APP下载

无血清培养的脐带间充质干细胞治疗乙型肝炎肝硬化的临床观察

2014-07-25邓福珠毕晓云何蓉黄舒陈晶砺陈嘉榆王恒湘郭子宽

组织工程与重建外科杂志 2014年3期
关键词:脐带乙型肝炎白蛋白

邓福珠 毕晓云 何蓉 黄舒 陈晶砺 陈嘉榆 王恒湘 郭子宽

肝硬化是慢性乙型肝炎的常见并发症,晚期出现肝功能的失代偿,以门静脉高压和肝性脑病为主要病理基础,表现为腹水、上消化道出血及神经系统中毒症状。慢性乙型肝炎肝硬化是一种难治性疾病。近年来,抗病毒药物已经在慢性乙型肝炎中广泛应用,但是,阻滞体内病毒复制,只能延缓肝硬化疾病进程,而不能修复既有的肝细胞损伤。肝脏或肝细胞移植是解决该难题的有效手段,但由于肝脏及肝细胞供体缺乏,而乙型肝炎病毒可能在体内持续存在,使移植受者继发病毒性感染,至今仍未成为临床治疗的首选。

间充质干细胞(Mesenchymal stem cells,MSC)是一种源于中胚层的成体干细胞,具有多向分化潜能和免疫调节能力,也可通过释放膜微囊,将生物活性信号传递于受损细胞,从而参与多种组织的损伤修复过程[1-5]。基于此,MSC已经被美国FDA批准,开展150余项临床试验研究。其中,有关自体或异体MSC治疗肝脏纤维化或肝硬化项目26项,细胞应用途径包括外周静脉输注、门静脉或肝动脉输注等。已经报导的临床试验I~II期结果表明,MSC治疗肝硬化可改善部分参试者的肝脏功能,表现为凝血酶原和血清白蛋白浓度的升高,血清胆红素浓度下降,并常伴随腹水减少或消失[6-8]。值得注意的是,培养人MSC传统体系为含胎牛血清的培养基;而在培养过程中,MSC可细胞内化异种蛋白,每108个MSC中牛蛋白含量达到10~30 mg[9]。因此,传统的MSC培养方式,不仅使患者暴露于罹患人畜共患病的风险,也可能因移植细胞死亡释放异体蛋白,引起血清病或其他免疫性疾病。此外,由于血清活性批次间的差异,培养细胞的稳定性不确定。因此,利用无动物源蛋白分子、化学成份清楚的培养基扩增MSC,对治疗的安全性和有效性是十分必要的。本研究主要探讨无血清培养人脐带MSC的特性,以及应用于肝硬化治疗的安全性和有效性。

1 材料与方法

1.1 材料

人脐带由空军总医院妇产科和广州开发区医院妇产科提供,符合实验用人体标本管理规范。

无血清培养基(北京三有利生物技术有限公司),人MSC培养专用胎牛血清(加拿大Stem Cell公司),小鼠抗人CD14、CD31、CD44、CD45、CD73(美国BD公司),维生素C、β磷酸甘油、地塞米松、胰岛素、消炎痛、IMBX(美国Sigma公司),兔抗人IgG、抗牛血清白蛋白抗体(美国Santa Cruz公司)。

1.2 方法

1.2.1 蛋白印迹杂交实验

BCA法测定人血清、胎牛血清和无血清培养基中的蛋白浓度。无血清培养基按照每道80 μg上样,人血清上样蛋白量分别为每道25 μg和50 μg,胎牛血清上样蛋白量分别为每道6 μg、30 μg和60 μg。聚丙烯酰胺凝胶电泳后,将蛋白质转移至硝酸纤维素膜上。含1%BSA的TBS缓冲液封闭过夜,加入抗人IgG重链或抗牛血清白蛋白抗体,室温反应2 h。洗涤后,加入抗辣根酶标记的小鼠源抗兔抗体,室温反应30 min,化学发光法显示结果。

1.2.2 人脐带MSC的培养

[10]的方法,进行人脐带MSC的分离培养。收集人脐带,PBS冲洗,去除脐静脉、脐动脉和脐带外膜,将组织剪碎,加入Ⅰ型胶原酶消化过夜。收集细胞,悬浮于人MSC无血清培养基中,37℃、5%CO2培养5 d。吸除非贴壁细胞,继续培养至细胞达80%融合,胰蛋白酶消化后传代培养。第3~5代MSC用于治疗。治疗前48 h,取少量培养上清行细菌和真菌培养,取少量细胞行流式细胞学表面抗原分析。

