盐度对花鳗鲡和太平洋双色鳗鲡幼鳗生长性能及消化酶活力的影响

罗鸣钟关瑞章靳 恒

(1. 长江大学动物科学学院, 荆州 434025; 2. 集美大学, 厦门 361021; 3. 鳗鲡现代产业技术教育部工程研究中心,厦门 361021)

盐度对花鳗鲡和太平洋双色鳗鲡幼鳗生长性能及消化酶活力的影响

罗鸣钟1关瑞章2, 3靳 恒1

(1. 长江大学动物科学学院, 荆州 434025; 2. 集美大学, 厦门 361021; 3. 鳗鲡现代产业技术教育部工程研究中心,厦门 361021)

文章研究了不同盐度对花鳗鲡(Anguilla marmorata)幼鳗和太平洋双色鳗鲡(A. bicolor pacifica)幼鳗生长性能及消化酶活力的影响。将花鳗鲡幼鳗[(9.76±0.36) g]和太平洋双色鳗鲡幼鳗[(11.82±0.04) g]分别在淡水(盐度0‰)与盐度5‰、10‰、18‰水体中养殖30d, 测量每组实验鱼总重后检测胃、肠道和肝脏蛋白酶、淀粉酶和脂肪酶的活力。结果表明, 花鳗鲡和太平洋双色鳗鲡在各盐度处理中存活率均为100%, 未出现死亡。两种鳗鲡在淡水中生长良好, 特定生长率最高, 而饵料系数最低。盐度对花鳗鲡幼鳗和太平洋双色鳗鲡幼鳗消化酶活力的影响存在差异, 其中花鳗鲡胃、肠道和肝脏蛋白酶活力在各盐度处理中均无显著变化(P＞0.05),淀粉酶和脂肪酶活力均随盐度的增加而下降; 太平洋双色鳗鲡胃蛋白酶活力在盐度 10‰时最大, 肝蛋白酶活力在盐度18‰时最大, 而淀粉酶和脂肪酶活力在各盐度处理组无显著变化(P＞0.05)。这表明盐度对花鳗鲡胃、肠道和肝脏的淀粉酶和脂肪酶活力具有抑制作用, 对太平洋双色鳗鲡的蛋白酶活力有一定的激活作用。在相同盐度条件下, 不同消化器官中同种消化酶活力存在差异, 各盐度的两种鳗鲡肠道中淀粉酶和脂肪酶的活力均显著高于肝脏和胃(P＜0.05), 胃中蛋白酶活力高于肝脏和肠道, 但不显著(P＞0.05)。研究发现两种鳗鲡体内脂肪酶活力相对较高, 表明其对脂肪具有较强的消化能力。建议在配制花鳗鲡幼鳗和太平洋双色鳗鲡幼鳗饲料时, 适当提高粗脂肪比例, 有助于促进对营养物质的消化吸收, 提高养殖效益。

盐度; 花鳗鲡; 太平洋双色鳗鲡; 生长性能; 消化酶

盐度是水环境中重要的生态因子, 对鱼类生长代谢等各种生理活动产生影响。同时, 盐度通过影响鱼类消化器官中消化酶活力大小来影响食物的消化吸收, 最终影响鱼类的生长发育[1, 2]。鳗鲡属(Anguilla)鱼类为繁殖洄游性生物, 具有较强的盐度耐受性, 广泛分布于淡水、咸水以及半咸水地区[3]。不同种类的鳗鲡有相似的生活史即受精卵、柳叶鳗、玻璃鳗、幼鳗、黄鳗及银鳗共6个阶段。一般认为鳗鲡在受精卵和柳叶鳗时期, 生活在海水环境; 玻璃鳗生活在半咸水的河口地区; 幼鳗和黄鳗溯河进入江河湖泊, 进行淡水生活; 银鳗向产卵场作降海洄游, 环境盐度不断上升, 直至进入海洋。但Tzeng等[4]利用电子微分析探针检测黄鳗期以及银鳗期日本鳗鲡(A. japonica)耳石中锶和钙的比例, 发现部分日本鳗鲡从幼鳗期到银鳗期一直生活在海水或半咸水中, 不经历淡水的洄游过程, 且分布于海水和河口地区的群体中雌性个体全长显著大于淡水地区。目前, 盐度对鳗鲡属鱼类生长的影响已有部分报道,如日本鳗鲡[5]、欧洲鳗鲡(A. anguilla)[6]、澳洲鳗鲡(A. australis)和大鳗鲡(A. dieffenbachii)[7]。研究表明不同种鳗鲡间对盐度的适应性存在差异, 而盐度对花鳗鲡(A. marmorata)和太平洋双色鳗鲡(A. bicolor pacifica)生长性能及消化酶活力的影响尚未见报道。

