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长牡蛎(Crassostrea gigas)微卫星多重PCR体系构建及其在家系鉴定中的应用*

2015-04-10纪仁平李焕军冯艳微张荣良王卫军杨建敏

海洋与湖沼 2015年6期
关键词:亲子鉴定微卫星家系

纪仁平 李焕军 冯艳微 张荣良 王卫军① 杨建敏①

(1.上海海洋大学水产与生命学院 上海 201306;2.山东省海洋资源与环境研究院 海洋生态修复重点实验室 烟台 264006)

长牡蛎(Crassostrea gigas),地方名蚝、蛎黄、海蛎子、蚵等,属于珍珠贝目、牡蛎科、巨蛎属。长牡蛎自然分布于西太平洋海域,是一种广温、广盐性贝类。牡蛎因其肉质鲜美,营养丰富,环境适应性强,生长快速,而成为我国乃至全世界养殖产量最大的一种经济贝类。近几年长牡蛎的养殖规模越来越大,产量也大幅度提高,但其种质却出现明显的退化。因此,良种选育是我国长牡蛎养殖产业健康可持续发展亟待解决的问题,而微卫星分子标记技术可为长牡蛎群体遗传多样性分析和家系亲权鉴定等方面的研究提供技术支持。

在水产动物研究领域,微卫星标记因其具有高多态性,共显性遗传等特点,已在分子标记辅助育种和家系分析等方面得到广泛的应用。20世纪80年代,Chamberlain等(1988)首次尝试了多重PCR反应模式,即在同一 PCR反应体系中加入多对微卫星引物,同时进行多个目标序列的扩增分析。多重 PCR技术具有省时高效、高通量、低成本等优点,且可有效减少靶基因片段的假阳性现象,检验效率得到明显提高(罗伟等,2013)。因此,微卫星多重PCR为水生生物亲权关系分析(Lerceteau-Köhler et al,2006)、种质鉴定(王婷等,2013)、群体遗传分析(Li et al,2007)、遗传分离模式分析(聂鸿涛等,2013)等研究提供了有力的工具。目前关于长牡蛎微卫星多重PCR已有报道,但一般都是三重或四重微卫星PCR反应体系(Li et al,2010;Taris et al,2005)。本研究从已报道的长牡蛎微卫星中开发出了两组微卫星五重 PCR反应体系,并在2012年构建的0527组和0612组的各27个全同胞家系的亲权鉴定中得以应用。

1 材料与方法

1.1 家系样品的构建

本实验家系材料的构建于2012年5月27日(记为0527组)和6月12日(记为0612组)在山东省烟台海 益 苗 业 有 限 公 司 莱 州 育 苗 场 (LZ,37°26′1″N,120°02′15″E)进行。实验所用亲贝为经过四代选育的中日韩三个群体。每个群体分别选取3个父本和3个母本个体作为亲贝,0527组和0612组都采用表1所示的部分因子实验设计的方式分别建立27个全同胞家系;当各家系发育至D形幼虫期时,计密度并将各家系幼虫等量混合,然后进行混合培育。取 0527组和0612组各18个亲本的闭壳肌保存于70%乙醇中用于DNA的提取。

表1 27个长牡蛎全同胞家系的构建Tab.1 The construction for 27 full-sib families of the Pacific oyster

1.2 样品采集及DNA提取

当养成至560日龄时,对两个实验组进行取样。随机选取0527组653个子代和0612组382个子代个体的闭壳肌保存于 70%乙醇中用于提取 DNA。各实验组子代和亲本基因组DNA的提取按照Li等(2002)氯仿/异戊醇法,通过分光光度计和1%琼脂糖凝胶检测 DNA样品的浓度和纯度,并将 DNA浓度调至30ng/μL,–20°C 保存备用。

1.3 长牡蛎微卫星位点的筛选

从已开发的长牡蛎微卫星中,根据微卫星位点的多态性、序列重复单位、连锁信息,以及扩增效果等筛选出 43个位点(Li et al,2003;Sauvage et al,2009)。微卫星引物由上海生工生物工程技术有限公司合成。每个位点最佳PCR扩增条件用10个个体检测。以引物的多态性,条带大小及清晰程度,扩增效率等作为筛选条件,挑选出扩增效果最好的 10个微卫星位点用于多重PCR的开发,ucdCg149,ucdCg109,ucdCg140,ucdCg181,ucdCg170,ucdCg112,ucdCg129,ucdCg134,ucdCg162,ucdCg151 (Li et al,2003)和CGSILI39 (Sauvage et al,2009)(表2)。将10个位点分为两组,每组中用四种颜色的荧光标记(HEX,FAM,ROX和TAMRA),构成两组微卫星五重PCR反应体系(Multiplex Set 1,MS 1;Multiplex Set 2,MS 2)。

