外源性肉碱对幼鲤生长性能及生化指标的影响

董 婧，李 林，于业辉，赵莹莹，陈玉珂，王清滨，王秋举，张东鸣

(1 吉林农业大学 动物科技学院，吉林 长春 130118；2 沈阳农业大学 畜牧兽医学院，辽宁 沈阳 110866)

外源性肉碱对幼鲤生长性能及生化指标的影响

董 婧1,2，李 林2，于业辉2，赵莹莹2，陈玉珂1，王清滨1，王秋举1，张东鸣1

(1 吉林农业大学 动物科技学院，吉林 长春 130118；2 沈阳农业大学 畜牧兽医学院，辽宁 沈阳 110866)

【目的】 研究外源性肉碱对鲤鱼幼鱼生长性能、背肌生化组成及血浆生化指标的影响，为水产饲料中肉碱的添加提供理论依据。【方法】 在基础饲料中分别添加0(对照组)，50，100，150，200和400 mg/kgL-肉碱组成试验饲料，饲喂平均体质量(2.5±0.5) g/尾的鲤鱼(Cyprinuscarpio)幼鱼60 d，试验结束后取样，测定增重率、特定生长率、饲料系数、成活率、背肌生化组成及血浆甘油三酯、总胆固醇、白蛋白、尿素氮等指标。【结果】L-肉碱的添加量为200 mg/kg时，鲤鱼幼鱼的试验末体质量、增重率和特定生长率显著提高，饲料系数显著降低(P<0.05)，成活率与对照组无显著差异(P>0.05)。随着L-肉碱添加量的增大，背肌粗蛋白含量总体呈增加趋势，粗脂肪含量呈下降趋势，当L-肉碱添加量为200 mg/kg时，与对照组相比，粗蛋白含量增加了11.18%，粗脂肪含量降低了12.65%，差异均达显著水平(P<0.05)，但其与添加400 mg/kgL-肉碱试验组相比，二者粗蛋白和粗脂肪含量无显著差异(P>0.05)。饲料中添加L-肉碱可显著降低血浆中总胆固醇和甘油三酯质量浓度，当L-肉碱添加量为150 mg/kg时，总胆固醇质量浓度最低，与对照组相比降低了36.08%，差异显著(P<0.05)；添加50 mg/kgL-肉碱时，与对照组比较，甘油三酯质量浓度下降了50.28%，差异显著(P<0.05)。添加L-肉碱后，鲤鱼幼鱼血浆中尿素氮浓度显著下降，白蛋白质量浓度显著增加(P<0.05)，当L-肉碱添加量为200 mg/kg时，尿素氮浓度最低，白蛋白质量浓度最高，分别为13.49 mmol/L和9.12 g/L，与对照组相比较分别下降了17.49%和增加了32.56%，差异均达显著水平(P<0.05)。【结论】 本试验条件下，外源L-肉碱可促进鲤鱼幼鱼生长，降低背肌中粗脂肪含量及血浆中尿素氮浓度，增加背肌中粗蛋白含量及血浆中白蛋白质量浓度，其中添加200 mg/kgL-肉碱效果最好。

