APP下载

紧密连接蛋白Claudins 与胃癌关系的研究进展

2015-03-17邵瑞颖李森林

胃肠病学和肝病学杂志 2015年10期
关键词:细胞膜胃癌通路

邵瑞颖,石 莎,李森林

1.青岛大学医学院内科学消化系,山东 青岛266071;2.山东省聊城市人民医院消化内科

胃癌的发生、发展是一个多步骤的漫长过程,包括慢性胃炎、萎缩性胃炎、肠上皮化生、上皮内瘤变等,最后发展为癌症[1]。在这个过程中,细胞极性丧失,细胞间连接中断频繁发生,这在癌症的发生、发展过程中起重要作用。目前学术界普遍认为,上皮细胞黏附力降低可导致细胞间连接功能的破坏。紧密连接(tight junctions,TJS)是重要的细胞间膜连接复合体,在维持细胞的正常结构和生理功能中起关键作用[2]。TJS 不仅是细胞的物理屏障,防止溶质和水自由通过细胞之间的间隙,在维持细胞极性和信号传导中也发挥重要作用[2-3]。TJS 由紧密连接蛋白(Claudins)、Occludin、连接黏附分子等多种蛋白分子构成,其中Claudins 是决定TJS 功能最重要的紧密连接骨架蛋白,在肿瘤细胞转移及侵袭过程中起重要作用[4]。本文就Claudins与胃癌的关系作一概述。

1 Claudins 的基本结构及功能

Claudins 是由CLDN 基因所编码的一组蛋白质家族,最早于1998 年由Furuse 等[5]在鸡肝细胞中发现,现在已发现至少27 种家族成员,Claudins 家族是一类分子量22 ~27 kDa 的跨膜蛋白,广泛存在于哺乳动物的上皮及内皮细胞中[6]。Claudins 蛋白分为两类:具有高度序列相似性的经典Claudins,如Claudins 1 ~10、14、15 等,和非经典Claudins,如Claudins 11、12、13、16、18 等[7]。然而,经典及非经典的Claudins 其家庭成员的分子结构都极为相似,均由2 个细胞外环形结构组成,肽链4 次穿过细胞膜,组成了Claudins 蛋白分子的4 个可以相互作用的疏水跨膜区。氨基末端和羧基末端位于细胞膜内,细胞膜外有2 个长度不等的细胞外环形结构,第1 个细胞外环内含有1 个可以增加区域结构稳定性的二硫键,第2 个细胞外环的氨基序列则形成了一个螺旋-拐角-螺旋的特殊结构域,通过其内的疏水氨基酸序列,与相邻细胞的Claudins蛋白分子中的相应部分组成二聚体结构[8]。Claudins蛋白的4 个跨膜区可封闭相邻细胞间的细胞间隙,参与细胞膜选择渗透性的调节过程[9]。其中,第1、4 跨膜区的氨基酸序列具有高度保守性,第2、3 跨膜区细胞外环结构中的氨基酸序列存在较多差异,羟基尾部是决定了Claudins 的特异性及稳定性[10]。羟基尾部含有1 个盘状同源区域(PDZ 结构域)。Claudins 蛋白通过PDZ 结构域,与细胞骨架蛋白结合,参与构成TJS复合体。羟基尾部末端的氨基酸磷酸化及去磷酸化,可参与Claudins 蛋白在细胞膜上的定位过程,影响其功能[11]。

Claudins 主要分布于上皮细胞侧面及基底细胞质膜上,参与黏附连接,并不局限于TJS 中。不同的Claudins 蛋白分子在不同的组织细胞中具有各自特异性的表达,有些组织细胞不表达或只表达一种Claudin分子,而大多数组织细胞表达两个或两个以上Claudins[12],如在肝脏细胞同时表达Claudin-1、Claudin-2和Claudin-3 三种蛋白,胃肠细胞、肾脏细胞同时表达Claudin-21 及Claudins-24 ~27[13]。Claudin-4、Claudin-7、Claudin-8 则主要表达于肺脏和肾脏。Claudin-18 高表达于胃黏膜细胞内,但在其他组织细胞内极少表达或不表达[14];Claudin-5 不仅在各种上皮组织细胞内都表达,在血管内皮细胞中也有较高水平的表达。