1.4 PCR产物检测

PCR扩增产物与高度去离子甲酰胺(HIDI)和分子量内标GeneScan ROX500/ LIZ500 (美国ABI公司)以产品说明中要求的比例进行混合,变性 5min后迅速冷却,于3730 XL测序列分析仪(美国ABI公司)上进行检测分析。用 Genemapper v.3.7软件(美国Applied Biosystems公司)分析DNA片段大小。

1.5 微卫星标记优化组合

根据适于同时扩增的位点最大化且同一荧光标记的位点间等位基因不重叠的原则(Li et al,2010)将这些位点进行五重 PCR组合。通过对退火温度、反应体系、循环参数(退火温度,延伸时间)等条件进行优化,确定五重PCR的最佳反应条件。

1.6 数据统计分析

首先运行CERVUS 3.0 (Kalinowski et al,2007)软件中的模拟功能估算两组长牡蛎家系鉴定所需要的位点数及其鉴定效率。软件操作具体参数设置如下:模拟子代数目设置为10000 (循环重复数),父母本数根据软件要求均为实际父母本数设为 9,亲本检测率设置为 100%,位点检测率为 100%,分型误差率为1%,置信区间设置为95%,亲本性别已知。家系鉴定运用CERVUS 3.0中基于似然性的计算方法从非排除亲本中选择最可能的亲本。

同时也采用CERVUS 3.0对各微卫星位点的等位基因数(Number of alleles,Na),多态信息含量(Polymorphism Information Content,PIC)和位点的非排除能力(NE-1P,NE-2P,NE-PP)进行统计分析。亲本对子代的贡献差异由SPSS 14.0 (SPSS Inc.,Chicago,IL,USA)进行非参数卡方检验。

表2 用于多重PCR体系构建的微卫星位点的基本信息Tab.2 Information of the SSR loci for establishment of multiplex PCR system

2 结果

2.1 五重PCR的优化

设计的引物组合经过筛选优化后获得了两组微卫星五重PCR体系。

两组五重 PCR反应体系 25μL包括: 模板 DNA 1.0μL (30ng),10×PCR Buffer 2.5μL,25mmol/L MgCl22.0μL,10mmol/L dNTPs 0.5μL,10mmol/L引物每对各0.2μL,5U/μL Taq DNA 聚合酶 0.2μL,纯水 17.8μL。

两组五重 PCR反应程序均为: 95°C预变性3min;95°C变性 30s,退火温度 60°C 30s,72°C延伸30s,循环 10次;95°C变性 30s,退火温度 55°C 30s,72°C延伸 30s,循环 20次;最后 72°C 延伸 6min;4°C 保存。

各体系的引物组合、引物浓度详见表3、表4。部分微卫星五重PCR的毛细管电泳结果如图1。

图1 微卫星五重PCR的毛细管电泳图谱Fig.1 The capillary electrophoresis amplified by SSR 5-multiplex PCR

2.2 遗传多样性分析

2.2.1 0527实验组 10个微卫星位点的等位基因数(Na)范围从19到36,平均值为28.8,位点平均多态信息含量为 0.8924,反映了这两组五重 PCR在家系鉴定中具有较高的排除能力。两组五重 PCR的观测杂合度(Observed heterozygosity,Ho)范围为 0.426—0.811,平均观测杂合度为 0.6519,期望杂合度(Expected heterozygosity,He)范围为 0.870—0.931,平均期望杂合度为 0.9011,无效等位基因频率为5.9%—36.3% (表 3)。

表3 0527组长牡蛎中两组微卫星五重PCR的特征Tab.3 Characteristics of two SSR 5-multiplex PCRs in the Pacific oyster of group 0527

2.2.2 0612实验组 经筛选后得到10个微卫星位点(表4)。每个位点的等位基因数(Na)为15—31,平均值为 23.7;观测杂合度(Ho)为 0.376—0.845,平均观测杂合度为 0.5588;期望杂合度(He)为 0.712—0.933,平均期望杂合度为0.8652;位点平均多态信息含量为0.8516;无效等位基因频率为7.7%—41.4%。

表4 0612组长牡蛎中两组微卫星五重PCR的特征Tab.4 Characteristics of two SSR 5-multiplex PCRs of group 0612 in the Pacific oyster

2.3 微卫星五重PCR在家系鉴定中的应用

2.3.1 0527实验组 使用两组微卫星五重PCR对27个家系的 653个个体进行了亲子鉴定,经用CERVUS 3.0软件进行分析,使用这两组微卫星五重PCR的亲子鉴定成功率为100%;只用MS 1,可以将96%的子代鉴定到亲本;只用第二组 MS 2,可以将97%的子代鉴定到亲本。

