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胃黏膜组织中肿瘤坏死因子α及iNOS表达水平与胃炎发病的关系研究

2015-01-13张明文

右江民族医学院学报 2015年5期
关键词:螺杆菌胃炎阴性

张明文

(江西省峡江县中医院,江西 峡江 331400)

慢性胃炎多由幽门螺杆菌(Hp)感染引发,发达国家为30%~50%,发展中国家高达80%以上[1-2]。Hp为慢性胃炎的主要动因,同时细胞毒素、黏附分子、细胞因子/炎症递质均参与Hp感染的炎症反应,同时肿瘤坏死因子α(TNF-α)还被发现参与了慢性胃炎的病理过程,而诱导型一氧化氮合酶(iNOS)产生NO 同为病发的重要机制[3-4]。本次研究旨在研究TNF-α、iNOS水平与Hp胃炎相关性,旨在指导临床,现将结果报告如下。

1 资料与方法

1.1 一般资料 选取我院2011年2月~2014年1月114例慢性胃炎患者为研究对象,符合2012年中国慢性胃炎共识意见[2]中诊断标准,其中男70 例,女44例,年龄22~67岁,平均(41.32±7.45)岁,根据胃镜与组织学检查结果分为Hp阳性组(54例)与Hp阴性组(60例),两组年龄、性别等基线资料差异无统计学意义(P >0.05),具有可比性。患者对本次研究均知情同意。

1.2 方法

1.2.1 TNF-α检测 放射免疫法测定,用0.9%氯化钠冲洗选取的胃黏膜样本至无血,用分析天平对湿质量进行称重并放入微型玻璃匀浆器中,将0.9%氯化钠注入,粉碎组织后放置离心机中,设置参数为3 000r/min,持续离心15 min后提取上清液,保存于-20 ℃冷柜中待检。组织含量根据每克湿质量算出。最后根据TNF-α试剂盒说明书严格操作,在BH6020全自动γ计数器中测出。

1.2.2 iNOS表达水平检测 以免疫组织化学法检测进行测定,先切片常规脱蜡至水,尿素消化30 min,10 ml/L过氧化氢封闭内源酶0.5h,正常羊血清在37 ℃下放置0.5h,后滴加一抗4 ℃放至隔天,将生物素羊抗兔IgG(1∶100)37 ℃40min,滴入ABC 复合物(1∶100)37℃40min,DAB显色后苏木精衬染,脱水透明封片,分为PBS置换一抗(阴性对照组)与明确5-HT 染色阳性小鼠小肠切片(阳性对照组)。光镜辅助下400视野观察每片中相对染色强、阳性细胞多的部位,得出阳性细胞所占比重,将400视野内阳性细胞占有面积比例进行综合[5-6]。最终免疫组化结果判定为染色阳性信号处于细胞值,且颜色为棕黄到黄色。

1.3 观察指标 ①对比Hp 阳性组与Hp 阴性组TNF-α、iNOS水平;②分析胃黏膜炎症程度,轻度:炎症细胞轻度浸润,占胃黏膜全层1/3;中度:炎症细胞浸润处于1/3~2/3之间;重度:炎症细胞浸润面积基本达全黏膜层,同时伴胃小凹、黏膜上皮坏死等。

1.4 统计学方法 采用统计学软件SPSS 19.0对研究数据进行分析和处理,计量资料采用(±s)表示,组间对比采用t检验;计数资料采用率表示,组间比较采用χ2检验,以P <0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 两组TNF-α、iNOS 水平对比 Hp 阳 性 组TNF-α水平及iNOS表达均高于Hp阴性组,差异有统计学意义(P <0.001),提示胃炎的病发与TNFα、iNOS居较高水平相关,可作用临床诊断指标。见表1。

表1 两组TNF-α、iNOS水平对比 (±s)

表1 两组TNF-α、iNOS水平对比 (±s)

组别 n TNF-α(ng/mg)iNOS(%)Hp阳性组 54 1.41±0.33 69.34±6.10 Hp阴性组 60 0.64±0.22 21.94±3.87 t 14.790 50.043 P <0.001 <0.001

2.2 胃黏膜炎症程度在两组中分布对比 Hp 阳性组、Hp阴性组胃黏膜炎症严重程度的分布不同,差异有统计学意义(χ2=57.014,P <0.001),Hp阳性组以重度分布较多,Hp阴性组以轻度分布较多。见表2。

