受孵育体系pH影响[24]。

T-2毒素在鸡体内的代谢。绝大多数代谢产物残留于排泄物,在鸡肝中也探测到大量T-2毒素代谢产物,肺中仅少量,在其他组织心和肾没有检测到T-2代谢产物。3′-OH-HT-2是组织和排泄物的主要代谢物,也探测到其他代谢物:HT-2、T-2 tetraol、15 acetoxy T-2 tetraol、3′-OH- T-2、4-acetoxy T-2 tetraol,以及微量的8-acetoxy T-2 tetraol、T-2 triol、 3-acetoxy-3'-OH-HT-2[25]。鸡体外,一般以肝微粒体做研究材料,苯巴比妥(Phenobarbital)诱导的鸡肝微粒体与T-2毒素孵育,HT-2是主要代谢产物,3′-OH-T-2是的主要氧化产物[26]。可能是由于体积庞大的异戊基侧链不容易去除,鸡肠道微生物与T-2孵育,仅检测C4位单个脱酰基产物HT-2和T2T及其脱环氧产物HT2-dE和T2T-dE[5]。已报道鸡的CYP1A5和CYP3A37羟化T-2生成3′-OH- T-2,是鸡代谢T-2毒素的关键酶[27,28]。

T-2毒素在猪体内的代谢。猪体内,0.1 mg氚标记T-2/kg体重的剂量给药后18 h,探测到标记物在体内的分布如下:0.7%(肌肉)、 0.43%(肝)、 0.08%(肾)、 0.06%(胆汁)、 21.6%(尿)、25.0% (大便),猪体内的代谢物分布情况与鸡体内的相似,绝大多数代谢产物残留于排泄物,所不同的是肾中检测到标记物[29]。在组织和胃肠道中,共检测到21种代谢产物,HT-2、T-2 triol、T-2 tetraol、 3′-OH T-2、3′-OH HT-2、Deepoxy T-2 tetraol、Deepoxy HT-2、Deepoxy T-2 triol等达到55%。其中HT-2、3′-hydroxy-T-2、 3′-hydroxy-HT-2 是主要代谢产物[30]。葡萄糖醛酸化在T-2毒素代谢过程中起到很重要的作用,胆汁和尿中,葡萄糖醛酸化的T-2毒素及其代谢产物量分别达到77%和63%,主要包括HT-2、3′-OH T-2、3′-OH-HT-2和T-2的葡萄糖醛酸化产物[31]。已报道CYP3A22、CYP3A29、CYP3A46是猪体内羟化T-2毒素的关键酶[32,33]。

T-2毒素在鼠体内外的代谢。用氚标记的T-2毒素灌流鼠肝,除了检测到3′-hydroxy-HT-2、3′-hydroxy-T-2 triol、4-deacetylneosolaniol、T-2 tetraol,还检测到HT-2、3′-hydroxy-HT-2、 T-2 tetraol的葡萄糖醛酸化产物。给鼠口服3′-Hydroxy HT-2 toxin和 T-2 tetraol,检测到了3′-hydroxy-deepoxy HT-2、3′-hydroxy-deepoxy T-2 triol、15-acetyl-deepoxy T-2 tetraol、Deepoxy T-2 tetraol,由此表明环氧键打开也在鼠体内代谢起重要作用[34]。用空肠原位灌流的方法研究T-2毒素在鼠肠道代谢,主要代谢产物是HT-2,也检测到3′-hydroxy-HT-2、3′-hydroxy-T-2、T-2 tetraol、 4-deacetylneosolaniol,没有检测到葡萄糖醛酸化产物,表明葡萄糖醛酸化不是发生在肠道,而是在鼠肝[35]。在体外,用大鼠、小鼠的肝微粒体来研究T-2毒素的代谢,不管来自苯巴比妥诱导还是不诱导的肝微粒体,HT-2是其主要代谢物,苯巴比妥诱导处理的大鼠和小鼠肝微粒体孵育T-2毒素,向孵育体系补充NADPH生成体系,也检测到3′-OH-T-2和3′-OH-HT-2,不过3′-OH-HT-2是小鼠肝微粒体的主要氧化产物,3′-OH-T-2是大鼠肝微粒体的主要氧化产物[36]。endprint

参考文献:

[1] KONIGS M, MULAC D, SCHWERDT G, et al. Metabolism and cytotoxic effects of T-2 toxin and its metabolites on human cells in primary culture[J]. Toxicology, 2009, 258(2-3):106-115.