对653个长牡蛎子代个体进行基因分型,将其全部成功分配至唯一亲本对,子代在 27个全同胞家系中的分布情况见表 5。家系间子代数目差异非常大,家系F23 (♀8×♂8)有72个子代,占子代总数的11.0%;而家系 F04 (♀2×♂2)仅有 1个子代,占子代总数的0.2%。通过卡方检验可知,父本(χ2=148.02,P=0.00)和母本(χ2=208.55,P=0.00)对子代的贡献率有显著性差异: 母本产生的子代数最多为 137个(♀8),贡献率为21.0%;最少的为7个(♀2),贡献率为1.1%。父本产生的子代数最多的为117个(♂9),贡献率为17.9%;最少为27个(♂2),贡献率为4.1%(表5)。

2.3.2 0612实验组 使用两组微卫星五重PCR对0612组27个全同胞家系382个个体进行亲子鉴定的准确率为100%;只用MS 1,亲子鉴定准确率为96%;只用MS 2,可以将95%的子代鉴定到亲本。

表6为0612组382个长牡蛎子代个体在27个全同胞家系中的分布情况。子代在建立的 27个家系中呈现不均等分布。不同家系间的子代数有较大差异,从 1 (F27,♀9×♂9)到 68 (F25,♀9×♂1)不等。卡方检验结果显示,母本(χ2=119.86,P=0.00)和父本(χ2=142.88,P=0.00)对子代的贡献率有显著性差异: 母本产生的子代数最多和最少分别为80 (♀9)和9 (♀3),贡献率分别为 20.9%和 2.4%;父本产生的子代数最多和最少分别为93 (♂1)和14 (♂9),贡献率分别为24.3%和3.7%。

表5 0527组中27个长牡蛎全同胞家系的653个个体的亲权分析Tab.5 Parentage assignment of 653 offspring from 27 full-sib families of group 0527 in the Pacific oyster

3 讨论

3.1 微卫星多重PCR无效等位基因

微卫星中位点的突变、插入或缺失是无效等位基因产生的主要原因(Callen et al,1993;Pemberton et al,1995)。无效等位基因的出现是降低家系分析准确率的主要来源之一(Marshall et al,1998),但并不影响其在家系分析研究中的应用(Li et al,2005)。通过增加微卫星位点数和避免使用无效等位基因频率过高的微卫星位点可提高微卫星位点的家系鉴定能力(Carlsson,2008;Wang et al,2010)。McGoldrick等(2000)曾报道太平洋牡蛎中无效等位基因频率为20%。Li等(2003)发现长牡蛎中 51.9%的微卫星位点含有无效等位基因。Hubert等(2004)也报道了在长牡蛎中无效等位基因较高,达51.0%。本实验的10个微卫星位点在0527组的27个全同胞家系鉴定中的无效等位基因频率为5.9%—36.3%,而在0612组的27个全同胞家系鉴定中无效等位基因频率为 7.7%—41.4%。

表6 0612组中27个长牡蛎全同胞家系的382个个体的亲权分析Tab.6 The parentage assignment of 382 offspring from 27 full-sib families of group 0612 in Pacific oyster

3.2 微卫星多重PCR在家系鉴定中的应用

微卫星多重 PCR技术已应用于多种水生动物的家系鉴定分析。聂鸿涛等(2013)用12个微卫星位点对12个皱纹盘鲍全同胞家系的 372个子代进行家系鉴定,两组多态信息含量最高的多重 PCR的鉴定成功率分别为90%和86%,在此基础上增加任意一个多重PCR组合,即可达到 100%的鉴定成功率。李佳凯等(2014)建立了大黄鱼微卫星多重PCR体系,使用3组微卫星多重PCR体系进行亲子鉴定准确率为100%。苗贵东等(2011)对大菱鲆7个人工选育家系进行了亲子鉴定,已知1个亲本时两组多重PCR的鉴定成功率为 96.42%,在双亲未知的情况下亲子鉴定准确率为96.58%。Li等(2010)使用两组多态信息含量最高的微卫星多重PCR对12个单对交配长牡蛎家系进行基因分析,达到100%的鉴定成功率。

在本试验中,用两组微卫星五重 PCR鉴别时,在0527组和0612组的鉴定成功率均为100%;只用MS 1,可以将0527组96%的子代和0612组96%的子代鉴定到亲本;只用MS 2,可以将0527组97%的子代和0612组95%的子代鉴定到亲本。本研究中较高的家系鉴定成功率可能与所使用的微卫星位点较好及其多态性水平较高有关,这与 Gheyas等(2009)所提到的选择更多信息量大、多态性高的位点是达到高鉴定率的必要保障的观点相一致。

作者仅用两组微卫星五重 PCR反应体系就完成了 10个微卫星位点的分型,在短时间内实现长牡蛎群体的遗传多样性分析,充分体现了多重 PCR快速高效、高通量、节约、简便的特点。本研究中筛选出的微卫星多重 PCR体系不仅可以应用于长牡蛎群体的亲子鉴定分析以及分子标记辅助育种,还可为家系群体遗传多样性分析和遗传关系研究等方面的研究提供技术基础。