1.2.3 流式细胞学鉴定

人脐带MSC分别用无血清培养基和含10%FCS的α-MEM培养,PBS洗涤后加入PE标记的小鼠抗人CD14、CD31、CD44、CD45和CD73单克隆抗体,室温避光反应20 min,PBS洗涤2次。流式细胞仪(FACSCalibur,BD)收集数据,WinMdi分析结果。

1.2.4 患者选择

入组患者均符合中国《慢性乙型肝炎防治指南(2010)》诊断标准。入组条件为:①慢性乙型肝炎患者;②HBsAg和HBeAg均阳性;③存在肝性脑病、腹水、血清白蛋白浓度下降、总胆红素升高、凝血酶原时间≥4 sec,或其中至少一项;④无严重心、肺及肾功能障碍。

本组共13例,其中男12例,女1例,年龄47~59岁,平均52.3±5.5岁。均为慢性乙型肝炎后肝硬化。Child-Turcotte-Pugh肝功能分级为B级11例,C级2例。本组患者均存在轻或中度黄疸,轻度腹水10例,肝性脑病(Ⅰ级)2例;均存在不同程度血清白蛋白浓度降低,凝血酶原时间≥4 sec患者5例。所有患者均签署细胞治疗知情同意书。

1.2.5 细胞治疗及观察

收集鉴定合格的人脐带MSC,以含1%人白蛋白注射液的生理盐水悬浮细胞,总体积为250 mL,细胞总数5.0×107个。细胞悬液由输血器经外周静脉输注,时间为30~60 min。细胞注射期间及24 h内,监测体温、呼吸、血压,实施心电监护。细胞输注每周1次,4次为一个疗程。治疗前后记录症状变化,测定血清总胆红素和白蛋白浓度,并检测凝血酶原时间。

1.2.6 统计学分析

数据以均数±标准差表示,组间差异采用t检验,P0.05为差异显著。

2 结果

2.1 无血清培养条件下MSC的形态

经胶原酶消化的脐带细胞,在无血清培养基中培养24 h,镜下即可见贴壁细胞,呈纺锤形。72 h后,可见由数个细胞组成的小集落,呈放射状分布(图1)。

图1 原代MSC形态观察。Fig.1Morphological observation of primary MSCs

图2 传代培养的MSC形态观察(100×)Fig.2Morphological observation of the passaged MSCs(100×)

继续培养1周后,贴壁细胞融合度达到80%左右进行传代培养,细胞仍维持成纤维细胞样形态(图2)。结果证明,利用无血清培养基培养获得细胞的形态,符合人MSC判定标准[11]。

2.2 MSC表面标记分析

为鉴定无血清培养基分离培养的细胞,采用流式细胞学技术,以血清培养的MSC作为参考,对细胞表面标记进行分析。结果显示,与常规体系培养的人脐带MSC相似,无血清条件下培养的细胞表达CD44和CD73,不表达CD14、CD31和CD45(图3),符合国际细胞治疗协会的人MSC判定标准[11]。

图3 MSC表面标记分析Fig.3Analysis on the surface markers of MSCs

2.3 临床观察

本组患者共接受细胞输注52次,细胞输注期间及输注后24 h内均未出现发热、头痛等症状,心电监护均未发现异常。

治疗后,部分患者症状改善,包括食欲好转(10例)、腹胀减轻(7例)、腹水减少(5例)和黄疸减轻或减退(11例)等。2例治疗前存在肝性脑病患者,治疗后神经症状消失。治疗后,血清总胆红素浓度由(79.13±11.34)μM/L下降至(54.58±12.77)μM/L,差异显著(P0.05);血清白蛋白浓度(33.19±3.25 g/L)较治疗前(32.02±4.17 g/L)略有升高(P0.05),而凝血酶原时间(18.4±4.1 sec18.8±5.6 sec)无明显变化。Child-Turcotte-Pugh评分(8.1±1.4)较治疗前(8.5±1.5)减低,但无统计学差异(P0.05)。

