APP下载

蛋白磷酸酶PHLPP在消化系统肿瘤中的研究进展

2015-03-21何晓燕施瑞华

国际消化病杂志 2015年6期

何晓燕 赵 晔 施瑞华



·综述·

蛋白磷酸酶PHLPP在消化系统肿瘤中的研究进展

何晓燕赵晔施瑞华

摘要:近年来,蛋白磷酸酶PHLPP的研究日益受到重视。PHLPP能特异性地使蛋白激酶B(Akt)、蛋白激酶C(PKC)以及S6激酶(S6K)等因子的相应保守位点去磷酸化,通过抑制多条肿瘤相关信号通路发挥抑癌作用。目前已发现PHLPP在多种消化系统肿瘤中表达下调,与肿瘤发生发展密切相关,有望成为消化系统肿瘤诊治的新靶点。

关键词:PHLPP;蛋白激酶B;蛋白激酶C;抗癌基因;消化系统肿瘤

作者单位:322100浙江金华,东阳市人民医院消化内科(何晓燕);

210029南京医科大学第一附属医院消化内科(赵晔);210009江苏南京,东南大学附属中大医院消化内科(施瑞华)

蛋白磷酸酶PHLPP[pleckstrin homology(PH)domain leucine-rich repeat protein phosphatase]是一类重要的蛋白丝氨酸/苏氨酸磷酸酶,为人体内的天然抗癌基因,在各物种中高度保守。目前研究显示,PHLPP家族由3个磷酸酶组成,即PHLPP1α、PHLPP1β和PHLPP2,其能使蛋白激酶B(Akt)、蛋白激酶C(PKC)以及S6激酶(S6K)等因子的相应保守位点直接去磷酸化,从而调控细胞多种生物学功能[1-2]。作为一种新型的抑癌基因,PHLPP与各类肿瘤关系的研究近年来备受关注。本文主要针对PHLPP的结构、功能及其与消化系统肿瘤关系的研究进展作一综述。

1PHLPP的结构和功能

目前发现PHLPP包含2个亚型,即PHLPP1和PHLPP2,其中PHLPP1基因包含2个剪切变异体,即PHLPP1α和PHLPP1β。PHLPP的主体结构均由N端的PH结构域、富亮氨酸重复序列(LRR)、中央的激酶催化结构域(含PP2C)和C末端的调节结构域(PDZ结构域)组成[1-2]。

PHLPP可以使Akt、PKC以及S6K等因子的特异性位点去磷酸化,通过抑制多条肿瘤相关信号通路发挥抑癌作用。Akt是磷脂酰肌醇3激酶/蛋白激酶B(PI3K/Akt)信号通路的关键分子,磷酸化活化的Akt可通过调节下游多种信号分子调控一系列细胞功能。Akt的异常磷酸化和肿瘤的生物学活性密切相关。PHLPP1及PHLPP2均可直接使Akt 羧基末端丝氨酸的473位点去磷酸化,降低Akt的活性,抑制PI3K/Akt通路,促进细胞凋亡且抑制细胞增殖,从而发挥抑癌作用[1-2]。PKC属于多功能丝氨酸和苏氨酸激酶,是细胞内信号传递的重要介质,与肿瘤的发生、发展及转移密切相关。PHLPP1和PHLPP2均可以使PKC分子中的疏水基团去磷酸化,降低细胞内PKC的活性,负性调节肿瘤的发生发展[3]。S6K属于丝氨酸/苏氨酸激酶家族,是细胞信号转导通路中的重要成员,与肿瘤细胞的增殖、迁移和侵袭密切相关。S6K具有类似Akt的磷酸化位点,PHLPP可直接使其脱磷酸化而失活,进而影响细胞的生物学功能[4]。除了Akt、PKC以及S6K,PHLPP还可作用于其他底物发挥作用,例如PHLPP1β可直接作用于Ras,从而对Ras-Raf-MEK-ERK信号通路产生负性调节作用[5]。