TJS 至少具有三种重要的生物学功能:(1)屏障功能;(2)维持细胞极性;(3)物质转运和信号传导功能,调节细胞的生长、增殖和分化[7]。Claudins 蛋白是构成TJS 最主要的功能分子,主要在细胞旁扩散过程中起选择性离子通过作用,调控细胞渗透性、通过离子的分子大小及类型等,从而调节细胞间小分子物质的转运,在信号传导及维持细胞极性等过程中也发挥重要作用[15]。Claudins 基因的表达异常(上调或下调)导致TJS 的结构和功能的破坏,使得细胞失去黏附、易于浸润和去分化,从而促进肿瘤细胞生成、浸润及转移。近十年的研究显示,在多种肿瘤组织中,Cluadins 表达异常。如Claudin-3、Claudin-4 在卵巢癌、乳腺癌、前列腺癌和胰腺癌肿瘤中呈高表达[16-19];Claudin-7 在胸部、头部及颈部癌症中呈低表达,而在胃癌中Claudin-7 基因表达上调[20]。

2 Claudins 与胃癌

胃癌是最常见及最致命的恶性肿瘤之一,是全球癌症死亡的第二大原因[21]。由于缺少特异性的早期症状及有效的早期筛查指标,胃癌仍是发展中国家癌症死亡的主要原因,有超过70%的新病例和死亡发生在发展中国家,尤其是在亚洲东部,其总体5 年生存率低于20%[22]。我国胃癌发病率居恶性肿瘤第2 位,且发病率和死亡率随年龄增长而上升。目前对于Claudins 与胃癌的关系做了诸多研究,有越来越多的证据表明,Claudins 可能在胃癌发生、发展中起关键作用,但其在胃癌中的表达模式与胃癌细胞增殖、浸润、转移及预后等的关系仍存在争议。

2.1 Claudin-1 在人体内,Claudin-1 基因定位于3q28/3q29,参与多种信号传导通路及TJS 的调节,如Rho 因子、PKC、异三聚体G 蛋白等[23]。Claudin-1 通常表达于胃体及胃窦黏膜。Chao 等[24]研究表明Claudin-1 基因型改变所引起的表达异常,可影响细胞膜信号通路及细胞分化、生长等,如细胞膜受体交互作用、离子通路、凝血连锁、凋亡过程和肌动蛋白骨架的调节。Claudin-1 的某些基因型还具备GTP 酶、生长因子、细胞外基质蛋白等功能。有学者认为,Claudin-1可能与c-Abl-Ras-Raf-1/ERK1/2 和c-Abl-PKC 等信号通路有关,可调节细胞内信号传导[25]。一项对20 例胃癌患者的研究发现[26],Claudin-1 在胃癌细胞中明显呈高表达,是不良预后的独立和显著危险因素,提示Claudin-1 可能是评估胃癌预后的重要指标之一。在胃黏膜上皮细胞感染幽门螺杆菌并最终发展成为胃癌的过程中,Claudin-1 可能是影响其基因变化的中心环节。Wu 等[27]研究也发现,Claudin-1 在胃癌黏膜中表达上调,与分化程度呈负相关,与肿瘤浸润及转移呈正相关,但在肿瘤浸润前缘,Claudin-1 表达水平与胃癌分化程度、侵袭及转移均呈正相关,胃癌的浸润性越强,Claudin-1 阳性率也就越高。在浆膜层中的表达率明显高于肌层及早期胃癌细胞,伴有淋巴结转移的高于不伴有的,这提示Claudin-1 表达上调在胃癌细胞生物学行为的转变过程中发挥重要作用。Jung 等[28]的实验也发现Claudin-1 在胃癌中表达上调,且在Lauren分型肠型胃癌中的表达显著高于弥漫浸润型胃癌。但Chang 等[29]的 研 究 结 果 却 显 示Claudin-1 可 能 是RUNX3 基因的转录产物,具有抑癌作用,Claudin-1 表达下降可促进胃癌增殖。以上研究说明,Claudin-1 在胃癌中表达异常,但目前尚无定论且其作用机理仍不清楚。