花鳗鲡隶属鳗鲡目、鳗鲡科、鳗鲡属, 广泛分布于西太平洋和印度洋的热带和亚热带地区, 在中国的东南省份和台湾地区、日本南部、非洲东部、太平洋中部诸岛以及印度洋东部及西南群岛均有发现[8]。我国福建、广东及浙江等省份有食用花鳗鲡的传统习俗, 花鳗鲡肉味鲜美, 成年个体可长至40—50 kg, 其市场价格是其他食用鳗鲡的3—5倍,具有较高的营养价值和经济价值。太平洋双色鳗鲡属热带鳗鲡, 主要分布于西太平洋的赤道地区, 包括婆罗洲东部、新几内亚北部以及菲律宾的吕宋岛,与花鳗鲡分布范围部分重叠, 在河口地区其鳗苗与前者往往被一同捕捞[9]。近年来, 日本鳗鲡和欧洲鳗鲡苗种资源枯竭, 已严重限制了鳗鲡养殖业及其加工业的发展。东南亚地区花鳗鲡以及太平洋双色鳗鲡苗种资源丰富, 价格便宜, 我国部分鳗场已开始了对该两种鳗苗的引进试养。本研究对不同盐度下花鳗鲡幼鳗和太平洋双色鳗鲡幼鳗生长性能及消化酶活力变化进行比较分析, 旨在了解该两种鳗鲡对环境盐度的适应性, 以期为其洄游生态生理和人工养殖提供研究资料。

1 材料与方法

1.1 实验材料与饲养条件

实验材料为自菲律宾引进的花鳗鲡和太平洋双色鳗鲡玻璃鳗, 后经集美大学福建省海水试验场人工培育1年的幼鳗。挑选外观正常, 体表无伤的个体用于实验。实验前, 幼鳗于水族箱中暂养超过1周,实验用水为曝气的自来水。温度为(24.5—26.5) , ℃pH保持7.2±0.4, 盐度＜0.3‰, 溶氧≥6.0 mg/L, 氨氮＜0.5 mg/L, 亚硝酸盐＜0.2 mg/L, 用日光灯作为光源,光照周期12D : 12L。连续充气, 每天08: 00和18: 00 分2次投喂鳗鱼粉状配合饲料(福建天马饲料有限公司, 营养成分为粗蛋白47%、粗脂肪4%、粗纤维3%、灰分17%、水分10%), 每次投喂前称量饵料并记录,采取饱食投喂并根据残饵剩余情况适时调整投喂量。摄食结束2h后虹吸排污, 换水率为10%/d。每天观察实验鱼活动与摄食状况。

1.2 实验设计

实验盐度共设4个盐度梯度, 即淡水对照组(盐度0‰)与盐度5‰、10‰、18‰组, 每梯度设2个平行组, 每组20尾幼鳗。花鳗鲡初始体重为(9.76±0.36) g,太平洋双色鳗鲡初始体重为(11.82±0.04) g。盐度调节用曝气的自来水和过滤的海水配置, 用RHS-28ATC手持型盐度计测定。幼鳗暂养15d后, 开始以3‰/24h的速率将盐度调整到各实验设计的盐度梯度并驯养1周。整个实验持续30d, 第15和第30天测量每组实验鱼总重。实验结束后随机选取3尾, 经丁香油麻醉后, 在冰盘上解剖实验鱼, 取出胃、肠道和肝脏。用生理盐水快速洗净、滤纸吸干称重后置于5 mL离心管中, 再加入9倍体积的生理盐水, 剪碎后用高速匀浆器在冰水浴中以20000 r/min 转速匀浆,匀浆液在Thermo型高速冷冻离心机(4 ℃, 4000 r/min)中离心10min, 取上清液待测。

1.3 测定方法

蛋白含量测定采用考马斯亮蓝法测定, 单位: mg/mL。蛋白酶采用福林-酚试剂法测定, 酶活力单位定义为: 在37℃条件下, 每毫克组织蛋白每分钟分解蛋白生成1 µg氨基酸相当于1个酶活力单位(U)。淀粉酶采用碘-淀粉比色法测定, 酶活力单位定义为: 在37℃条件下, 每毫克组织蛋白与底物作用30min水解10 mg淀粉相当于1个酶活力单位。脂肪酶采用比浊法测定, 酶活力单位定义为: 在37℃条件下, 每毫克组织在本反应体系中与底物反应1min消耗1 µmol底物相当于1个酶活力单位。消化酶活力采用比活力表示, 单位: U/(mg·min)。