[2] KUCA K, POHANKA M. Chemical warfare agents[J]. EXS, 2010, 100: 543-558.

[3] JOHNSEN H, ODDEN E, LIE O, et al. Metabolism of T-2 toxin by rat liver carboxylesterase[J]. Biochem Pharmacol, 1986, 35(9): 1469-1473.

[4] WU Q H, WANG X, YANG W, et al. Oxidative stress-mediated cytotoxicity and metabolism of T-2 toxin and deoxynivalenol in animals and humans: An update[J]. Arch Toxicol, 2014, 88(7): 1309-1326.

[5] YOUNG J C, ZHOU T, YU H, et al. Degradation of trichothecene mycotoxins by chicken intestinal microbes[J]. Food Chem Toxicol, 2007, 45(1): 136-143.

[6] FUCHS E, BINDER E M, HEIDLER D, et al. Structural characterization of metabolites after the microbial degradation of type A trichothecenes by the bacterial strain BBSH 797[J]. Food Addit Contam, 2002, 19(4): 379-386.

[7] BAMBURG J R, RIGGS N V, STRONG F M, et al. The structures of toxins from two strains of Fusarium tricinctum[J]. Tetrahedron, 1968, 24(8): 3329-3336.

[8] UENO Y. Toxicology of microbial toxins[J]. Pure Appl Chem, 1986, 58(2):339-350.

[9] CHANH T C, HEWETSON J F. Structure/function studies of T-2 mycotoxin with a monoclonal antibody[J]. Immunopharmacology, 1991, 21(2): 83-89.

[10] KALANTARI H, MOOSAVI M. Review on T-2 Toxin[J]. J Natural Pharmfcentical Prodacts, 2010, 5(1):26-38.

[11] AGRAWAL M, YADAV P, LOMASH V, et al. T-2 toxin induced skin inflammation and cutaneous injury in mice[J]. Toxicology, 2012, 302(2-3): 255-265.

[12] MEISSONNIER G M, LAFFITTE J, RAYMOND I, et al. Subclinical doses of T-2 toxin impair acquired immune response and liver cytochrome P450 in pigs[J]. Toxicology, 2008, 247(1): 46-54.

[13] SOKOLOVIC M, GARAJ-VRHOVAC V, SIMPRAGA B. T-2 toxin: Incidence and toxicity in poultry[J]. Arh Hig Rada Toksikol, 2008, 59(1): 43-52.

[14] SIREN A L, FEUERSTEIN G. Effect of T-2 toxin on regional blood flow and vascular resistance in the conscious rat[J]. Toxicol Appl Pharmacol, 1986, 83(3): 438-444.

[15] WEIDNER M, HUWEL S, EBERT F, et al. Influence of T-2 and HT-2 toxin on the blood-brain barrier in vitro: New experimental hints for neurotoxic effects[J]. PLoS One, 2005, 8(3):1-10

[16] DOI K, UETSUKA K. Mechanisms of mycotoxin-induced dermal toxicity and tumorigenesis through oxidative stress-related pathways[J]. J Toxicol Pathol, 2014, 27(1): 1-10.endprint

[17] VENKATESH P, VAIRAMUTHU S, BALACHANDRAN C, et al. Induction of apoptosis by fungal culture materials containing cyclopiazonic acid and T-2 toxin in primary lymphoid organs of broiler chickens[J]. Mycopathologia,2005,159(3):393-400.

[18] CHAUDHARI M, JAYARAJ R, BHASKAR A S, et al. Oxidative stress induction by T-2 toxin causes DNA damage and triggers apoptosis via caspase pathway in human cervical cancer cells[J]. Toxicology, 2009, 262(2): 153-161.

[19] AGRAWAL M, BHASKAR A S, RAO P V. Involvement of mitogen-activated protein kinase pathway in T-2 toxin-induced cell cycle alteration and apoptosis in human neuroblastoma cells[J]. Mol Neurobiol, 2015, 51(3):1379-1394.

[20] KEMPPAINEN B W, RILEY R T, JOYAVE J L, et al. In vitro percutaneous penetration and metabolism of[3H]T-2 toxin: Comparison of human, rabbit, guinea pig and rat[J]. Toxicon, 1987, 25(2): 185-194.

[21] JOHNSEN H, ODDEN E, JOHNSEN B A, et al. Metabolism of T-2 toxin by blood cell carboxylesterases[J]. Biochem Pharmacol, 1988, 37(16): 3193-3197.