2.2 Claudin-3 在人体中,Claudin-3 基因定位于7q11.23,在Claudins 中,Claudin-3 和Claudin-4 较为特殊,二者均为产气荚膜杆菌外毒素(clostridium perfringens enterotoxin,CPE)的受体。CPE 与其受体结合后,可以形成一种独特的、具有十二烷基硫酸钠抵抗性的细胞膜复合物。这种复合物可改变细胞膜通透性,进而导致细胞溶解坏死。有研究[30]表明,DNA 甲基化、组蛋白H3 乙酰化和Sp1 转录因子等可刺激Claudin-3活化,并通过β-catenin-TCF 等信号通路参与肿瘤生成及发展。Okugawa 等[31]的研究认为,Claudin-3 在胃癌及胃黏膜肠上皮化生细胞中的表达明显高于正常胃黏膜细胞,且Claudin-3 和Ki-67 的表达呈负相关。研究还显示从胃癌中心到侵袭前沿再至淋巴结转移灶,Claudin-3 的表达率逐渐降低,这提示Claudin-3 下调与胃癌细胞的增殖潜能密切相关,Claudin-3 可能在胃癌进展过程中起关键作用。Jung 等[28]研究也显示,肿瘤细胞Claudin-3 低表达者,多为淋巴管癌栓阳性或胃癌T3、T4 期患者,这一结果提示Claudin-3 表达率或可作为评价胃癌患者预后的指标之一。综上,Claudin-3 在胃癌中表达上调,且与预后关系密切,但作用机理不明。

2.3 Claudin-4 Claudin-4 由209 个氨基酸组成,与Claudin-3 相似,也是细胞膜上CPE 的受体,基因定位于7q11.23。Claudin-4 可能通过影响MAPK-Rho 信号通路调节细胞的运动性[32],但其具体分子或通路机制仍需进一步研究。Hwang 等[33]研究证实,在胃癌组织中Claudin-4 表达上调,与肿瘤浸润深度和淋巴结转移呈正相关,且胃癌临床分期越高,Claudin-4 阳性率越高。研究还发现,Claudin-4 的表达与MMP-2 及MMP-9 相关且可影响MMP-2 及MMP-9 的活性,这也表明Claudin-4 的表达与肿瘤的浸润及MMP-2 和MMP-9 在胃癌组织中的表达相关。Zhu 等[34]对胃癌、肠上皮化生、不典型增生病变及正常胃黏膜的研究显示,Claudin-4 在胃癌组织中阳性率明显升高,正常胃黏膜中阳性率仅为15.9%,而在肠上皮化生和不典型增生病变中阳性率分别为90.5%和95.2%。Claudin-4 的表达与肿瘤组织学分化程度及生长模式显著相关,与患者的生存率无关。但研究还发现,根据癌组织的间质量分类,Claudin-4 与中间型胃癌患者的生存率呈相关趋势。这一现象表明,Claudin-4 或许可以作为识别的中间型胃癌的基础。Kwon 等[35]也认为,Claudin-4 表达与胃癌的进展呈正相关,是评估胃癌预后的一个独立影响因素,且Claudin-4 可作为胃癌基因治疗的靶位。但Lee 等[36]研究发现,在胃癌组织中Claudin-4 表达下调,与肿瘤低分化及弥漫型胃癌相关。这说明在弥漫型或低分化胃癌中,Claudin-4 功能障碍在细胞黏附力下降过程中起促进作用。以上研究表明,Claudin-4在胃癌中表达上调或下降,参与胃癌生成及发展过程,但作用机制尚不明确。