L-肉碱；鲤鱼幼鱼；生长性能；生化组成；血浆生化指标

鱼类养殖过程中，应激因子不断增多，如放养密度过大、大量摄入高能高脂饲料、水质条件恶化等因素影响鱼类对饲料中营养成分的吸收、鱼肉的品质以及肝脏等组织器官的功能，导致各种疾病的发生。L-肉碱(L-carnitine)是一种具有多种生物学活性的绿色添加剂，参与机体的能量代谢，其最主要的生理学功能是参与长链脂肪酸氧化，辅助酯酰辅酶A (COA)通过电位差阴离子通道进入线粒体基质，最终释放出酰基COA参与β-氧化，产生ATP[1]。L-肉碱对鱼类的作用研究主要集中在促生长，促脂肪酸氧化，节约蛋白质，减少氨排泄，抵抗氨及外源性化合物的毒性，有助于适应极端水温的应激，提高高水平运动能力，改变肌肉组成和提高生殖能力等方面[2]，但研究结果并非都是积极的，在过去的20年，研究者一直在探讨动物饲料中是否需要添加外源L-肉碱。Dias等[3]研究表明，L-肉碱对欧洲黑鲈(Dicentrarchuslabrax)无促生长和促脂肪酸氧化作用；Selcuk等[4]对虹鳟(Oncorhynchusmykiss)的研究结果也显示，L-肉碱无促生长和促脂肪酸氧化作用；而 Ozório[5]综述了L-肉碱添加的积极作用，并分析了其作用效果的影响因素，表明鱼类不同生长阶段添加外源性L-肉碱的作用效果不同。而目前，有关L-肉碱对幼鱼期鱼类作用的研究报道较少。本试验选择鲤鱼(Cyprinuscarpio)幼鱼为研究对象，在基础饲料中添加不同含量的L-肉碱，研究其对鲤鱼幼鱼(以下简称幼鲤)生长性能、生化组成及血浆生化指标的影响，旨在探讨外源L-肉碱对幼鲤的促生长作用及降脂效果，从而为L-肉碱添加问题提供参考资料和理论依据。

1 材料与方法

1.1 材 料

试验用鱼购于辽宁省大伙房水库坝下鱼种场，挑选健康及规格一致的幼鲤，经20 mg/L 高锰酸钾消毒后，驯养备用，驯养期间投喂基础饲料。根据SC/T 1026-2002(鲤鱼配合饲料水产行业标准)，按幼鲤营养需求设计的基础饲料配方见表1。在基础日粮中分别添加0，50，100，150，200和400 mg/kgL-肉碱(购于sigma公司，货号C0158，纯度≥98%)，配制成6组试验饲料，原料经粉碎过孔径为0.25 mm的网筛，按配方称质量，逐级混匀，挤压成直径1.0 mm颗粒，在60 ℃恒温箱中经5 h烘干后置于-4 ℃冰柜中保存、备用。

1.2 试验设计与饲养管理

试验用鱼先用基础饲料驯养15 d后，选择健康无伤病的540尾幼鲤(体质量均为(2.5±0.5) g/尾)，随机分到18个水族箱中，分为6个处理组，每处理组3个重复箱，每个重复30尾鱼。其中第1组为对照组，投喂基础饲料，L-肉碱的添加量为0 mg/kg；2、3、4、5和6组为试验组，分别投喂在基础饲料中添加50，100，150，200，400 mg/kgL-肉碱试验饲料。分组后预饲1周，然后开始正式试验，正式试验期60 d。

注：预混料包括维生素和矿物质。预混料的维生素含量：VA8 000 IU/kg，VD32 000 IU/kg，VE200 mg/kg，VK35 mg/kg，VB115 mg/kg，VB215 mg/kg，烟酸 150 mg/kg，泛酸 80 mg/kg，VB610 mg/kg，VB120. 03 mg/kg，肌醇 100 mg/kg，V-C磷酸酯 400 mg/kg，叶酸 40 mg/kg，生物素 5 mg/kg。预混料的矿物质含量: Zn 90 mg/kg，Fe 150 mg/kg，Cu 4 mg/kg，Mn 30 mg/kg，I 0.4 mg/kg，Co 0.5 mg/kg，Se 0.2 mg/kg，Mg 200 mg/kg。

Note:Vitamin contents:VA8 000 IU/kg,VD32 000 IU/kg,VE200 mg/kg,VK35 mg/kg,VB115 mg/kg,VB215 mg/kg,niacin 150 mg/kg,D-Ca pantothenate 80 mg/kg,VB610 mg/kg,VB120.03 mg/kg,inositol 100 mg/kg,vitamin C phosphate 400 mg/kg,folic acid 40 mg/kg,and biotin 5 mg/kg.Mineral contents:Zn 90 mg/kg,Fe 150 mg/kg,Cu 4 mg/kg,Mn 30 mg/kg,I 0.4 mg/kg,Co 0.5 mg/kg,Se 0.2 mg/kg,and Mg 200 mg/kg.