1.4 数据处理

在本研究中花鳗鲡与太平洋双色鳗鲡生长性能采用日增重、特定生长率和饵料系数表示, 计算公式如下:

上式中, W0和Wt分别为实验初始和实验末幼鳗平均体重, t为实验天数, TF为实验阶段总摄食量, n为实验初幼鳗尾数。

所有数据采用 SPSS 13.0软件进行处理, 平均数采用均值±标准误(Mean±SE)表示, 各盐度梯度组间生长性能指标和酶活力的差异采用单因素方差分析(One-way ANOVA)和 Duncan检验法比较, 当P＜0.05时认为差异显著, P＜0.01 时差异极显著。

2 结果

2.1 盐度对生长性能的影响

在不同盐度下花鳗鲡幼鳗的体重变化、存活率和日增重(DWG)情况见表1, 太平洋双色鳗鲡见表2。花鳗鲡和太平洋双色鳗鲡在各盐度处理中存活率均为100%, 未出现死亡。在各盐度处理中, 两种鳗鲡的生长存在差异。实验末, 盐度0‰和盐度5‰处理组花鳗鲡体重显著大于盐度10‰和18‰处理组(P＜0.05), 盐度0‰处理组太平洋双色鳗鲡体重显著大于其他组(P＜0.05)。盐度0‰处理组花鳗鲡的DWG显著大于盐度5‰处理组(P＜0.05), 而盐度10‰和18‰处理组体重下降, 出现负生长。盐度0‰处理组太平洋双色鳗鲡的DWG显著大于其他组(P＜0.05),各组均无负生长。

表1 不同盐度下花鳗鲡幼鳗的体重、存活率和日增重Tab. 1 The weight, the survival rate and the daily weight gain of A. marmorata elver at different salinities

表2 不同盐度下太平洋双色鳗鲡幼鳗的体重、存活率和日增重Tab. 2 The weight, the survival rate and the daily weight gain of A. bicolor pacifica elver at different salinities

由图1可知, 4个盐度水平下太平洋双色鳗鲡的特定生长率(SGR)均显著大于花鳗鲡(P＜0.05)。盐度0‰处理组花鳗鲡的SGR大于盐度5‰处理组, 但差异不显著性(P＞0.05); 盐度0‰处理组太平洋双色鳗鲡的SGR最大, 并显著性大于其他组(P＜0.05)。

由图2可知, 盐度对花鳗鲡和太平洋双色鳗鲡饵料系数(FCR)的影响与SGR不同。在盐度0‰和5‰时,花鳗鲡的FCR显著大于太平洋双色鳗鲡(P＜0.05)。花鳗鲡在盐度0‰时FCR最小, 低于其他组。太平洋双色鳗鲡的FCR随盐度升高而增大, 盐度0‰时FCR最小, 显著低于其他组(P＜0.05), 盐度18‰时最大, 盐度5‰和10‰处理组间差异不显著(P＞0.05)。

2.2 盐度对花鳗鲡幼鳗消化酶活力的影响

在4个盐度处理中, 盐度相同时花鳗鲡3个消化器官的蛋白酶活力均为肝脏最低为0.23—1.71 U/(mg·min),肠道其次为 1.12—3.29 U/(mg·min), 胃最高为5.81—8.34 U/(mg·min) (图3)。盐度对肝脏、胃和肠道中蛋白酶活力的影响存在差异, 其中盐度 18‰处理组中肝脏蛋白酶活力显著高于其他盐度组(P＜0.05),

图 1 在不同盐度下花鳗鲡幼鳗和太平洋双色鳗鲡幼鳗的特定生长率比较Fig. 1 Comparison of SGR for A. marmorata elver and A. bicolor pacifica elver at different salinities

图标上方不同小写字母, 表示同种鳗鲡不同盐度间存在显著性差异(P＜0.05); 不同大写字母, 表示同种盐度下两种鳗鲡间存在显著性差异(P＜0.05); 下同

Different small letters on the columns indicate significant difference between different salinities for the same specie (P＜0.05), and different capital letter superscripts indicated significant differences between two species at the same salinity (P＜0.05). The same applies below胃和肠道中蛋白酶活力在盐度0‰时均显著最高(P＜0.05), 其他盐度处理中均无显著性差异(P＞0.05)。

