APP下载

小反刍兽疫概述

2014-08-15蔡冬冬李金海裴超信

四川畜牧兽医 2014年5期
关键词:兽疫绵羊山羊

蔡冬冬,李金海,邢 坤,裴超信,陈 斌

(四川省动物疫病预防控制中心,四川 成都 610041)

小反刍兽疫(PPR)是由副粘病毒科的麻疹病毒引起的急性、接触性传染疫病,主要感染绵羊、山羊,其中山羊高度易感,野生小反刍兽偶有发生。世界动物卫生组织(OIE)将其列为必须报告的动物疫病,我国也将其列为一类动物疫病。此病1942年首次在非洲科特迪瓦发生,随后蔓延至南非、北非、阿拉伯半岛的大部分中东国家和中亚、远东地区,甚至越过土耳其向欧洲传播。2007年,我国西藏地区首次发生该疫情,之后由边境逐渐向内地传播。2013年以来,农业部发布新疆、甘肃、内蒙古、宁夏、陕西等多省发生了小反刍兽疫疫情。该病已经成为威胁我国养羊业发展的重要疫病。为了使兽医从业者对该病有更加全面深入的了解,并及时有效地进行防控,笔者就小反刍兽疫作一个全面概述。

1 病原特点

小反刍兽疫病毒(PPRV)属于副粘病毒科麻疹病毒属。病毒粒子多为圆形或椭圆形,粒子外有一层囊膜,上有纤突。对热敏感,50℃ 60min即可灭活,70℃以上迅速灭活。在 pH 7.2~7.9时比较稳定,pH<4.0或pH>11.0条件下失活。对乙醇、乙醚和一些去垢剂敏感,大多数化学消毒剂(如酚类、2%NaOH等)24h即可灭活,非离子去污剂可使病毒纤突脱落,降低感染力。PPR目前只有一个血清型。根据PPRV的F、H和N基因的差异可将其划分为4个分支,其中I、II、III分支源于非洲,IV分支源于亚洲并在亚洲广泛存在,中国西藏地区广泛流行的毒株就属于IV分支。

2 流行病学特点

PPR的传染源主要为患病动物及隐性感染动物,无临床症状的病羊尤为危险,病畜的口、鼻、呼吸道等分泌物和排泄物,甚至精液及胚胎均含有病毒。PPRV既可通过直接接触等水平传播,也可通过精液及胚胎等垂直传播,还可通过引种、国际贸易、野生动物迁徙等远距离跨界传播。

山羊和绵羊是该病的自然宿主,山羊比绵羊易感,羔羊较成年羊易感,尤其是山羊羔的临床症状及病理变化最明显,也最易发病死亡。岩羊、野山羊、盘羊、鬣羊、瞪羚羊、长角大羚羊、亚洲水牛、骆驼等可感染发病。白尾鹿在实验条件下表现为亚临床感染或严重发病,能产生抗体。牛呈亚临床感染,并能产生抗体。

PPR一年四季均可发生,但多雨季节和干燥寒冷季节多发。潜伏期一般为4~6d,短者1~2d,长者10d,最长可达21d。一般易感羊群发病率可达60%以上,病死率可达50%以上。

3 临床诊断

3.1 临床症状 临床表现为发病急,高热达41℃以上,可持续3~5d,特急性病例通常在发热后期大量死亡,症状较轻病例通常在发病10~14d后自行康复。口鼻腔排出大量水样分泌物,随病程深入逐步变成脓性,脓液干结,发出恶臭。发烧开始4d内,齿龈充血,进一步发展后口腔黏膜出现弥漫性溃疡,并大量流涎。发热2~3d,病畜开始腹泻,伴有严重脱水、消瘦、虚脱,怀孕母羊可以发生流产。在疾病后期,肺炎、咳嗽、胸部啰音以及腹式呼吸是常见表现。

3.2 病理变化 病变与牛瘟相似,糜烂性损伤从嘴延伸到瘤胃、网胃交接处。上呼吸道黏膜可见严重充血,伴有鼻孔和气管的溃疡,还有支气管肺炎、肺尖肺炎病变。在大肠内,盲肠、结肠结合处出现特征性线状出血或斑马样条纹。肠淋巴组织肿大、坏死,肠系膜淋巴组织可能轻微肿大、水肿,脾脏可能出现坏死病变。出现脓性结膜炎,肾和膀胱充血,母羊可见阴户和阴道糜烂。组织学上可见肺部组织出现多核巨噬细胞和细胞内嗜酸性包涵体。

3.3 鉴别诊断 PPR应与绵羊和山羊的牛瘟、巴氏杆菌病、山羊传染性胸膜肺炎、蓝舌病等症状相似的疫病相区别。本病主要发生在雨季,病畜多为山羊,绵羊较少发病。与病羊接触的牛及大型偶蹄类野生动物呈隐性感染,与牛瘟不难区分。山羊巴氏杆菌病和山羊传染性胸膜肺炎是以呼吸系统症状为主,无口腔和舌部糜烂。蓝舌病主要感染绵羊,而山羊较少发病,并且一般不引起腹泻。

4 实验室诊断

目前,已有多种检测技术可用于PPR诊断,如传统的琼脂凝胶免疫扩散试验(AGID)、对流免疫电泳(CIEP)、病毒中和试验(VNT)等,但这些方法或特异性、敏感性较差,或操作复杂、费时。因此基于血清学及分子生物学新技术研发的PPR诊断方法应运而生,包括酶联免疫吸附试验(ELISA)、逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)等。