2.4 Claudin-18 Claudin-18 基因定位于3q22.3,其主要表达于胃及肺部上皮细胞膜上,敲除Claudin-18基因的老鼠易造成胃黏膜萎缩及氢离子通路异常[37]。一项关于75 例胃癌标本的研究显示[38],与正常、癌旁及肠上皮化生组织相比,Claudin-18 在胃癌组织细胞中呈明显的低表达,其表达下调与胃癌增殖、浸润及转移呈正相关,提示在胃癌发生及发展过程中,Claudin-18 起重要作用。Claudin-18 在肠型胃癌中常呈低表达,提示Claudin-18 可作为早期胃癌的分子生物学标志之一[39]。Jun 等[40]也发现,约51.5%胃癌组织中Claudin-18 的表达降低,表达Claudin-18 的胃癌患者生存率高于不表达者,表明Claudin-18 下调是胃癌不良预后的独立影响因素。综上,Claudin-18 在胃癌中异常表达,参与胃癌发生、发展过程,但具体作用机制尚不明确。

同时,有些学者也就其他Claudins 蛋白等在胃癌中的表达进行了相关研究,如Claudin-6、7、9 的过度表达与胃腺癌增殖、转移呈正相关,与ERK/MAPK 信号通路有关,并与肿瘤分期、患者预后等有一定相关性[41]。

3 临床应用价值

Claudins 蛋白在胃癌细胞中存在表达异常,提示Claudins 在胃癌发生、发展、评估预后等方面有一定的价值。但是目前其机制及结论尚不明确,还需要进一步深入的研究及大量研究结果的证实。未来,Claudins蛋白有望成为胃癌诊断、鉴别诊断、预后评估等的分子生物学标志物,用以预测胃癌的发生及复发,甚至可能作为一种诊断工具,以明确病理诊断。

在肿瘤的治疗方面,Claudins 在胃癌组织中表达异常,导致细胞通透性改变,抗体类抗肿瘤药物更易通过细胞膜进入细胞内;Claudins 在细胞膜具有较为保守的2 个外环结构,可进行放射性靶向治疗或刺激自身免疫反应;Claudin-3、4 为CPE 受体,激活后可改变细胞膜通透性,促进细胞溶解,有可能开展新的抗癌疗法。

[1] Correa P. Human gastric carcinogenesis:a multistep and multifactorial process-First American Cancer Society Award Lecture on Cancer Epidemiology and Prevention [J]. Cancer Res, 1992, 52 (24 ):6735-6740.

[2] Saitoh Y,Suzuki H,Tani K,et al. Tight junctions. Structural insight into tight junction disassembly by Clostridium perfringens enterotoxin[J]. Science,2015,347(6223):775-778.

[3] Matter K,Balda MS. SnapShot:Epithelial tight junctions[J]. Cell,2014,157(4):992-992.

[4] Dietze R,Shihan M,Stammler A,et al. Cardiotonic steroid ouabain stimulates expression of blood-testis barrier proteins claudin-1 and -11 and formation of tight junctions in Sertoli cells[J]. Mol Cell Endocrinol,2015,405:1-13.

[5] Furuse M,Fujita K,Hiiragi T,et al. Claudin-1 and -2:novel integral membrane proteins localizing at tight junctions with no sequence similarity to occluding[J]. J Cell Biol,1998,141(7):1539-1550.

[6] Günzel D,Yu AS. Claudins and the modulation of tight junction permeability[J]. Physiol Rev,2013,93(2):525-569.

[7] Jaspers MH,Nolde K,Behr M,et al. The claudin Megatrachea protein complex[J]. J Biol Chem,2012,287(44):36756-36765.

[8] Morita K,Furuse M,Fujimoto K,et al. Claudin multigene family encoding four-transmembrane domain protein components of tight junction strands[J]. Proc Natl Acad Sci U S A,1999,96(2):511-516.