图 2 在不同盐度下花鳗鲡幼鳗和太平洋双色鳗鲡幼鳗的饵料系数比较Fig. 2 Comparison of FCR for A. marmorata elver and A. bicolor pacifica elver at different salinities

图3 在不同盐度下花鳗鲡幼鳗肝脏、胃和肠道蛋白酶活力Fig. 3 The activity of protease in the liver, the stomach and the intestine of A. marmorata elver at different salinities

图4显示, 各盐度下花鳗鲡肠道淀粉酶活力为0.58—1.58 U/(mg·min), 盐度相同时, 均显著高于肝脏和胃(P＜0.05)。比较同种消化器官不同盐度处理中的淀粉酶活力可知, 肝脏淀粉酶活力在各盐度处理中均无显著性差异(P＞0.05); 胃淀粉酶活力与盐度梯度呈负相关, 盐度0‰时最高, 盐度18‰时最低;在盐度0‰时, 肠道淀粉酶活力最高, 显著高于其他盐度组(P＜0.05), 而其他3个盐度组之间均无显著性差异(P＞0.05)。

图5显示, 在4个盐度下花鳗鲡肠道脂肪酶活力为26.38—192.53 U/(mg·min), 在盐度相同时, 除盐度 18‰处理组, 均显著高于肝脏和胃(P＜0.05),

肝脏和胃脂肪酶活力在各盐度处理组间均无显著性差异(P＞0.05)。比较同种消化器官不同盐度处理中的脂肪酶活力可知, 肝脏脂肪酶活力随盐度增加而下降, 盐度 0‰和5‰时显著高于盐度18‰ (P＜0.05);

在盐度 0‰时, 胃脂肪酶活力最高, 显著高于盐度

5‰和10‰处理组(P＜0.05), 而其他3个盐度组之间均无显著性差异(P＞0.05); 肠道脂肪酶活力与盐度呈负相关, 盐度 0‰处理组最高且显著高于其他组

(P＜0.05), 盐度18‰处理组最低。

2.3 盐度对太平洋双色鳗鲡幼鳗消化酶活力的影响如图6所示, 在4个盐度下太平洋双色鳗鲡胃和肠道蛋白酶活力分别为2.86—7.01和2.24—

4.76 U/(mg·min)。在盐度梯度相同时, 除盐度18‰

图4 在不同盐度下花鳗鲡幼鳗肝脏、胃和肠道淀粉酶活力Fig. 4 The activity of amylase in the liver, the stomach and the intestine of A. marmorata elver at different salinities

图5 在不同盐度下花鳗鲡幼鳗肝脏、胃和肠道脂肪酶活力Fig. 5 The activity of lipase in the liver, the stomach and the intestine of A. marmorata elver at different salinities

处理组, 均显著高于肝脏(P＜0.05), 胃和肠道淀粉酶活力在各盐度下均无显著性差异(P＞0.05)。不同盐度处理对同种消化器官蛋白酶活力的影响存在差异, 在盐度18‰时, 肝脏蛋白酶活力最高, 显著高于其他盐度组(P＜0.05), 而其他3个盐度组之间均无显著性差异(P＞0.05); 在盐度10‰时, 胃蛋白酶活力最高, 显著高于盐度5‰和18‰处理组(P＜0.05),与盐度0‰处理组无显著性差异(P＞0.05); 肠道蛋白酶活力在各盐度处理中均无显著性差异(P＞0.05)。

如图7所示, 在4个盐度处理中太平洋双色鳗鲡肠道淀粉酶活力为0.52—0.80 U/(mg·min), 在盐度相同时, 均显著高于肝脏和胃(P＜0.05), 肝脏和胃淀粉酶活力在各盐度处理组之间均无显著性差异(P＞0.05)。比较同种消化器官不同盐度处理中的淀粉酶活力可知, 肝脏和肠道淀粉酶活力在各盐度处理中均无显著性差异(P＞0.05); 在盐度18‰时, 胃淀粉酶活力最高, 显著高于盐度10‰处理组(P＜0.05),而与盐度0和5‰处理组之间无显著性差异(P＞0.05)。

图6 在不同盐度下太平洋双色鳗鲡幼鳗肝脏、胃和肠道蛋白酶活力Fig. 6 The activity of protease in the liver, the stomach and the intestine of A. bicolor pacifica elver at different salinities