试验采用循环流水饲养系统，水族箱尺寸为150 cm×60 cm×80 cm，试验分组前先用20 mg/L高锰酸钾水溶液消毒水族箱，再用清水冲洗干净。试验用水为经气泵充分曝气1～2 d的自来水，且与水族箱中的水温保持一致，方便换水。用加热棒控制水温保持恒定。试验期间平均水温(26±1) ℃；光周期为自然光周期；溶解氧≥5 mg/L，pH 7～8，NH3-N≤0.2 mg/L，亚硝酸盐≤0.05 mg/L。隔天早上吸污后，换水1/3。日投饵率为3%～6%，视鱼群摄食情况在此范围变动，日投饵3次(08:00，13:00，18:00)，投饵方法为人工手撒。记录试验分组时每箱鱼体质量和饲养期间日投饵量。饲养遵循“四定”(即定时、定位、定质、定量)和“三看”(即看天、看水、看鱼)原则。

1.3 样品采集与测定方法

饲养试验结束禁食24 h后，先以水族箱为单位称质量，然后每箱随机抽取3尾鱼，分别测量每尾鱼的体质量；每箱再随机抽取3尾鱼，放于冰盘上，用含抗凝剂(质量分数1%肝素钠)的一次性注射器(1 mL)从尾静脉采血，由于鱼体较小，每尾鱼血量不足以提供试验需要，因此需要将同一箱中试验鱼的血液收集在一个离心管。将离心管置于离心机中，4 000 r/min离心10 min，制备血浆，贮存于-20 ℃冰箱内保存待用。血浆样品指标的测定在2周内进行完毕。在冰盘上解剖试验鱼，迅速取出背部白肌放入冻存管中，用液氮浇冻后于-80 ℃保存备用。

1.3.1 幼鱼生长指标 生长指标包括增重率(Growth rate，WGR)、特定生长率(Specific growth rate，SGR)、饲料系数(Feed conversion ratio，FCR)、成活率(Survival rate)。主要计算公式如下：

增重率=(Wt-W0)/W0×100%，

特定生长率=(lnWt-lnW0)/t×100%，

饲料系数=C/(Wt-W0)，

成活率=Nt/N0×100%。

式中：W0为初始体质量(g)，Wt为终末体质量(g)，t为试验时间(d)，C为投饵量(g)，N0为初始鱼尾数，Nt为终末鱼尾数。

1.3.2 幼鱼背肌生化组成 取肌肉样品，分别采用恒温干燥法(105 ℃)、凯氏定氮法、索氏抽提法和马福炉灼烧法(550 ℃)测定肌肉中水分、粗蛋白、粗脂肪和灰分含量(均为质量分数)[6]。

1.3.3 幼鱼血浆生化指标 血浆样品测定指标包括甘油三酯(Triglyceride，TG)、总胆固醇(Cholesterol，CHO)、白蛋白质量浓度及尿素氮(BUN)浓度。甘油三酯质量浓度测定采用甘油磷酸氧化酶-过氧化物酶(GPO-PAP)法；总胆固醇质量浓度测定采用胆固醇氧化酶-过氧化物酶(GHOD-PAP)法；白蛋白质量浓度测定采用溴甲酚绿比色法；尿素氮浓度测定采用脲酶法。以上指标测定均采用南京建成生物技术有限公司生产的试剂盒，测定步骤严格按照试剂盒说明书进行。

1.4 数据统计与分析

原始数据采用Excel 2007初步整理后，采用SPSS 13.0软件中的单因子方差分析(One-Way ANOVA)进行数据的统计分析，所得结果用“平均值±标准差(mean±SD)”表示。经方差分析后，采用Duncan’s多重比较法分析试验结果，当P<0.05时，认为差异显著。