2PHLPP和消化系统肿瘤

近年来,不少学者对各类肿瘤中PHLPP的相关生物学变化进行了较为深入的研究。部分研究显示,PHLPP1及PHLPP2基因均位于肿瘤发生发展过程中的染色体脆性部位,提示其作为肿瘤抑制因子的功能特点。PHLPP1位于染色体18q21.33,该基因位点的杂合性缺失在结肠癌及胃癌组织中较为常见[6-7]。PHLPP2位于染色体16q22.3,该基因位点的杂合性缺失常发生在胰腺癌及肝细胞癌中[8-9]。

2.1PHLPP和结直肠癌

与其他消化系统肿瘤相比较,PHLPP在结直肠癌中的研究较为广泛。Liu等[6]的研究显示,结肠癌组织中的PHLPP1及PHLPP2表达水平明显下降。PHLPP1及PHLPP2的过表达可明显抑制结直肠癌细胞增殖,增加其对PI3K抑制剂的活性,从而有效对抗肿瘤的形成。进一步研究揭示,上述生物学现象可能是通过PHLPP/Akt和PHLPP/PKC途径实现的。Agarwal等[10]发现,PHLPP2的表达水平在正常结直肠黏膜、结直肠腺瘤及结直肠腺癌组织中呈梯度下降趋势,提示其可能在结直肠腺癌的发生发展过程中发挥重要作用,体外实验证实,PHLPP2可能通过抑制核因子-κB(NF-κB)信号通路中的关键分子IκB 激酶(IKK)来实现其肿瘤抑制功能。此外,Li等[11]报道,PHLPP1及PHLPP2基因的表达水平在结肠癌组织中显著下调。细胞实验表明,PHLPP1及PHLPP2均可直接使结直肠癌细胞内的Raf-1因子脱磷酸化,通过降低Raf-MEK-ERK信号通路活性而抑制结直肠癌细胞上皮间质转化,最终削弱肿瘤细胞的侵袭和迁移能力。动物实验进一步显示,PHLPP1基因敲除小鼠的生存时间明显下降,其体内结直肠腺癌生长速度显著提升。

上述研究结果显示,PHLPP1及PHLPP2是结直肠癌发生发展相关研究中具有潜力的切入点,结直肠癌中PHLPP1及PHLPP2低表达的具体机制随之引起学者们的关注。作为miR-224的靶基因,在结直肠癌细胞内,PHLPP1及PHLPP2的表达明显受到miR-224抑制[12]。在结直肠癌组织内,USP46和PHLPP蛋白表达均显著下调,两者表达水平呈明显正相关。体外研究显示,USP46因子可发挥去泛素化作用而稳定结肠癌细胞内PHLPP的含量,进而增强PHLPP的抑癌功能[13]。Gangula等[14]的研究亦显示,去泛素化酶USP12及其活化亚基WD重复蛋白形成的复合物可显著减弱结直肠癌细胞内PHLPP1的泛素化分解作用,进而增强其抑癌活性。Liu等[15]报道,mTOR可通过mTOR/p70S6K/PHLPP和mTOR/4E-BP-1/PHLPP通路显著增加结肠癌细胞内PHLPP1和PHLPP2的表达,而PHLPP1和PHLPP2又可以通过PHLPP/Akt/mTOR环路反馈性调节mTOR的表达活性。Li等[16]研究显示,在结肠癌细胞内,β-Trcp可显著提升已被酪蛋白激酶1(CK1)和糖原合成激酶3(GSK-3)磷酸化的PHLPP1蛋白的泛素化分解速度,进而下调结肠癌细胞内PHLPP1的表达水平。PHLPP的异常表达还可能与缺氧引起的结直肠癌化学治疗耐受相关,有研究报道,经过缺氧诱导,结肠癌细胞内的PHLPP1及PHLPP2表达明显下调,其具体机制尚不明确,但研究显示通过下调低氧诱导因子-1α(HIF-1α)、TSC2和4@E-BP-1等基因的表达,可部分补救缺氧引起的PHLPP丢失[17]。