图7 在不同盐度下太平洋双色鳗鲡幼鳗肝脏、胃和肠道淀粉酶活力Fig. 7 The activity of amylase in the liver, the stomach and the intestine of A. bicolor pacifica elver at different salinities

如图 8所示, 在各盐度下太平洋双色鳗鲡肠道脂肪酶活力为 67.50—92.08 U/(mg·min), 在盐度相同时, 除盐度 10处理组, 均显著高于肝脏和胃(P＜0.05), 肝脏和胃脂肪酶活力在各盐度下均无显著性差异(P＞0.05)。比较同种消化器官不同盐度处理中的脂肪酶活力可知, 肝脏、胃和肠道脂肪酶活力在各盐度处理中均无显著性差异(P＞0.05)。

图8 在不同盐度下太平洋双色鳗鲡幼鳗肝脏、胃和肠道脂肪酶活力Fig. 8 The activity of lipase in the liver, the stomach and the intestine of A. bicolor pacifica elver at different salinities

3 讨论

3.1 盐度对花鳗鲡幼鳗和太平洋双色鳗鲡幼鳗生

长性能的影响

盐度是影响鱼类生长代谢等各种生理活动的重要环境因素, 其变化迫使鱼类自身通过一系列生理变化来调整体内外渗透压的动态平衡, 从而对鱼体与环境间物质交换与能量流动产生影响[10]。鱼类种类繁多, 生物学特征及生活环境存在差异, 因此其渗透调节方式与机理及能量消耗的关系也存在较大差异。环境盐度对鱼类生长的影响存在以下两种现象: (1)鱼类基本处于等渗环境下(内环境渗透压一般维持在300—400 mOsm/kg, 即盐度为10‰—15‰的水体), 生长率最高, 饵料系数最低, 如弓斑东方鲀(Fugu obscurus)[11]、小锯盖鱼(Centropomus parallelus)[12]、 暗纹东方 鲀(Takifugu obscures)[13]等;(2)鱼类在低渗或者高渗环境下, 生长率最高, 饵料系数最低, 如欧洲鲈(Dicentrarchus labrax)[14]、波纹短须石首鱼(Umbrina cirrosa)[15]、高体革(Scortum barcoo)[16]等。本实验结果与后者相符, 花鳗鲡幼鳗和太平洋双色鳗鲡幼鳗均在淡水中生长良好, 特定生长率高于各盐度组, 而饵料系数低于各盐度组。王云峰等[10]认为鱼类渗透压调节的能量消耗极小, 可能并不足以影响生长。而盐度变化不仅作用于鱼类的渗透压调节, 对其摄食行为、食欲、新陈代谢的刺激或抑制以及激素的传导途径都产生影响[17]。Kearney等[7]的研究结果显示, 水温 17.5℃时, 养殖于盐度 0‰、17.5‰和 35‰水体中的澳洲鳗鲡玻璃鳗特定生长率无显著性差异(P＞0.05), 水温26.5℃时, 养殖于盐度0‰和 17.5‰水体中的澳洲鳗鲡玻璃鳗特定生长率显著高于盐度 35‰组; 在水温 17.5℃和 26.5℃时,大鳗鲡玻璃鳗均在盐度 0‰组中获得最大特定生长率。这表明盐度对鳗鲡属鱼类生长的影响同时受到温度的作用, 该作用具有一定的种类特异性。另外,盐度对不同生活史阶段的同种鳗鲡属鱼类生长的影响也存在差异, 如 Okamura等[5]比较了日本鳗鲡柳叶鳗在不同盐度梯度下的生长性能, 发现其在海水浓度为30%和50%的水体(即盐度10‰和17.5‰)养殖 7d后, 体宽显著增加(P＜0.05), 而养殖于海水浓度0、10%、70%和100%的个体体宽无显著性变化(P＞0.05); Tzeng等[4]发现分布于海洋和河口地区(即盐度 17.5‰—35‰)的日本鳗鲡(A. japonica)幼成鳗雌性个体生长速率显著高于淡水个体。