2 结果与分析

2.1 外源性L-肉碱对幼鲤生长性能的影响

基础饲料中添加不同水平的L-肉碱对幼鲤生长性能的影响见表2。由表2可知，添加200 mg/kgL-肉碱组鱼的试验末体质量、增重率和特定生长率均最高，饲料系数最低；与对照组相比，其增重率提高了73.78%(P<0.05)，饲料系数下降22.16%(P<0.05)；与50，100，150和400 mg/kgL-肉碱添加组相比，其增重率分别提高了30.50%，53.79%，41.15%和1.38%。添加200 mg/kgL-肉碱组鱼的试验末体质量、增重率和特定生长率与添加400 mg/kgL-肉碱添加组鱼相比差异不显著(P>0.05)，但与0，50，100和150 mg/kgL-肉碱添加组差异显著(P<0.05)。添加50，150，200，400 mg/kgL-肉碱对幼鲤增重率、特定生长率均有明显影响，与对照组相比，增重率分别提高了30.09%，23.12%，73.78%和71.40%(P<0.05)。各试验组成活率均为100%。

注：同列数据后标不同小写字母者表示差异显著(P<0.05)。下表同。

Note:Different lowercase letters in each column indicate significant difference (P<0.05).The same below.

2.2 外源性L-肉碱对幼鲤背肌生化组成的影响

基础饲料中添加不同水平的L-肉碱对幼鲤背肌生化组成的影响见表3。由表3可知，与对照组相比，200 mg/kgL-肉碱添加组鱼背肌水分含量显著降低(P<0.05)，灰分含量无显著变化(P>0.05)，粗脂肪含量降低了 12.65% (P<0.05)，粗蛋白含量增加了11.18% (P<0.05)。添加400 mg/kgL-肉碱组鱼水分含量与对照组相比显著降低(P<0.05)，但与添加200 mg/kgL-肉碱试验组相比无显著差异(P>0.05)；灰分和粗蛋白含量与对照组相比显著升高(P<0.05)；粗脂肪含量最低，与对照组相比显著降低了17.55%(P<0.05)。200与400 mg/kgL-肉碱添加组鱼的粗蛋白和粗脂肪含量无显著差异(P>0.05)。

2.3 外源性L-肉碱对幼鲤血浆生化指标的影响

基础饲料中添加不同水平的L-肉碱对幼鲤血浆生化指标的影响见表4。由表4可知，与对照组相比，50 mg/kgL-肉碱添加组鱼血浆中甘油三酯质量浓度显著降低(P<0.05)，但之后随着L-肉碱添加量的逐渐增加，甘油三酯质量浓度与50 mg/kgL-肉碱添加组相比显著增大(P<0.05)，但100，150，200和400 mg/kgL-肉碱组间差异不显著(P>0.05)。与对照组相比，50，100，150，200和400 mg/kgL-肉碱添加组鱼血浆中甘油三酯质量浓度分别下降了50.28%，23.36%，28.75%，27.80%和29.06% (P<0.05)。随着L-肉碱添加量的增加，幼鱼血浆中总胆固醇质量浓度总体降低。与对照组相比，50，100，150，200和400 mg/kgL-肉碱添加组幼鱼血浆中总胆固醇质量浓度分别下降了 16.46%，24.05%，36.08%，31.65%和30.07% (P<0.05)。

由表4还可知，随着L-肉碱添加量的增大，鲤鱼幼鱼血浆中白蛋白质量浓度与对照组相比明显增加，其中200 mg/kgL-肉碱添加组幼鱼血浆中白蛋白质量浓度最高(9.12 g/L)，与0，50，100，150和400 mg/kgL-肉碱添加组相比分别增加了32.56%，22.58%，9.62%，8.57%和6.54% (P<0.05)，各L-肉碱添加组与对照组差异均显著(P<0.05)。随着L-肉碱添加量的逐渐增加，鲤鱼幼鱼血浆中尿素氮(BUN)浓度与对照组相比显著下降(P<0.05)，其中200 mg/kgL-肉碱添加组幼鱼血浆中尿素氮浓度最低，为13.49 mmol/L，下降了17.49% (P<0.05)；各添加组与对照组相比差异均显著(P<0.05)，但各添加组间差异不显著(P>0.05)。