作为潜在的治疗靶点,部分研究已致力于寻找相关药物,以期通过强化PHLPP的抑癌功能达到治疗结直肠癌的目的。Johnson等[18]研究发现,中药提取成分姜黄素可以有效抑制结直肠细胞的体外增殖活性,其生物学机制很可能是通过升高细胞内PHLPP的表达水平来抑制Akt的磷酸化活化,最终通过一系列级联反应达到抑制肿瘤细胞生长的目的。

2.2PHLPP与其他消化系统肿瘤

除了结直肠癌,PHLPP还可以在胃癌、胰腺癌及肝细胞癌等消化系统肿瘤中发挥其生物学活性。Wang等[19]研究发现,PHLPP1蛋白在正常胃黏膜组织、胃癌组织及癌组织转移性淋巴结中的表达阳性率分别为96.7%、56.9%和38.8%,PHLPP1阳性患者的总生存时间及无复发生存时间明显较PHLPP1阴性患者长。Gao等[20]在细胞水平进一步研究了PHLPP1在胃癌中的调节通路,发现SGT1因子可显著降低胃癌细胞中PHLPP1蛋白的含量,进而通过过度激活Akt信号通路调节胃癌细胞的生物学功能。Nitsche等[21]研究显示,PHLPP1的表达水平越高,胰腺导管腺癌患者的长期生存率越高,细胞实验表明高表达的PHLPP1能有效抑制胰腺癌细胞增殖,促进胰腺癌细胞凋亡,进一步证实PHLPP1具有抑制胰腺癌发生发展的生物学活性。Hou等[22]发现,肿瘤抑制因子FKBP5可显著抑制胰腺癌细胞的增殖能力,同时增强胰腺癌细胞对化学治疗药物吉西他滨的敏感性,这些生物学功能很大程度上是通过增强PHLPP对Akt的去磷酸化作用而实现的。肝细胞癌相关研究显示,由于促癌基因miR-331-3p的负性调节作用,PHLPP在肝癌细胞内显著下调,进而增强肝癌细胞的增殖及侵袭能力[23]。

3总结和展望

作为一类肿瘤抑制性磷酸酶,PHLPP可参与多种消化系统肿瘤的发生发展,是消化系统肿瘤防治研究的重要靶标。随着研究的深入,PHLPP相关的信号通路越来越完善,但仍有许多问题亟待解决。如在各类消化系统肿瘤中,PHLPP的上游调控因子复杂多样,是否存在统一的主控因子?如何靶向激活PHLPP而达到治疗不同消化系统肿瘤的目的?相信通过学者们的不懈努力,PHLPP在消化系统肿瘤的防治方面将具有良好的应用前景。

参考文献

1Gao T, Furnari F, Newton AC. PHLPP: a phosphatase that directly dephosphorylates Akt, promotes apoptosis, and suppresses tumor growth. Mol Cell, 2005, 18: 13-24.

2Brognard J, Sierecki E, Gao T, et al. PHLPP and a second isoform, PHLPP2, differentially attenuate the amplitude of Akt signaling by regulating distinct Akt isoforms. Mol Cell, 2007, 25: 917-931.

3Gao T, Brognard J, Newton AC. The phosphatase PHLPP controls the cellular levels of protein kinase C. J Biol Chem, 2008, 283: 6300-6311.

4Liu J, Stevens PD, Li X, et al. PHLPP-mediated dephosphorylation of S6K1 inhibits protein translation and cell growth. Mol Cell Biol, 2011, 31: 4917-4927.

5Shimizu K, Okada M, Nagai K, et al. Suprachiasmatic nucleus circadian oscillatory protein, a novel binding partner of K-Ras in the membrane rafts, negatively regulates MAPK pathway. J Biol Chem, 2003, 278: 14920-14925.

6Liu J, Weiss HL, Rychahou P, et al. Loss of PHLPP expression in colon cancer: role in proliferation and tumorigenesis. Oncogene, 2009, 28: 994-1004.

7Xu Y, Man X, Lv Z, et al. Loss of heterozygosity at chromosomes 1p35-pter, 4q, and 18q and protein expression differences between adenocarcinomas of the distal stomach and gastric cardia. Hum Pathol, 2012, 43: 2308-2317.