3 讨论

作为一种细胞药物,MSC已进入临床应用阶段,用于治疗儿童移植物抗宿主病、骨关节疾病及克隆氏病肠瘘等[12]。此外,美国FDA已经批准了多项MSC治疗肝脏纤维化的临床试验。然而,目前多采用含动物或人血清的体系用于骨髓或脐带MSC的培养,临床应用存在安全隐患,尤其是某些动物或人病毒性疾病传播。因此,采用化学成份清晰、无血清且无异种蛋白的体系进行MSC培养,对于保障MSC治疗的安全性是十分必要的[13]。

无血清培养人MSC已有大量的深入研究,如培养体系中加入细胞生长因子[14]或微量元素[15],或多种细胞生长因子组合[16],或对细胞培养材料进行表面修饰[17]等。然而,相比含血清体系培养的MSC,由于无血清条件下细胞代谢的特殊性,所获得的MSC在表型及功能上都可能存在差异[18]。本研究结果表明,经无血清条件培养的人脐带MSC,形态呈纤维细胞样,高表达CD44和CD73,不表达内皮细胞标记CD31和血细胞标记CD14、CD45,符合体外培养的人MSC最低鉴定标准[11]。

近年来,对MSC修复肝脏损伤及抗肝纤维化的机制进行了研究。MSC经静脉输注后,主要经肺循环进入肝脏和脾脏,这是MSC治疗肝损伤的细胞动力学基础。同位素标记MSC后扫描发现,输注的细胞首先到达肺脏,之后转移至肝脏和脾脏;其中,输注10 d后,肝脏存在的细胞占总细胞量13%以上[19]。进入肝脏的MSC,可能在肝脏微环境的诱导下,分化为功能性的肝细胞[20],或与受损肝细胞融合,获得并行使肝细胞的部分功能[21]。移植至肝脏的MSC,或可促进周围细胞金属硫蛋白酶的分泌,以降解周围胶原组织;也可能抑制肿瘤坏死因子和转化生长因子的分泌,阻断肝脏纤维化过程[22-23]。MSC治疗肝脏纤维化的临床试验也表明,细胞治疗后部分患者出现肝功能改善,血清白蛋白浓度升高,总胆红素下降,腹水减轻或消失[6-8]。本组患者经脐带MSC治疗4次后,血清总胆红素浓度明显降低,但血清白蛋白浓度和凝血酶原时间并无显著变化,可能与患者数较少,观察时间较短有关。另外,本组患者均未出现发热、头痛等症状,心电监护也未发现异常,提示使用该剂量(每次5×107个)未发生急性毒性,治疗过程安全顺利。

总之,使用无血清培养人脐带MSC,可保持细胞的固有特性,临床应用未发现急性毒性。进一步长期随访观察将有助于阐明治疗方式的有效性。

参考文献

[1]王恒湘,郭子宽.间充质干细胞在组织工程应用中的诸多问题[J].组织工程与重建外科,2008,4(5):241-245.

[2]王东梅,郭子宽.新型干细胞治疗:科学和政策[J].组织工程与重建外科,2008,7(2):61-64.

[3]郭子宽,王立生,吴祖泽.间充质干细胞在组织再生和免疫调节治疗中的应用[J].中国医药生物技术杂志,2006,1(1):58-61.

[4]Zhang HC,Liu XB,Huang S,et al.Microvesicles derived from human umbilical cord mesenchymal stem cells stimulated by hypoxia promote angiogenesis both in vitro and in vivo[J].Stem Cells Dev,2012,21(18):3289-3297.

[5]Pittenger MF,Mackay AM,Beck SC,et al.Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells[J].Science,1999,284(1):143-147.

[6]El-Ansary M,Abdel-Aziz I,Mogawer S,et al.Phase II trial:undifferentiated versus differentiated autologous mesenchymal stem cells transplantation in Egyptian patients with HCV induced liver cirrhosis[J].Stem Cell Rev,2012,8(3):972-981.

[7]Kharaziha P,Hellstrom PM,Noorinayer B,et al.Improvement of liverfunctioninlivercirrhosispatientsafterautologous mesenchymal stem cell injection:a phase I-II clinical trial[J].Eur J Gastroenterol Hepatol,2009,21(10):1199-1205.