3 讨 论

3.1 外源性肉碱对幼鲤生长性能的影响

肉碱的化学结构有2个异构体，右旋(D型)和左旋(L型)，体内具有生物活性的是L型。机体内肉碱的来源包括内源性合成和外源性摄取。当内源性肉碱的合成受阻或合成的量不能满足机体需要时则需要添加外源性肉碱，因此肉碱为条件性必需营养素。内源性肉碱合成机理较为复杂，一般成年动物可通过自身合成肉碱满足机体的正常需求，但幼龄动物机体内肉碱合成速度仅为成年动物的 13%～15%[7]，所以幼龄动物的肉碱合成能力弱，存在肉碱缺乏的现象。鱼类生长发育最重要的2种限制性氨基酸为赖氨酸和蛋氨酸，这2种氨基酸恰为内源性肉碱合成的必需因子。因此，外源性肉碱的添加可弥补幼鱼体内肉碱合成能力较弱的不足，减少赖氨酸和蛋氨酸的消耗，节约蛋白质，促进动物生长，降低饲料系数。本试验结果表明，外源L-肉碱可促进幼鲤生长，且与添加量相关。幼鲤在添加200 mg/kgL-肉碱后其试验末体质量、增重率和特定生长率均最高，饲料系数最低，增重率较对照组提高了73.78%(P<0.05)，饲料系数下降22.16%(P<0.05)。添加50，150和400 mg/kgL-肉碱对幼鲤增重率、特定生长率也有影响，与对照组相比，增重率分别提高了30.09%，23.12%和71.40%(P<0.05)。200 mg/kgL-肉碱添加组与400 mg/kgL-肉碱添加组幼鲤的生长性能差异总体不显著(P>0.05)，但与其他添加组差异显著(P<0.05)。本试验结果与其他学者对杂交斑点鲈鱼(Moronesaxatilismale×M.chrysopsfemale)[8]、黑鲷(Sparusmacrocephalus)[9]、麦鲮(Cirrhinusmrigala)[10]、鲫鱼(Carassiusauratus)[11]、草鱼(Ctenopharyngodonidella)[12]、牙鲆(Paralichthysolivaceus)幼鱼[13]的研究结果一致。但也有报道认为，外源性肉碱对鱼类生长无影响，如罗非鱼(Oreochromisniloticus×Oreochromisaureus)[14]、非洲鲶(Clariasgariepinus)[15]等。这些研究结果表明，外源性肉碱对鱼类生长性能的作用效果受多因素影响，如试验鱼的种类、生长发育阶段、饲料组成及营养水平、外源性肉碱的剂量、养殖水温等。

3.2 外源性肉碱对幼鲤背肌生化组成的影响

外源性肉碱对鱼类生长性能影响的报道并非都是积极的，但在减少体脂方面却有较为一致的结论。本试验结果表明，添加一定量L-肉碱可以显著降低鲤鱼幼鱼背肌中粗脂肪含量，显著增加组织中的粗蛋白含量，当L-肉碱添加量为200和400 mg/kg时，鲤鱼幼鱼背肌中粗脂肪含量较对照组分别显著降低了12.65%和17.55% (P<0.05)；当L-肉碱添加量为150，200和400 mg/kg时，鲤鱼幼鱼背肌中粗蛋白含量较对照组分别显著增加了4.24%，11.18%和8.27% (P<0.05)，这与田娟等[12]、高小强等[13]的研究结论一致。一方面，L-肉碱的添加有利于脂肪分解代谢，促进脂肪酸的β-氧化，产生ATP，给机体供能，减少了组织蛋白分解供能，增加了组织中蛋白的积累；另一方面，L-肉碱的添加可以减少内源性肉碱的合成，减少了组织中蛋氨酸和赖氨酸的消耗，提高了氨基酸的利用率，增加了机体氮的储备。