3.2 盐度对花鳗鲡幼鳗和太平洋双色鳗鲡幼鳗消化酶活力的影响

鱼类对营养物质的消化、吸收需要消化酶的参与, 酶活力的高低在一定程度上反映了鱼类消化、吸收能力的大小, 而盐度可通过影响消化酶活力大小来影响鱼类对食物的消化吸收。在一定范围内盐度的改变会导致鱼体消化酶活力的变化, 主要分为3种情况: 激活作用、无影响、抑制作用。在本实验中, 盐度对花鳗鲡幼鳗和太平洋双色鳗鲡幼鳗消化酶活力的影响存在差异, 其中各盐度处理组的花鳗鲡蛋白酶活力无显著变化, 淀粉酶和脂肪酶活力均随盐度的增加而下降; 太平洋双色鳗鲡胃蛋白酶在盐度10‰时最大, 肝蛋白酶在盐度18‰时最大, 而淀粉酶和脂肪酶活力在各盐度处理组无显著变化。这表明盐度的增加对花鳗鲡的淀粉酶和脂肪酶活力具有抑制作用, 对太平洋双色鳗鲡的蛋白酶活力有一定的激活作用, 这与盐度对两种鳗鲡生长性能的影响基本相符。许多研究表明, 海水中部分无机离子对酶具有激活或抑制作用, 无机离子直接作用于消化酶是盐度影响鱼体内消化酶活力的主要原因[18]。如较低浓度的氯离子对虱目鱼(Chanos chanos)肠道、胰腺、幽门盲囊和肝脏的α-淀粉酶有激活作用, 而较高浓度的氯离子抑制α-淀粉酶[19]。也有学者认为海水的摄入, 改变了消化器官内环境的pH, 从而引起消化酶活力的变化。而当消化酶活力随着盐度的改变会发生变化时, 鱼类可以通过产生同工酶保持正常的消化水平[20]。

鱼类对各种消化酶活力的比值, 可看成是对饵料中蛋白质、糖类和脂类物质消化能力的比较。一般认为杂食性鱼类和草食性鱼类的蛋白酶活力与淀粉酶活力比值低于肉食性鱼类[21]。在本实验中花鳗鲡和太平洋双色鳗鲡各消化器官中蛋白酶活力均远大于淀粉酶活力, 表现出肉食性的特点。另外, 两种鳗鲡的脂肪酶活力在各盐度组中均较高, 与其肌肉中粗脂肪含量较高相符合, 其中花鳗鲡粗脂肪含量为鲜重的8.62%, 太平洋双色鳗鲡为17.37%(另文发表)。因此, 适当提高两种鳗鱼幼鳗饲料中粗脂肪比例, 有助于促进消化吸收, 加快生长, 提高养殖效益。

3.3 不同消化器官间的消化酶活力差异

在本实验结果中, 养殖在各盐度水体的花鳗鲡幼鳗和太平洋双色鳗鲡幼鳗肠道的淀粉酶和脂肪酶活力均显著高于胃和肝脏, 胃蛋白酶活力高于肝脏和肠道。这表明肠道是花鳗鲡和太平洋双色鳗鲡消化淀粉和脂肪的主要场所, 而蛋白质的消化吸收主要在胃中进行。这与田田等[6]对欧洲鳗鲡幼鳗蛋白酶研究的结果基本一致, 而与黄永春等[22]对 4种不同规格欧洲鳗鲡淀粉酶和蛋白酶检测结果不同。其原因可能与实验鱼规格大小有关, 在本研究中两种鳗鲡规格[(9.76±0.36) g、(11.82±0.04) g]均与前者实验鱼规格[(7.2±1.4) g]相似, 而远小于后者所用实验鱼规格(51.5—233 g)。

[1] Guo Q D, Wang Y J, Lü W Q. Combined effects of temperature and salinity on the physiological osmotic induction and antioxidant responses in the juvenile Japanese flounder (Paralichthys olivaceus) [J]. Acta Hydrobiologica Sinica, 2014, 38(1): 58—67 [郭勤单, 王有基, 吕为群. 温度和盐度对褐牙鲆幼鱼渗透生理及抗氧化水平的影响.水生生物学报, 2014, 38(1): 58—67]

[2] Yan M J, Li Z J, Xiong B X. Food intake, growth and feed utilization of puffer fish (Takifugu fasciatus) after different salinity pretreatments [J]. Acta Hydrobiologica Sinica, 2005, 29(2): 142—145 [严美姣, 李钟杰, 熊邦喜. 不同盐度预处理后Ⅰ 鲀龄暗纹东方 的摄食、生长和饲料利用. 水生生物学报, 2005, 29(2): 142—145]

[3] Eric E, Pierre E. Is salinity choice related to growth in juvenile eel Anguilla Anguilla [J]? Cybium, 2004, 28(suppl): 77—82