4.1 血清学诊断 在国际贸易中,指定的血清学诊断方法为病毒中和试验,该方法灵敏、特异,但是通常需要10~12 d,试验要求较高,不适合大规模样品检测。替代方法为ELISA,因其具有敏感性和特异性较高的优点,已经成为目前较常用的PPR血清学检测方法,并被不断研究和发展。除了ELISA方法外,蒋梅(2012)基于免疫酶技术建立了PPR快速诊断技术,该方法具有快速、简便、眼观可判实验结果的优点。

4.2 分子生物学诊断 目前,已经建立了多种检测PPR的RT-PCR方法。Balamurugan V等以M和N基因建立了多重PCR,该方法把检测时限提早到动物感染PPRV后7d。另外,分子生物学新技术实时荧光定量PCR和环介导等温扩增(LAMP)技术也被应用于PPR的检测。Balamurugan V等针对M基因建立了SYBR green实时荧光PCR检测方法,该法比传统PCR方法更加灵敏、快速;Polci A等以N基因为分子基础设计引物,利用TaqMan探针建立了实时荧光PCR,该方法具有很高的特异性。我国的国家标准中,推荐以N基因为靶基因建立PCR及实时荧光PCR检测方法。

5 综合防控

PPR尚无有效的治疗方法,疫苗接种是阻止该病发生,减少病毒扩散及潜伏感染的有效手段,目前,弱毒疫苗已为我国的PPR防控作出了很大的贡献,然而,弱毒苗存在毒力返强的风险。一般情况下,我国在未发生过本病的地区不建议采取疫苗接种,而应通过严格执行兽医卫生综合防治措施来预防本病;受威胁地区必要时,经农业部批准可以采取免疫措施;疫区严格按照农业部要求开展强制免疫工作。

针对PPR的日常防控:加强防疫管理,提高生产安全水平;加强羊等易感动物的监测排查,及时发现和消除隐患;强化活羊调运监管,做好各项应急准备,一旦发现病羊或病原学阳性,必须严格按农业部要求处置;疫区内的健康羊应就近定点监督屠宰,产品尽可能就近消费;加强边境地区防控,防范境外疫情传入。

发生疫情时,应立即上报,一旦确诊,要严格采取封锁、扑杀、隔离、消毒等控制措施。对动物尸体及产品等进行无害化处理,彻底清洁消毒污染区,及时、有效、彻底地控制和扑灭疫情。对疫区及受威胁区的动物必要时进行紧急免疫接种,对疫区的其他野生易感动物也应及时采取控制措施。

[1]Albina E, Kwiatek O, Minet C, et al.Peste des petits ruminants,the next eradicated animal disease? [J].Vet Microbiol,2013,165(1-2):38-44.

[2]Farougou S,Gagara M, Mensah GA.Prevalence of peste des petits ruminants in the arid zone in the Republic of Niger[J].Onderstepoort J Vet Res,2013,80(1):544.

[3]Kumar N,Chaubey KK,Chaudhary K,et al.Isolation,identification and characterization of a peste des petits ruminants virus from an outbreak in Manipur India[J].J Virol Methods,2013,189(2):388-392.

[4]Kwiatek O, Ali YH, Saeed IK, et al.Asian lineage of peste des petits ruminants virus,Africa[J].Emerg Infect Dis.,2011,17(7):1223-1231.

[5]阮洋,秦峻岭,高玉伟,等.小反刍兽疫病毒N基因的原核表达[J].动物医学进展,2011,32(3):21-25.

[6]孟庆玲,才学鹏,倪伟,等.小反刍兽疫病毒重组抗原间接ELISA检测及初步应用[J].基因组学与应用生物学,2010,29(4):809-814.

[7]邱文英,李伟,李刚,等.小反刍兽疫N蛋白单克隆抗体的制备及竞争ELISA方法的建立[J].农业生物技术学报,2011,19(5):967-972.

[8]Zhang GR, Yu RS, Zeng JY, et al.Development of an epitope-based competitive ELISA for the detection of antibodies against Tibetan peste des petits ruminants virus[J].Intervirology,2013,56(1):55-59.

[9]蒋梅.小反刍兽疫免疫酶快速诊断方法的建立[J].黑龙江畜牧兽医,2012,(19):116-118.

[10]Balamurugan V,Sen A,Venkatesan G,et al.A rapid and sensitiveone step-SYBR green based semi quantitative real time RT-PCR for the detection of peste des petits ruminants virus in the clinical samples[J].Virol Sin.,2012,27(1):1-9.

[11]Polci A,Cosseddu GM,Ancora M,et al.Development and preliminary evaluation of a new real-time RT-PCR assay for detection of peste des petits ruminants virus genome[J].Transbound Emerg Dis.,2013,179(1):8.

猜你喜欢

兽疫绵羊山羊
夏季如何让山羊增膘
数绵羊
数绵羊
奔跑的绵羊
浅析小反刍兽疫免疫失败的原因及应对措施
山羊受骗
聪明的山羊
巧计得绵羊
小反刍兽疫免疫抗体检测结果分析
浅谈小反刍兽疫