3.3 外源性肉碱对幼鲤血浆生化指标的影响

鱼类血液生理生化指标广泛用于评价机体的新陈代谢水平、健康状况以及营养状况和抗应激能力。血浆中胆固醇、甘油三酯、磷脂、非酯化脂肪酸4类脂类物质统称为血脂，其含量在一定程度上代表着全身的脂类代谢状况。外源性肉碱对鱼类血脂水平影响的报道并不一致。Yang等[16]对银鲈(Bidyanusbidyanus)的研究结果表明，饲料中添加L-肉碱未能降低摄食高脂饲料鱼血浆中总脂、甘油三酯、胆固醇的含量。Dias等[3]对欧洲黑鲈、Selcuk[4]等对虹鳟的研究也得到了相同的结果。但是，L-肉碱能够降低陆生动物血清中甘油三酯和胆固醇含量的文献报道较多[17]。Santulli等[18]对黑鲈的研究结果也表明，L-肉碱可以降低血浆中甘油三酯和胆固醇的含量。高小强等[13]对牙鲆的研究表明，饲料中添加L-肉碱可显著降低牙鲆血清中的甘油三酯和胆固醇含量。前人在草鱼上的研究表明，饲料中添加400 mg/kgL-肉碱时，草鱼血清中的甘油三酯和胆固醇含量分别降低12.60%和13.62%[12]。从本试验结果看，外源L-肉碱显著降低幼鲤血浆中总胆固醇和甘油三酯的质量浓度(P<0.05)，当其添加量为150 mg/kg时，幼鲤血浆中总胆固醇质量浓度最低，与对照组比降低了36.08%，而L-肉碱添加量为50 mg/kg时，甘油三酯质量浓度最低，比对照组降低了50.28%，差异显著(P<0.05)。这与高小强等[13]、黄凯等[19]的研究结果一致。游离酰基是合成胆固醇的原料，而L-肉碱能有效清除游离酰基，降低动物体内胆固醇的积累[19]。甘油三酯特别适合作为能量贮存物质，是由甘油和脂肪酸缩合而成，其中脂肪酸分子的长烷链基本上是碳氢化合物，具有高度还原结构，甘油三酯完全氧化所释放出的能量(38 kJ/g)为同样质量的糖类或蛋白质所释放出能量的2倍多。但是血浆中甘油三酯、胆固醇含量过高会增加血液黏稠度，降低其运输效率，造成高血脂及脂肪肝，危害鱼类健康。肉碱对脂肪酸的正常代谢极为重要，因为细胞器内脂酰基的完全活化与跨膜转运均需要肉碱的参与。肉碱作为跨膜载体将脂肪酸以脂酰肉碱的形式从线粒体外转移至膜内，进行β-氧化，降低血浆中甘油三酯的含量。

尿素氮是机体内蛋白质代谢的主要终末产物。血浆中尿素氮浓度可以准确地反映机体内蛋白质代谢与氨基酸平衡状况，尿素氮浓度下降表明机体氨基酸平衡状况、蛋白质代谢及机体营养状况良好。黄凯等[19]对奥尼罗非鱼的研究表明，饲料中添加L-肉碱使血浆中尿素氮浓度降低11.76%，白蛋白含量升高37.19%。高小强等[13]对牙鲆的研究表明，饲料中添加L-肉碱可有效降低牙鲆幼鱼血清中尿素氮含量，且随L-肉碱含量的增加呈下降趋势，添加1 200 mg/kgL-肉碱降低效果最为明显，较对照组降低34.3%。本试验中，与对照组相比，添加L-肉碱后，幼鲤血浆中尿素氮浓度显著下降，当L-肉碱添加量为200 mg/kg时，尿素氮浓度最低，与对照组比较下降了17.49%；各添加组间血浆中尿素氮浓度差异不显著(P>0.05)。另外，与对照组相比，添加L-肉碱后，血浆中白蛋白质量浓度均显著增加，当添加200 mg/kgL-肉碱时，白蛋白质量浓度最高，与对照组比较增加了32.56%。表明外源性L-肉碱可以降低血浆中尿素氮浓度，增加白蛋白质量浓度，这与Haji-abadi等[20]、Yang等[16]、Ozório等[21]研究结果一致。外源性肉碱能够减少机体内氨基酸分解代谢，有效调节氨基酸平衡，促进蛋白质沉积，但外源性肉碱对氮代谢的可能作用还需深入研究，另外水生动物外源性肉碱的添加量与血浆中甘油三酯、胆固醇、尿素氮等生化指标的相关关系及其影响因素还不明确，有待进一步研究。