[8]Mohamadnejad M,Alimoghaddam K,Mohyeddin-Bonab M,et al.Phase I trial of autologous bone marrow mesenchymal stem cell transplantation in patients with decompensated liver cirrhosis[J].Arch Iran Med,2007,10(4):459-466.

[9]Spees JL,Gregory CA,Singh H,et al.Internalized antigens must be removed to prepare hypoimmunogenic mesenchymal stem cells for cell and gene therapy[J].Mol Ther,2004,9(5):747-756.

[10]刘静,韩冬梅,薛梅,等.脐带间充质干细胞输注治疗顽固性溃疡性结肠炎[J].组织工程与重建外科杂志,2011,7(5):258-260.

[11]Dominici M,Le Blanc K,Mueller I,et al.Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells.The International Society for Cellular Therapy position statement[J].Cytotherapy,2006,8(4):315-317.

[12]Battiwalla M,Hematti P.Mesenchymal stem cells in hematopoietic stem cell transplantation[J].Cytotherapy,2009,11(5):503-515.

[13]Meuleman N,Tondreau T,Delforge A,et al.Human marrow mesenchymal stem cell culture:serum-free medium allows better expansion than classical alpha-MEM medium[J].Eur J Haematol,2006,76(2):309-316.

[14]Wang X,Zheng F,Liu O,et al.Epidermal growth factor can optimize a serum-free culture system for bone marrow stem cell proliferation in a miniature pig model[J].In Vitro Cell Dev Biol Anim,2013,49(10):815-825.

[15]毕晓云,黄舒,郭杰,等.锌离子促进人骨髓间充质干细胞增殖并增强其纤黏连蛋白表达的实验研究[J].组织工程与重建外科,2013,9(2):81-84.

[16]Chase LG,Yang S,Zachar V,et al.Development and characterization of a clinically compliant xeno-free culture medium in good manufacturing practice for human multipotent mesenchymal stem cells[J].Stem Cells Transl Med,2012,1(10):750-758.

[17]Dolley-Sonneville PJ,Romeo LE,Melkoumian ZK.Synthetic surface for expansion of human mesenchymal stem cells in xeno-free,chemically defined culture conditions[J].PLoS One,2013,8(8):e70263.

[18]Mark P,Kleinsorge M,Gaebel R,et al.Human mesenchymal stem cells display reduced expression of CD105 after culture in serum-free medium[J].Stem Cells Int,2013,2013:ID698076.

[19]Gholamrezanezhad A,Mirpour S,Bagheri M,et al.In vivo tracking of111In-oxinelabeledmesenchymalstemcellsfollowing infusion in patients with advanced cirrhosis[J].Nucl Med Biol,2011,38(7):961-967.

[20]Hwang S,Hong HN,Kim HS,et al.Hepatogenic differentiation of mesenchymal stem cells in a rat model of thioacetamideinduced liver cirrhosis[J].Cell Biol Int,2012,36(3):279-288.

[21]Cho JW,Lee CY,Ko Y.Therapeutic potential of mesenchymal stem cells overexpressing human forkhead box A2 gene in the regeneration of damaged liver tissues[J].J Gastroenterol Hepatol,2012,27(8):1362-1370.

[22]Iwamoto T,Terai S,Hisanaga T,et al.Bone-marrow-derived cells cultured in serum-free medium reduce liver fibrosis and improve liver function in carbon-tetrachloride-treated cirrhotic mice[J].Cell Tissue Res,2013,351(3):487-495.

[23]Tanimoto H,Terai S,Taro T,et al.Improvement of liver fibrosis by infusion of cultured cells derived from human bone marrow[J].Cell Tissue Res,2013,354(3):717-728.

猜你喜欢

脐带乙型肝炎白蛋白
慢性乙型肝炎抗病毒治疗是关键
喜舒复白蛋白肽饮品助力大健康
乙型肝炎病毒与肝细胞癌微血管侵犯的相关性
缺血修饰白蛋白对微血管心绞痛的鉴别诊断价值研究
缺血修饰白蛋白和肌红蛋白对急性冠状动脉综合征的早期诊断价值
胎儿脐带绕颈,如何化险为夷
二至丸对慢性乙型肝炎作用机制的研究进展
脐带先露与脐带脱垂对胎儿有影响吗
胎儿脐带绕颈,如何化险为夷
慢性乙型肝炎的预防与治疗