[4] Tzeng W N, Lizuka Y, Shiao J C, et al. Identification and growth rate comparison of divergent migratory contingents of Japanese eel (Anguilla japonica) [J]. Aquaculture, 2003, 216(1-4): 77—86

[5] Okamura A, Yamada Y, Mikawa N, et al. Growth and survival of eel leptocephali (Anguilla japonica) in lowsalinity water [J]. Aquaculture, 2009, 296(3—4): 367—372

[6] Tian T, Yuan C G, Ruan C X. The study on variation of growth of Anguilla anguilla elver at different salinities [J]. Journal of Fujian Fisheries, 2006, 111(4): 63—66 [田田, 袁重桂, 阮成旭. 欧鳗黑仔苗在不同盐度条件下生长效果的比较. 福建水产, 2006, 111(4): 63—66]

[7] Kearney M, Jeffs A, Lee P. Effects of salinity and temperature on the growth and survival of New Zealand shortfin, Anguilla australis, and longfin, A. dieffenbachii, glass eels [J]. Aquaculture Research, 2008, 39(16): 1769—1777

[8] Jamandre B W D, Shen K N, Yambot A V, et al. Molecular phylogeny of Philippine freshwater eels Anguilla spp. (Actinopterygi: Anguilliformes: Anguillidae) inferred from mitochondrial DNA [J]. The Raffles Bulletin of Zoology, 2007, (suppl): 51—59

[9] Han Y S, Chang C W, He J T, et al. Validation of the occurrence of short-finned eel Anguilla bicolor pacifica in natural waters of Taiwan [J]. Acta Zoologica Taiwanica, 2001, 12(1): 9—19

[10] Luo M Z, Guan R Z, Jin H. Effects of salinity on Na+/K+-ATPase activity in gill and kidney of Anguilla marmorata and A. bicolor pacifica elver [J]. Oceanologia et Limnologia Sinica, 2013, 44(3): 807—813 [罗鸣钟, 关瑞章, 靳恒. 盐度对花鳗鲡(Anguilla marmorata) 和太平洋双色鳗鲡(A. bicolor pacifica) 幼鳗鳃丝及肾脏Na+/K+-ATP酶活力的影响. 海洋与湖沼, 2013, 44(3): 807—813]

[11] Yan M, Li Z, Xiong B, et al. Effects of salinity on food intake, growth, and survival of pufferfish (Fugu obscurus) [J]. Journal of Applied Ichthyology, 2004, 20(2): 146—149

[12] Tsuzukia M Y, Sugaib J K, Maciela J C, et al. Survival, growth and digestive enzyme activity of juveniles of the fat snook (Centropomus parallelus) reared at different salinities [J]. Aquaculture, 2007, 271(1—4): 319—325

[13] Bian P J, Qiu C G, Xu SL, et al. Effects of salinity on growth, activity of non-specific immune and antioxidant enzymes in obscure puffer Takifugu obscures [J]. Acta Hydrobiologica Sinica, 2014, 38(1): 108—114 [边平江, 邱成功, 徐善良, 等. 鲀盐度对暗纹东方 生长、非特异性免疫和抗氧化酶活力的影响. 水生生物学报, 2014, 38(1): 108—114]

[14] Conides A J, Glamuzina B. Laboratory simulation of the effects of environmental salinity on acclimation, feeding and growth of wild-caught juveniles of European sea bass Dicentrarchus labrax and gilthead sea bream, Sparus aurata [J]. Aquaculture, 2006, 256(1—4): 235—245

[15] Mylonas C C, Pavlidis M, Papandroulakis N, et al. Growth performance and osmoregulation in the shi drum (Umbrina cirrosa) adapted to different environmental salinities [J]. Aquaculture, 2009, 287(1—2): 203—210

[16] Liang Y J, Sun X J, Shi D J, et al. Effects of salinity on growth and flesh quality of Scortum barcoo [J]. Acta Hydrobiologica Sinica, 2010, 34(4): 880—884 [梁拥军, 孙向军, 史东杰, 等. 鯻盐度对高体革 生长和肉质的影响.水生生物学报, 2010, 34(4): 880—884]

[17] Boeuf G, Payan P. How should salinity influence fish growth [J]? Comparative Biochemistry and Physiology part C, 2001, 130(4): 411—423

[18] Tian X L, Ren X W, Dong S L, et al. Studies on the specific activities of digestive enzymes of Cynoglossus semilaevis Gunther at different salinities and temperatures [J]. Periodical of Ocean University of China, 2008, 38(6): 895—901 [田相利, 任晓伟, 董双林, 等. 温度和盐度对半滑舌鳎幼鱼消化酶活性的影响. 中国海洋大学学报, 2008, 38(6): 895—901]