王 婷,徐 燕,陈昌生等,2013.基于 SCAR标记的坛紫菜“闽丰 1号”多重 PCR鉴定技术的建立.水产学报,37(5):688—695

李佳凯,王志勇,韦信键等,2014.大黄鱼微卫星多重PCR体系的建立及其应用.水产学报,38(4): 470—475

罗 伟,高泽霞,曾 聪等,2013.团头鲂微卫星多重PCR体系的建立及应用.大连海洋学学报,28(5): 418—423

苗贵东,杜 民,杨景峰等,2011.大菱鲆亲子鉴定的微卫星多重PCR技术建立及应用.中国海洋大学学报,41(1—2):97—106

聂鸿涛,李 琪,孔令锋,2013.皱纹盘鲍微卫星多重PCR体系构建及其在家系鉴定中的应用.水产学报,37(2): 207—215

Callen D F,Thompson A D,Shen Y et al,1993.Incidence and origin of “null” alleles in the (AC)nmicrosatellite markers.Am J Human Genet,52(5): 922—927

Carlsson J,2008.Effects of microsatellite null alleles on assignment testing.J Hered,99(6): 616—623

Chamberlain J S,Gibbs R A,Rainer J E et al,1988.Deletion screening of the Duchenne muscular dystrophy locus via multiplex DNA amplification.Nucl Acids Res,16(23):11141—11156

Gheyas A A,Woolliams J A,Taggart J B et al,2009.Heritability estimation of silver carp (Hypophthalmichthys molitrix)harvest traits using microsatellite based parentage assignment.Aquaculture,294(3—4): 187—193

Hubert S,Hedgecock D,2004.Linkage maps of microsatellite DNA markers for the Pacific oyster Crassostrea gigas.Genetics,168(1): 351—362

Kalinowski S T,Taper M L,Marshall T C,2007.Revising how the computer program CERVUS accommodates genotyping error increases success in paternity assignment.Mol Ecol,16(5): 1099—1106

Lerceteau-Köhler E,Weiss S,2006.Development of a multiplex PCR microsatellite assay in brown trout Salmo trutta,and its potential application for the genus.Aquaculture,258(1—4):641—645

Li G,Hubert S,Bucklin K et al,2003.Characterization of 79 microsatellite DNA markers in the Pacific oyster Crassostrea gigas.Mol Ecol Notes,3(2): 228—232

Li Q,Kijima A,2005.Segregation of microsatellite alleles in gynogenetic diploid Pacific abalone (Haliotis discus hannai).Mar Biotechnol,7(6): 669—676

Li Q,Park C,Kijima A,2002.Isolation and characterization of microsatellite loci in the Pacific abalone,Haliotis discus hannai.J Shellfish Res,21: 811—815

Li Q,Park C,Kobayashi T et al,2003.Inheritance of microsatellite DNA markers in the Pacific abalone Haliotis discus hannai.Mar Biotechnol,5(4): 331—338

Li R H,Li Q,Cornette F et al,2010.Development of four EST-SSR multiplex PCRs in the Pacific oyster (Crassostrea gigas)and their validation in parentage assignment.Aquaculture,310(1—2): 234—239

Li Y T,Wongprasert K,Shekhar M et al,2007.Development of two microsatellite multiplex systems for black tiger shrimp Penaeus monodon and its application in genetic diversity study for two populations.Aquaculture,266(1—4): 279—288

Marshall T C,Slate J,Kruuk L E B et al,1998.Statistical confidence for likelihood-based paternity inference in natural populations.Mol Ecol,7(5): 639—655

McGoldrick D,Hedgecock D,English L J et al,2000.The transmission of microsatellite alleles in Australian and North American stocks of the Pacific oyster (Crassostrea gigas):selection and null alleles.J Shellfish Res,19: 779—788

Pemberton J M,Slate J,Bancroft D R et al,1995.Nonamplifying alleles at microsatellite loci: a caution for parentage and population studies.Mol Ecol,4(2): 249—252

Sauvage C,Boudry P,Lapègue S,2009.Identification and characterization of 18 novel polymorphic microsatellite makers derived from expressed sequence tags in the Pacific oyster Crassostrea gigas.Mol Ecol Res,9(3): 853—855

Taris N,Baron S,Sharbel T F et al,2005.A combined microsatellite multiplexing and boiling DNA extraction method for high-throughput parentage analyses in the Pacific Oyster (Crassostrea gigas).Aquac Res,36(5): 516—518

Wang Y,Wang X X,Wan A M et al,2010.A 16-microsatellite multiplex assay for parentage assignment in the eastern oyster (Crassostrea virginica Gmelin).Aquaculture,308(1):S28—S33

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