表2 胃黏膜炎症程度在两组分布对比 (n,%)

3 讨论

Hp为革兰阴性细菌,对单核细胞有刺激作用,外膜成分中含有脂多糖,可使单核细胞、巨噬细胞分泌促进炎症递质分泌,同时鞭毛蛋白也发挥协同作用。另外Hp在为乳液与胃黏膜上皮的中性微氧环境中定植,可立即释放出VacA、CagA 等毒素,最终可加重炎症反应[6-7]。

TNF-α为单核细胞、巨噬细胞受到致炎因子影响后所释放的细胞因子,为促炎症蛋白,可使中性粒细胞出现移动,具体机制为调控内皮细胞上黏附分子和中性粒细胞表达,还可诱导中性粒细胞黏附、白细胞穿出血管壁,导致胃黏膜内细胞损伤,进而减少血流量[8-9]。胃黏膜血流是胃黏膜整体防御机制的重点,因此出血可直接导致胃黏膜损伤。同时TNF-α能够作用于靶细胞膜的磷脂代谢,进而导致氧自由基出现,引发溶酶体破裂,使组织出现损伤和死亡[10]。

NO 主要由一氧化氮合酶(NOS)催化形成,NOS活性变化可使NO 生成量与正常的生物效应受到影响。其具有广泛生物效应,具有正反两面性,一方面有生理功能,同时又是炎症递质。正常生理状态下,胃黏膜血管内皮细胞与神经元产生的NO 含量较低,主要作用为调节闭黏液与胃黏膜微循环与黏液的分泌,是胃黏膜的重要保护物质。但在炎症的病理状态下,NO过量产生会导致羟自由基和过氧硝基阴离子的毒性上升,或可引发正常基因突变。有研究显示Hp感染可提高NO 水平,而炎症细胞分泌以及大量细胞因子、白解毒等物质的释放可提高iNOS 表达。本次研究中Hp阳性患者iNOS 表达水平显著高于Hp 阴性,且Hp阳性组中、重度患者显著高于对照组,可见iNOS表达上升是慢性胃炎致病机制之一,

综上所述,TNF-α、iNOS 表达水平上升是胃炎发病的重要机制,应引起临床的关注。

[1] 赵敏,吕宾,黄宣,等.胃复春对肿瘤坏死因子诱导人胃上皮GES-1细胞炎症和肠化的影响[J].中国中西医结合消化杂志,2012,20(9):394-397.

[2] 中华医学会消化病学分会,房静远,刘文忠,等.中国慢性胃炎共识意见(2012年,上海)[J].中华消化杂志,2013,33(1):5-16.

[3] 卢灿荣,孙刚,周智勇,等.血清中白细胞介素及肿瘤坏死因子-α含量与幽门螺杆菌感染的关系[J].中华医院感染学杂志,2012,22(8):1552-1554.

[4] 伍红英,方慧祺,邓燕,等.尾型同源异型盒基因2、肿瘤坏死因子α蛋白表达及幽门螺杆菌感染与慢性胃病伴肠上皮化生关系研究[J].中国医师进修杂志,2014,37(4):20-23.

[5] 孙波.肿瘤坏死因子α和白介素1β及诱导型一氧化氮合酶的表达与幽门螺杆菌相关性胃炎的关系[J].中国全科医学,2010,13(11):1155-1157.

[6] 黄伟萍,王世俊.SCC-Ag CEA 和CA125联合检测在非小细胞肺癌组织分型与分期中的意义[J].现代实用医学,2009,21(6):597.

[7] 汤建华,苏峰,徐今宁,等.放射免疫法检测血清神经元特异性烯醇化酶诊断小细胞肺癌价值的系统评价[J].中国循证医学杂志,2009,9(5):531-535.

[8] 马芝金,陈铁军,魏永,等.几种常用的肿瘤标志物在肺癌诊治中的应用价值[J].检验医学与临床,2011,8(4):414-415.

[9] Lee G,Ge B,Huang TK,et al.Positive identification of CA125pan cancer biomarker from serum specimens of cancer patients[J].Cancer Biomark,2010,6(2):111-117.

[10] 尚文群,周耀洪,王晓丽,等.非小细胞肺癌患者血清CYFRA21-1浓度与病理分期关系的探讨[J].放射免疫学杂志,2010,23(4):358.

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