2012—2013年我国部分地区猪伪狂犬病流行病学调查

邹 敏，杨旭兵，郑 辉，王 红，李陆梅，孙 健，王福军，吴发兴，范根成

（1.青岛易邦生物工程有限公司，山东 青岛 266114；2.中国动物卫生与流行病学中心，山东 青岛 266032）

伪狂犬病（pseudorabie，PR）是由伪狂犬病病毒（pseudorabie virus，PRV）感染引起的猪、牛、羊、犬等多种动物共患、急性传染病[1-2]，我国将其列为二类动物传染病。猪是PRV的贮存宿主，病猪、带毒猪以及带毒鼠类为本病重要传染源[3]。猪感染PRV后的临床症状因感染日龄而异，仔猪常表现明显的神经症状或顽固性腹泻，病死率达100%；断奶仔猪病死率为10%～20%；育肥猪常呈隐性感染，仅表现增重减慢；成年猪感染后多耐过，但长期排毒；母猪则现为返情、不发情、屡配不孕；妊娠母猪通常表现为流产、产死胎和木乃伊胎；公猪则常发生睾丸肿胀、萎缩、种用性能降低或丧失等[4]。

本病于1902年由匈牙利学者Aujeszky最先发现，此后陆续在各养猪国家或地区被发现。我国自1947年首次报道此病以来[5]，此病几乎遍布全国各地，严重阻碍了我国养猪业的健康发展。

控制本病最优先的方式是进行疫苗免疫接种。目前，美国、德国、荷兰、比利时等西方发达国家均通过接种PRV基因缺失弱毒疫苗、疫情监测等制订一整套猪伪狂犬病根除计划，消灭了该病[6]。我国对猪伪狂犬病实施预防为主的策略，通过开展疫苗（主要是PRV弱毒活疫苗）免疫、流行病学调查、监测及综合性措施进行防控。2012年，我国首次颁布了《国家中长期动物疫病防治规划（2012—2020年）》，明确提出采取分病种、分区域、分步骤的策略，通过加大疫病监测、流行病学调查、提升科技支撑能力等措施，在2020年将生猪发病率降至5%，使猪伪狂犬病、猪瘟等猪群疫病得到净化或根除。

为了摸清PRV感染情况，我们陆续对采集或收集的猪场组织样品、血清样品进行了PRV PCR和野毒感染抗体检测，现将有关情况报告如下。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 组织样品。2012年至2013年，青岛易邦公司技术服务部采集或收集来自我国东北、华北、华中、华东、华南、西南等地区14个省份、169个疑似繁殖障碍发病猪场的组织样品1127份，经查询来样登记表，其中明确使用猪伪狂犬病弱毒活疫苗的猪场有151个。

1.1.2 血清样品。2012年至2013年，共采集或收到来自我国东北、华北、华中、华东、华南、西南等地区18个省份、393个猪场的猪血清样品14801份，经查询来样登记表，曾明确使用过猪伪狂犬病弱毒活疫苗的猪场有291个。

1.1.3 PRV gE-PCR检测用试剂。PRV gE-PCR检测引物直接引用吴发兴等[7]的设计，上、下游引物的序列是：TCCACTCgCAgCTCTTCTCg、gCACgTCATCACgAAggAgC，预期扩增产物大小约632bp，引物序列送上海生工进行合成，溶解成20 pmol的浓度，-20℃冻存备用。DNAzol购自Invitrogen公司，Ex-Taq酶、GC BufferI、DNA 2000Marker等PCR检测用试剂购自大连宝生物。

1.1.4 ELISA检测用试剂。伪狂犬病毒gpI ELISA（即gE-ELISA，用于检测PRV野毒感染抗体）检测试剂盒购自美国IDEXX公司。

1.1.5 主要仪器。3K15型台式冷冻离心机由德国Sigma公司生产，TP600型PCR仪由宝生物公司生产，电泳仪及凝胶成像仪由北京六一仪器公司生产，Mutiskan MK3型酶标仪由美国Thermo公司生产。

1.2 方法

1.2.1 待检样品处理

1.2.1.1 组织样品的预处理。将冻存的组织样品（主要是脾脏、淋巴结，少量样品还含有脑组织）取出置室温解冻，然后在超净工作台中用灭菌处理的剪刀、镊子先剪至米粒大小，然后转移至预先灭菌处理的玻璃研磨器中，加入5倍体积的灭菌生理盐水，再研磨至糊状，然后分装到2mL灭菌离心管中，-70℃冻存待检。

1.2.1.2 血清样品的预处理。将采集或收集到的血清样品平衡至室温，观察样品是否呈淡黄色、透明状液体，否则需经过低速离心处理后方能进行抗体检测。

1.2.2 样品检测

1.2.2.1 组织样品PRV gE-PCR检测。从-70℃冰箱中取出经预处理的样品混悬液在室温融解，4℃ 12000 r/min离心10 min，取250μL上清加入750μL DNAzol中提取PRV DNA，按照参考文献[7]中的PRV野毒感染PCR检测体系及方法进行PRV gE-PCR扩增，扩增结束后进行电泳检测，用凝胶成像仪观察是否有目的条带出现，在阳性对照成立前提下进行PCR检测结果判定。