[9] Escudero-Esparza A,Jiang WG,Martin TA. Claudin-5 is involved in breast cancer cell motility through the N-WASP and ROCK signalling pathways[J]. J Exp Clin Cancer Res,2012,31:43.

[10] Van Itallie CM,Anderson JM. Claudin interactions in and out of the tight junction[J]. Tissue Barriers,2013,1(3):e25247.

[11] Flores AR,Rêma A,Amorim I,et al. Altered expression of claudin-1 is related with malignancy in canine thyroid tumors[J]. In Vivo,2015,29(1):23-28.

[12] Men W,Martin TA,Ruge F,et al. Expression of claudins in human clear cell renal cell carcinoma [J]. Cancer Genomics Proteomics,2015,12(1):1-8.

[13] Khairallah H,El Andalousi J,Simard A,et al. Claudin-7,-16,and-19 during mouse kidney development[J]. Tissue Barriers,2014,2(4):e964547.

[14] LaFemina MJ,Sutherland KM,Bentley T,et al. Claudin-18 deficiency results in alveolar barrier dysfunction and impaired alveologenesis in mice [J]. Am J Respir Cell Mol Biol,2014,51 (4):550-558.

[15] Elahy M,Jackaman C,Mamo JC,et al. Blood-brain barrier dysfunction developed during normal aging is associated with inflammation and loss of tight junctions but not with leukocyte recruitment[J]. Immun Ageing,2015,12:2.

[16] Ding L,Lu Z,Lu Q,et al. The claudin family of proteins in human malignancy:a clinical perspective[J]. Cancer Manag Res,2013,5:367-375.

[17] Michl P,Buchholz M,Rolke M,et al. Claudin-4:a new target for pancreatic cancer treatment using Clostridium perfringens enterotoxin[J].Gastroenterology,2001,121(3):678-684.

[18] Long H,Crean CD,Lee WH,et al. Expression of Clostridium perfringens enterotoxin receptors claudin-3 and claudin-4 in prostate cancer epithelium[J]. Cancer Res,2001,61(21):7878-7881.

[19] Rangel LB,Agarwal R,D'Souza T,et al. Tight junction proteins claudin-3 and claudin-4 are frequently overexpressed in ovarian cancer but not in ovarian cystadenomas[J]. Clin Cancer Res,2003,9(7):2567-2575.

[20] Johnson AH,Frierson HF,Zaika A,et al. Expression of tight-junction protein claudin-7 is an early event in gastric tumorigenesis[J].Am J Pathol,2005,167(2):577-584.

[21] Asombang AW,Rahman R,Ibdah JA. Gastric cancer in Africa:current management and outcomes[J]. World J Gastroenterol,2014,20(14):3875-3879.

[22] Parkin DM,Bray F,Ferlay J,et al. Cancer in Africa 2012 [J].Cancer Epidemiol Biomarkers Prev,2014,23(5):685.

[23] Anderson JM,Van Italie CM. Tight junctions and the molecular basis for regulation of paracellular permeability[J]. Am J Physiol,1995,269(4):467-475.

[24] Chao YC,Pan SH,Yang SC,et al. Claudin-1 is a metastasis suppressor and correlates with clinical outcome in lung adenocarcinoma[J]. Am J Respir Crit Care Med,2009,179(2):123-133.

[25] Miwa N,Furuse M,Tsukita S,et al. Involvement of claudin-1 in the beta-catenin/Tcf signaling pathway and its frequent upregulation in human colorectal cancers [J]. Oncol Res,2001,12 (11-12):469-476.

[26] Eftang LL,Esbensen Y,Tannæs TM,et al. Up-regulation of CLDN1 in gastric cancer is correlated with reduced survival[J]. BMC Cancer,2013,13:586.

[27] Wu YL,Zhang S,Wang GR,et al. Expression transformation of claudin-1 in the process of gastric adenocarcinoma invasion [J].World J Gastroenterol,2008,14(31):4943-4948.