[22] SWANSON S P, NICOLETTI J, ROOD H D, et al. Metabolism of three trichothecene mycotoxins, T-2 toxin, diacetoxyscirpenol and deoxynivalenol, by bovine rumen microorganisms[J]. J Chromatogr, 1987, 414(2): 335-342.

[23] SWANSON S P, ROOD H D, BEHRENS J C, et al. Preparation and characterization of the deepoxy trichothecenes: deepoxy HT-2, deepoxy T-2 triol, deepoxy T-2 tetraol, deepoxy 15-monoacetoxyscirpenol, and deepoxy scirpentriol[J]. Appl Environ Microbiol, 1987, 53(12): 2821-2826.

[24] LI Y, WANG Z, BEIER R C, et al. T-2 toxin, a trichothecene mycotoxin: Review of toxicity, metabolism, and analytical methods[J]. J Agric Food Chem,2011,59(8): 3441-3453.

[25] VISCONTI A, MIROCHA C J. Identification of various T-2 toxin metabolites in chicken excreta and tissues[J].Appl Environ Microbiol, 1985, 49(5):1246-1250.

[26] KNUPP C A, SWANSON S P, BUCK W B. Comparative in vitro metabolism of T-2 toxin by hepatic microsomes prepared from phenobarbital-induced or control rats, mice, rabbits and chickens[J]. Food Chem Toxicol, 1987, 25(11): 859-865.

[27] SHANG S, JIANG J, DENG Y. Chicken cytochrome P450 1A5 is the key enzyme for metabolizing T-2 toxin to 3'OH-T-2[J]. Int J Mol Sci, 2013, 14(6): 10809-10818.

[28] YUAN Y. ZhOU X, YANG J, et al. T-2 toxin is hydroxylated by chicken CYP3A37[J]. Food Chem Toxicol, 2013, 62: 622-627.

[29] ROBISON T S, MIROCHA C J, KURTZ H J, et al. Distribution of tritium-labeled T-2 toxin in swine[J]. J Agric Food Chem, 1979, 27(6): 1411-1413.endprint

[30] CORLEY R A, SWANSON S P, GULLO G J, et al. Disposition of T-2 toxin, a trichothecene mycotoxin, in intravascularly dosed swine[J]. J Agric Food Chem,1986, 34(5):868-875.

[31] CORLEY R A, SWANSON S P, BUCK W B. Glucuronide conjugates of T-2 toxin and metabolites in swine bile and urine[J]. J Agric Food Chem, 1985, 33(6):1085-1089.

[32] CHENG G, LIU C, WANG X, et al. Structure-function analysis of porcine cytochrome P450 3A29 in the hydroxylation of T-2 toxin as revealed by docking and mutagenesis studies[J]. PLoS One, 2014,9(9):1067-1069.

[33] WANG J, JIANG J, ZHANG H, et al. Integrated transcriptional and proteomic analysis with in vitro biochemical assay reveal the important role of CYP3A46 in T-2 toxin hydroxylation in porcine primary hepatocytes[J]. Mol Cell Proteomics, 2011, 10(9): 1-18.

[34] YOSHIZAWA T, SAKAMOTO T, KUWAMURA K. Structures of deepoxytrichothecene metabolites from 3'-hydroxy HT-2 toxin and T-2 tetraol in rats[J]. Appl Environ Microbiol, 1985, 50(3): 676-679.

[35] CONRADY-LORCK S, GAREIS M, FENG X C, et al. Metabolism of T-2 toxin in vascularly autoperfused jejunal loops of rats[J]. Toxicol Appl Pharmacol, 1988, 94(1): 23-33.

[36] KNUPP C A, SWANSON S P, BUCK W B. In vitro metabolism of T-2 toxin by rat liver microsomes[J]. J Agric Food Chem, 1986, 34(5):865-868.endprint

猜你喜欢

微粒体醛酸环氧
澳新拟批准来自转基因米曲霉的多聚半乳糖醛酸酶和果胶酯酶作为加工助剂
阻燃高导热环氧灌封胶的制备与性能研究
葡萄糖醛酸内酯制备和表征研究
新烟碱类杀虫剂环氧虫啶及其开发
石斛碱在体外肝微粒体代谢的种属差异研究
基于Mn掺杂ZnS量子点磷光内滤效应检测β—葡萄糖醛酸酶
大鼠肝微粒体孵育体系中2种成分的测定及其代谢
端环氧基聚氨酯的合成及其与环氧树脂共混物的性能
厚朴提取物HK-1在5个种属肝微粒体中的代谢
UPLC-MS/MS法测定大鼠肝微粒体中26-OH-PD的含量