1.2.2.2 血清样品检测。取1.2.1.2节预处理过的猪血清和gE-ELISA试剂盒平衡至室温进行检测，检测过程严格按照试剂盒说明书进行，在阴阳性对照成立的前提下，如果待检样品的S/N值＜0.60，结果判定为PRV gE抗体阳性；如果待检样品的S/N值﹥0.70，结果判定为PRV gE抗体阴性；如果0.6＜S/N值≤0.7，则判定为可疑，需再次检测。

2 结果与分析

2.1 组织样品PRV PCR检测结果

2.1.1 PRV病原学检测结果。对1127份发病猪组织样品进行PRV gE-PCR检测，结果共检出PRV核酸阳性样品98份，总体阳性率为8.69%；169个场中有31个猪场检出PRV核酸阳性，场阳性率为18.34%。其中，明确使用猪伪狂犬病弱毒疫苗的151个猪场中检出PRV核酸阳性场21个，场阳性率为13.91%；未进行PRV弱毒活疫苗免疫或免疫背景不清楚的18个猪场中PRV核酸阳性场为10个，场阳性率为55.56%。组织样品的PRV野毒感染PCR检测结果说明，上述地区猪群中存在PRV野毒感染（表1）。

表1 2012—2013年14省份规模猪场PRV野毒感染PCR检测结果

2.1.2 不同年份组织样品PRV gE-PCR检测结果比较。为了解采自不同年份发病猪场组织样品中PRV野毒感染情况差异，对来自不同区域的发病猪组织样品中PRV野毒感染PCR检测结果进行了比较，总体表现为随着时间的推移，上述地区猪群中PRV野毒感染情况存在差异，有上升趋势（表2）。

表2 2012—2013年不同地区规模猪场PRV野毒感染情况PCR检测结果比较

2.1.3 PRV gE-PCR检测情况区域差异比较。为比较各地区PRV病原学检测结果差异，对组织样品PCR检测数据按地区进行分类统计，结果发现不同年份、不同地区被采样猪群中均存在不同程度的PRV野毒感染，其中，华东地区被采样猪群中PRV的病原学检出率较高，其次是华中地区（图1）。

图1 不同年份、不同地区规模猪场PRV PCR检测结果比较

2.2 血清样品PRV gE-ELISA抗体检测结果

2.2.1 PRV gE-ELISA检测结果。对14801份血清样品进行检测，共检出PRV gE抗体阳性样品2388份，平均阳性率达16.13%；393个场中173个猪场检出PRV gE抗体阳性，场阳性率为44.02%。其中，曾进行过猪伪狂犬病弱毒疫苗免疫的291个猪场中检出阳性场158个，场阳性率达54.29%；未进行疫苗免疫或免疫背景不清楚的102个猪场中有15个场检出阳性，阳性率为14.71%（表3）。说明，上述18个省份猪群中可能存在PRV野毒感染，且较为普遍。

表3 2012—2013年18省份规模猪场PRV gE抗体检测结果

2.2.2 不同年份PRV gE抗体阳性率比较结果。为了解采自不同年份猪血清样品中PRV gE抗体阳性率差异，我们对来自不同区域的猪血清样品PRV gE抗体阳性率进行了比较，总体表现为随着时间的推移，上述地区猪群中PRV gE抗体阳性率呈上升趋势（表4）。

表4 2012—2013年不同地区规模猪场PRV gE抗体阳性率比较

2.2.3 PRV gE抗体检测区域差异比较。为比较各地区PRV感染情况，我们对检测数据按地区进行分类统计，结果发现不同年份、不同地区被采样猪群中均存在不同程度的PRV野毒感染，其中华东地区感染情况最为严重，2012—2013年被检测群体的PRV gE抗体阳性率均超过了20%，其次是华中、华南地区，西南、华北、东北地区相对较低（图2）。

图2 不同年份猪群规模猪场PRV gE抗体阳性率示意图

2.2.4 不同日龄猪群PRV gE抗体检测差异比较。为比较不同年份、不同日龄的猪群中PRV感染情况，我们对检测数据按照年份、猪的日龄进行分类统计（剔出日龄不明确的样品），结果发现，不同日龄的猪群PRV感染情况也存在差异，总体感染情况由高到低依次为种猪、哺乳仔猪、育肥猪、保育猪，但随着时间推移，各年龄阶段猪群中PRV野毒感染呈逐年上升趋势（表5）。