8Bergmann F, Aulmann S, Sipos B, et al. Acinar cell carcinomas of the pancreas: a molecular analysis in a series of 57 cases. Virchows Arch, 2014, 465: 661-672.

9Fu L, Dong SS, Xie YW, et al. Down-regulation of tyrosine aminotransferase at a frequently deleted region 16q22 contributes to the pathogenesis of hepatocellular carcinoma. Hepatology, 2010, 51: 1624-1634.

10 Agarwal NK, Zhu X, Gagea M, et al. PHLPP2 suppresses the NF-kappaB pathway by inactivating IKKbeta kinase. Oncotarget, 2014, 5: 815-823.

11 Li X, Stevens PD, Liu J, et al. PHLPP is a negative regulator of RAF1, which reduces colorectal cancer cell motility and prevents tumor progression in mice. Gastroenterology, 2014, 146: 1301-1312. e1-e10.

12 Liao WT, Li TT, Wang ZG, et al. microRNA-224 promotes cell proliferation and tumor growth in human colorectal cancer by repressing PHLPP1 and PHLPP2. Clin Cancer Res, 2013, 19: 4662-4672.

13 Li X, Stevens PD, Yang H, et al. The deubiquitination enzyme USP46 functions as a tumor suppressor by controlling PHLPP-dependent attenuation of Akt signaling in colon cancer. Oncogene, 2013, 32: 471-478.

14 Gangula NR, Maddika S. WD repeat protein WDR48 in complex with deubiquitinase USP12 suppresses Akt-dependent cell survival signaling by stabilizing PH domain leucine-rich repeat protein phosphatase 1 (PHLPP1). J Biol Chem, 2013, 288: 34545-34554.

15 Liu J, Stevens PD, Gao T. mTOR-dependent regulation of PHLPP expression controls the rapamycin sensitivity in cancer cells. J Biol Chem, 2011, 286: 6510-6520.

16 Li X, Liu J, Gao T. beta-TrCP-mediated ubiquitination and degradation of PHLPP1 are negatively regulated by Akt. Mol Cell Biol, 2009, 29: 6192-6205.

17 Wen YA, Stevens PD, Gasser ML, et al. Downregulation of PHLPP expression contributes to hypoxia-induced resistance to chemotherapy in colon cancer cells. Mol Cell Biol, 2013, 33: 4594-4605.

18 Johnson SM, Gulhati P, Arrieta I, et al. Curcumin inhibits proliferation of colorectal carcinoma by modulating Akt/mTOR signaling. Anticancer Res, 2009, 29: 3185-3190.

19 Wang Z, Shu H, Wang Z, et al. Loss expression of PHLPP1 correlates with lymph node metastasis and exhibits a poor prognosis in patients with gastric cancer. J Surg Oncol, 2013, 108: 427-432.

20 Gao G, Kun T, Sheng Y, et al. SGT1 regulates Akt signaling by promoting beta-TrCP-dependent PHLPP1 degradation in gastric cancer cells. Mol Biol Rep, 2013, 40: 2947-2953.

21 Nitsche C, Edderkaoui M, Moore RM, et al. The phosphatase PHLPP1 regulates Akt2, promotes pancreatic cancer cell death, and inhibits tumor formation. Gastroenterology, 2012, 142: 377-387. e1-e5.

22 Hou J, Wang L. FKBP5 as a selection biomarker for gemcitabine and Akt inhibitors in treatment of pancreatic cancer. PLoS One, 2012, 7: e36252.

23 Chang RM, Yang H, Fang F, et al. MicroRNA-331-3p promotes proliferation and metastasis of hepatocellular carcinoma by targeting PH domain and leucine-rich repeat protein phosphatase. Hepatology, 2014, 60: 1251-1263.

(本文编辑:周骏)

(收稿日期:2014-11-03)

通信作者:施瑞华,Email: ruihuashi@126.com

基金项目:食管疾病研究创新团队(CXZZ11_0705)

DOI:10.3969/j.issn.1673-534X.2015.06.012