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Effects of exogenous carnitine on growth performance and biochemical indexes of common carp (Cyprinuscarpio) juvenile

DONG Jing1,2，LI Lin2，YU Ye-hui2，ZHAO Ying-ying2，CHEN Yu-ke1，WANG Qing-bin1，WANG Qiu-ju1，ZHANG Dong-ming1

(1FacultyofAnimalScienceandTechnology,JilinAgriculturalUniversity,Changchun,Jilin130118,China; 2CollegeofAnimalScienceandVeterinaryMedicine,ShenyangAgriculturalUniversity,Shenyang,Liaoning110866,China)

【Objective】 Effects of exogenous carnitine on growth performance,body composition and plasma biochemical indexes of common carp (Cyprinuscarpio) juvenile were studied to provide theoretical basis for adding exogenous carnitine in aquatic feed.【Method】 Six basal diets withL-carnitine concentrations of 0 (control group),50,100,150,200,and 400 mg/kg were fed to common carp (Cyprinuscarpio) juveniles with initially weighting of (2.5±0.5) g for sixty days.At the end of the feeding trial,growth rate,specific growth rate (SGR),feed conversion ratio (FCR),survival,muscle composition,triglyceride(TG),cholesterol (CHO),albumin,and urea nitrogen(BUN) were determined.【Result】 When feeding 200 mg/kgL-carnitine,growth rate and SGR of common carp juveniles were significantly improved,FCR was significantly decreased (P<0.05),while no significant difference was found in survival rate (P>0.05).With the increase of dietaryL-carnitine amount,lipid content in dorsal muscle decreased significantly (P<0.05) whereas protein content increased significantly (P<0.05).Compared with the control group,lipid content decreased by 12.65% and protein content increased by 11.18% when feeding 200 mg/kgL-carnitine (P<0.05).However,there was no significant difference when adding 400 mg/kgL-carnitine (P>0.05).CHO was decreased by 36.08% when feeding 150 mg/kgL-carnitine and TG was decreased by 50.28% when feeding 50 mg/kgL-carnitine (P<0.05).When feeding 200 mg/kgL-carnitine,BUN was significantly decreased by 17.49% with the lowest value of 13.49 mmol/L while albumin was significantly increased by 32.56% with the highest value of 9.12 g/L(P<0.05).【Conclusion】 In this experiment,addingL-carnitine promoted the growth of common carp juvenile,reduced lipid in dorsal muscle and plasma and BUN in plasma,and increased CP in dorsal muscle and albumin in plasma.The optimal dose of exogenousL-carnitine was 200 mg/kg for common carp juvenile.

L-carnitine;common carp juvenile;growth performance;body composition;plasma biochemical indexes

2013-10-25

国家自然科学基金项目(30671621，31302149)；沈阳农业大学青年教师科研基金项目(20111015)；吉林省发改委产业技术研究与开发项目；东北老工业基地外贸发展项目

董 婧(1982-)，女，辽宁沈阳人，讲师，博士，主要从事水产动物营养研究。E-mail:dong9834@163.com

张东鸣(1962-)，男，吉林长春人，教授，博士，博士生导师，主要从事水产动物营养研究。 E-mail:dmzhang@jlau.edu.cn

时间:2015-01-05 08:59

10.13207/j.cnki.jnwafu.2015.02.006

S965.116

A

1671-9387(2015)02-0058-07

网络出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/61.1390.S.20150105.0859.006.html