3 讨论

3.1 本研究中的样品病原学检测结果显示，从14个省份、169个猪场、1127份发病猪组织样品中检出PRV核酸阳性样品98份，总体阳性率为8.69%；169个猪场有中31个检出PRV核酸阳性，场阳性率为18.34%。其中，明确使用PRV弱毒活疫苗的151个猪场中有21个阳性场，阳性率为13.91%；未进行PRV弱毒活疫苗免疫或免疫背景不清楚的18个猪场中阳性场为10个，场阳性率为55.56%。表明在上述省份的被采样猪群中存在PRV野毒感染。同时，按区域进行归类分析，可见华东、华中地区被检测猪群PRV野毒检出率高于东北、华北、华南、西南地区；从年份上看，上述地区被检测猪群PRV野毒感染情况总体呈上升趋势。

3.2 2012—2013年，18个省份、393个猪场检出PRV gE抗体的总体阳性率达16.13%，场阳性率达到22.02%，剔除未免疫PRV弱毒疫苗场后的猪场阳性率高达54.29%，未进行PRV弱毒疫苗免疫的场阳性率也达到了14.71%，说明上述地区的猪场的确存在PRV野毒感染。比较数据发现，曾经使用过PRV弱毒活疫苗的猪场PRV野毒感染阳性率

反而比未免疫场或没有明确免疫信息场PRV野毒感染阳性率还高，主要原因是本研究的数据全部来自疑似发病猪场，不排除已发生猪伪狂犬病的可能。规模化养猪场的免疫程序是根据本场疫病流行情况、防控需要制定的；疫苗免疫场阳性检测率较高，可能是在免疫空白期感染了PRV野毒，因为PRV一旦感染就会终身潜伏在猪体内，会产生gE抗体本底，也不排除个别猪场使用过PRV全病毒灭活疫苗的可能性。

3.3 本研究先期主要开展的针对发病场或临床不稳定猪场的PRV野毒感染血清学鉴别检测，对揭示被采样地区相关猪场的PRV感染本底指导猪场开展本病的免疫与防控具有一定指导价值。同时，为掌握上述地区猪场PRV感染情况，我们还进行了PRV野毒感染情况PCR检测，尽管样品数量相对较少，但检测结果也充分证实这些猪场的确存在PRV的感染或发病。在后续监测中我们将加大病原学检测数量，进一步掌握上述地区猪场PRV的感染状况。

3.4 比较不同采样时间、不同采样地区以及不同日龄（即生产阶段）猪群组织及血清样品中PRV野毒感染检测数据发现样品所在地区均存在不同程度的PRV野毒感染，以华东、华中最为严重；且各个地区猪群中PRV感染情况随时间推移有上升趋势。提示，上述地区应加强该病的防控，各猪场应确实做好猪伪狂犬病免疫和监测，特别是要加强对种猪的免疫工作，必须确保从源头做好净化。查验样品登记表发现，多数猪场尽管进行了本病免疫，但多限于种猪，为降低生产成本，很少对后备猪、育肥猪进行免疫，结合后备猪及育肥猪血清样品PRV野毒感染抗体阳性率上升的这一结果，说明必须加强对后备猪的免疫工作，以确保猪场生产平稳，避免发生疫情。

3.5 本研究结果充分说明，控制与净化伪狂犬病对各养猪场来说仍然是一项挑战性工作，特别是在当前养殖密度高、流通频繁、环境污染严重的大背景下。为有效预防和控制该病的发生与流行，借鉴欧美等发达国家消灭猪伪狂犬病的成功经验，引导相关猪场采取以下综合防控措施：一是坚持自繁自养、全进全出的养殖模式。二是严格引种管理，应从无伪狂犬地区的猪场引种，做好引种前的隔离观察、检疫工作，从源头坚决阻断外疫传入。三是做好疫苗免疫接种工作，选择临床免疫预防效果确实的疫苗（建议使用安全有效的gE基因完全缺失弱毒疫苗），有效降低猪场猪伪狂犬病的发病率、死亡率，避免野毒感染。四是定期进行免疫抗体和野毒感染抗体监测，依据检测结果及时进行免疫或补免，当检测到阳性动物时，结合病原学检测结果，及时、坚决剔除阳性动物，以便净化种群。五是加强猪场的饲养管理、营养和保健，以提升群体抗病能力。此外，还应加强猪场的灭鼠、消毒工作，严格禁止外来人员、车辆入场。

[1]殷震，刘景华.动物病毒学 [M].2版.北京：科学出版社，1997：998-1009.

[2]Barbara E S，Jeffery J E，Sylvie D A，et al.猪病学[M].赵德明，张仲秋，沈建忠，译.9版.北京：中国农业科学出版社，2008：465-505.

[3]娄高明，杜伟贤.伪狂犬病流行情况及猪场防制策略[J].中国动物检疫，1999，16（5）：43-51.

[4]农业部兽医局.一二三类动物疫病释义[M].北京：中国农业出版社，2011：139-146.

[5]杨尚斌，高洪，黄慧，等.大理地区散养户猪伪狂犬病病毒野毒株感染的血清学分析[J].动物疫学进展，2012，33（1）：121-123.

[6]倪娇，周绪斌，张馨玉，等.近期部分规模化猪场猪伪狂犬病野毒抗体监测情况调查[J].中国畜牧兽医，2007，34（9）：201-203.

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