[28] Jung H,Jun KH,Jung JH,et al. The expression of claudin-1,claudin-2,claudin-3,and claudin-4 in gastric cancer tissue[J]. J Surg Res,2011,167(2):85-91.

[29] Chang TL,Ito K,Ko TK,et al. Claudin-1 has tumor suppressive activity and is a direct target of RUNX3 in gastric epithelial cells[J].Gastroenterology,2010,138(1):255-265.

[30] Martinez CA,de Campos FG,de Carvalho VR,et al. Claudin-3 and occludin tissue content in the glands of colonic mucosa with and without a fecal stream[J]. J Mol Histol,2015,46(2):183-194.

[31] Okugawa T,Oshima T,Chen X,et al. Down-regulation of claudin-3 is associated with proliferative potential in early gastric cancers[J].Dig Dis Sci,2012,57(6):1562-1567.

[32] Kage H,Flodby P,Gao D,et al. Claudin 4 knockout mice:normal physiological phenotype with increased susceptibility to lung injury[J].Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol,2014,307(7):524-536.

[33] Hwang TL,Lee LY,Wang CC,et al. Claudin-4 expression is associated with tumor invasion,MMP-2 and MMP-9 expression in gastric cancer[J]. Exp Ther Med,2010,1(5):789-797.

[34] Zhu JL,Gao P,Wang ZN,et al. Clinicopathological significance of claudin-4 in gastric carcinoma [J]. World J Surg Oncol,2013,11:150.

[35] Kwon MJ,Kim SH,Jeong HM,et al. Claudin-4 overexpression is associated with epigenetic derepression in gastric carcinoma[J]. Lab Invest,2011,91(11):1652-1667.

[36] Lee SK,Moon J,Park SW,et al. Loss of the tight junction protein claudin 4 correlates with histological growth-pattern and differentiation in advanced gastric adenocarcinoma[J]. Oncol Rep,2005,13(2):193-199.

[37] Hayashi D,Tamura A,Tanaka H,et al. Deficiency of claudin-18 causes paracellular H + leakage,up-regulation of interleukin-1beta,and atrophic gastritis in mice[J]. Gastroenterology,2012,142(2):292-304.

[38] Oshima T,Shan J,Okugawa T,et al. Down-regulation of Claudin-18 is associated with the proliferative and invasive potential of gastric cancer at the invasive front[J]. PLoS One,2013,8(9):e74757.

[39] Sanada Y,Oue N,Mitani Y,et al. Down-regulation of the claudin-18 gene,identified through serial analysis of gene expression data analysis,in gastric cancer with an intestinal phenotype[J]. J Pathol,2006,208(5):633-642.

[40] Jun KH,Kim JH,Jung JH,et al. Expression of claudin-7 and loss of claudin-18 correlate with poor prognosis in gastric cancer[J]. Int J Surg,2014,12(2):156-162.

[41] Zavala-Zendejas VE,Torres-Martinez AC,Salas-Morales B,et al.Claudin-6,7,or 9 overexpression in the human gastric adenocarcinoma cell line AGS increases its invasiveness,migration,and proliferation rate[J]. Cancer Invest,2011,29(1):1-11.

猜你喜欢

细胞膜胃癌通路
外周血红细胞膜脂肪酸C20:1n9水平与冠状动脉病变严重程度的关系研究
P53及Ki67在胃癌中的表达及其临床意义
Kisspeptin/GPR54信号通路促使性早熟形成的作用观察
胃癌组织中LKB1和VEGF-C的表达及其意义
proBDNF-p75NTR通路抑制C6细胞增殖
皮肤磨削术联合表皮细胞膜片治疗稳定期白癜风疗效观察
胃癌组织中VEGF和ILK的表达及意义
宫永宽:给生物医用材料穿上仿细胞膜外衣
通路快建林翰:对重模式应有再认识
香芹酚对大肠杆菌和金黄色葡萄球菌细胞膜的影响