[19] Chiu Y N, Benitez L V. Studies on the carbohydrates in the digestive tract of the milkfish Chanos chanos [J]. Marine Biology, 1981, 61(2—3): 247—254

[20] Tang B G, Chen G, Zhang J D, et al. Effects of pH, amylum concentration and temporary-keeping salinity on the activity of amylase in the digestive tract of Lautianus erythopterus [J]. Chinese Journal of Zoology, 2004, 39(2): 70—73 [汤保贵, 陈刚, 张健东, 等. pH、底物浓度及暂养盐度对红鳍笛鲷消化道淀粉酶活力的影响. 动物学杂志, 2004, 39(2): 70—73]

[21] Hofer R, Schiemer F. Proteolytic activity in the digestive tract of several species of fish with different feeding habits [J]. Oecologia, 1981, 48(3): 342—345

[22] Huang Y C, Liu D. Preliminary study on the effect of temperature on proteases and amylases activities from different sizes European eel (Anguillia anguillia) [J]. Journal of Oceanography in Taiwan Strait, 2004, 23(2): 138—143 [黄永春, 刘登. 温度对不同规格欧鳗消化器官蛋白酶和淀粉酶活性影响的初步研究. 台湾海峡, 2004, 23(2): 138—143]

EFFECTS OF THE SALINITY ON THE GROWTH PERFORMANCE AND DIGESTIVE ENZYME ACTIVITIES OF ANGUILLA MARMORATA ELVER AND A. BICOLOR PACIFICA ELVER

LUO Ming-Zhong1, GUAN Rui-Zhang2, 3and JIN Heng1
(1. College of Animal Science, Yangtze University, Jingzhou 434025, China; 2. Engineering Research Centre of Eel Modern Technical Industry, Ministry of Education, Xiamen 361021, China; 3. Fisheries College, Jimei University, Xiamen 361021, China)

In this study, we investigated the effects of salinity on the growth and the activities of the digestive enzymes of Anguilla marmorata elver [body weight (9.76 ± 0.36) g] and A. bicolor pacifica elver [body weight (11.82 ± 0.04) g]. Subjects of the two species were cultured at four salinities (0‰, 5‰, 10‰ and 18‰) for 30 days. We first weighed all the eels in each tank, and then analyzed three types of digestive enzymes (protease, amylase and lipase) in three digestive organs (liver, stomach and intestine) of both species. The results showed that the survival rates of the two species were both 100% in all four salinities with no death case. In fresh water both species exhibited excellent growth performance, the highest specific growth rates (SGR), and the lowest food conversion ratios (FCR). The effects of salinity on the digestive enzyme activities were different between the two species. In the three digestive organs, the salinity did not significantly affect the activity of protease in A. marmorata elver (P＞0.05), but the increase in salinity caused reduced activities of amylase and lipase. For A. bicolor pacifica elver, the highest activity of protease in the stomach and the liver appeared at the salinities of 10‰ and 18‰ respectively; whereas the salinity did not affect the activities of amylase and lipase in the three digestive organs (P＞0.05). We deducted that saline water could inhibit the activities of amylase and lipase in the liver, the stomach and the intestine of A. marmorata elver, but might increase the protease activity of A. bicolor pacifica elver. At the same salinity the same digestive enzymes in different digestive organs showed different activities. For both species the activities of amylase and lipase in the intestine were significantly higher than in the liver and the stomach (P＜0.05); the activity of protease in the stomach was insignificantly higher than in the liver and the intestine (P＞0.05). Our study suggested that the high activity of lipase enabled A.marmorata elver and A. bicolor pacifica elver to digest fat efficiently. Therefore it may be suitable to increase the portion of the crude fat in the compounding feed, which could boost the digestion and absorption of nutrients and thus improve the quality of aquaculture.

Salinity; Anguilla marmorata; A. bicolor pacifica; Growth performance; Digestive enzyme

S965.223

A

1000-3207(2015)04-0653-08

10.7541/2015.87

2014-07-21;

2014-12-12

国家农业部公益性行业(农业)科研专项(nyhyzx07-043-03)资助

罗鸣钟(1984—), 男, 湖北黄石人; 博士, 讲师; 主要从事水产养殖学研究。E-mail: kklmz413@hotmail.com

关瑞章, E-mail: rzguan@jmu.edu.cn