Folin—Ciocalteu法检测菜籽多酚含量的优化研究
2014-07-16熊俐等
熊俐等
摘要:为了建立快速、准确地测定菜籽多酚含量的方法,以单宁酸为标准品,研究了Folin-Ciocalteu比色法测定菜籽多酚含量的适宜条件。结果表明,在显色试剂2.5 mL、饱和Na2CO3溶液4 mL、反应温度40 ℃、反应时间50 min、比色波长757 nm的条件下,菜籽多酚浓度在 2~20 mg/L 范围内与吸光度呈良好的线性关系;Folin-Ciocalteu法的稳定性试验、精密度试验、重现性试验、回收率试验的相对标准偏差(RSD)分别为0.419%、1.295%、2.30%、1.49%,表明该法能够快速、准确地测定菜籽多酚含量。
关键词:菜籽;多酚;Folin-Ciocalteu比色法;检测条件
中图分类号:TS201.2;O657.32 文献标志码:A 文章编号:1002-1302(2014)03-0255-03
多酚广泛存在于植物体中,是一类复杂的酚类次生代谢产物,具有多元酚结构,对活性氧等自由基有较强的捕捉能力,因此具有很强的抗氧化性和清除自由基的能力[1]。菜籽中含有1.5%~3%的多酚类物质,其多酚含量是其他油料种子中的10~30倍。研究证实,菜籽多酚具有抗肿瘤、降血糖、抑菌、抗氧化、清除自由基等生理功能和生物活性[2],具有广阔的开发前景。测定多酚的常用方法有高锰酸钾滴定法[3]、香草醛法[4]、Folin-酚法[2]和铁氰化钾分光光度法[5]等。其中,高锰酸钾滴定法的滴定终点较难观察,测定灵敏度较低;香草醛法和铁氰化钾分光光度法对测定条件要求严格,稳定性较差,干扰因素较多,易出现沉淀;而Folin-酚比色法在测定多酚化合物时能在很大程度上克服以上缺点。Folin-酚法包括Folin-Denis法(F-D法)和Folin- Ciocalteu法(F-C法)。F-C法是F-D法的改进方法,它在F-D法显色剂中加入锂盐,克服了F-D法显色剂的不稳定性,较之更为灵敏[6]。郑仕宏等[7]、何志勇等[8]、刘丽香等[9]的研究结果表明,不同植物中Folin- Ciocalteu法比色条件的选择差异较大,适宜的显色剂、碱液含量及比例各不相同,显色时间和温度有很大差别,测定波长也不同。
国内常用F-D法测定菜籽及其加工品中的多酚含量,较少见用F-C法检测菜籽多酚含量的报道,更没有对其反应条件进行过探索。本试验采用Folin-Ciocalteu法测定菜籽多酚的含量,探讨最适显色条件和比色条件,同时对其稳定性、精密度、重现性、回收率等展开研究,以期建立起一种简便、快速、稳定、准确的检测菜籽多酚含量的方法。
1 材料与方法
1.1 试验材料
1.1.1 原料 菜籽购于四川省自贡市灯杆坝农贸市场,用面条压片机将其碾压破碎成片状,60 ℃干燥2~3 h,备用。
1.1.2 药品 乙醇、没食子酸标准品、单宁酸标准品、钨酸钠、钼酸钠、浓磷酸、浓盐酸、硫酸锂、碳酸钠等,均为分析纯。
1.1.3 仪器 UV1000型紫外-可见分光光度计,DK-98-11A型数显恒温水浴锅,AR1140型电子分析天平,MT-125C型面条压片机,DHG-9070B型鼓风干燥箱等。
1.2 试验方法
1.2.1 菜籽多酚提取液的制备 参考张晓丽等的研究[10]来制备菜籽多酚提取液。
1.2.2 Folin-Ciocalteu法显色剂的配制 在回流装置内加入50 g钨酸钠、12.5 g钼酸钠、350 mL蒸馏水、25 mL浓磷酸及50 mL浓盐酸,充分混匀,以小火回流10 h,再加入75 g硫酸锂、25 mL蒸馏水、数滴溴水,然后开口继续沸腾15 min,至溴水完全挥发为止,冷却后定容500 mL,过滤,滤液呈绿色,存于棕色瓶中。使用时加入1倍体积的蒸馏水,使酸的浓度为1 mol/L,置于冰箱中保存。
1.2.3 标准品溶液的配制 分别称取25.0 mg没食子酸和单宁酸,用70%乙醇完全溶解,定容至25 mL容量瓶中,配制成浓度为1.0 mg/mL的没食子酸标液和单宁酸标液。
1.2.4 Folin-Ciocalteu法检测流程 精确吸取一定量的待测样品,放入25 mL容量瓶内,加10 mL 70%乙醇,摇匀,加入一定量的显色剂和一定量的饱和Na2CO3溶液,并用70%乙醇定容至25 mL,在一定温度下避光反应一定时间后,以70%乙醇为空白对照,在一定波长下测定吸光度。
1.2.5 Folin-Ciocalteu法检测条件研究
1.2.5.1 比色波长和标准品的研究 取没食子酸标液、单宁酸标液和菜籽提取液的稀释液各0.5 mL,分别与2 mL显色试剂和4.5 mL饱和Na2CO3溶液混合均匀,用70%乙醇定容,室温避光放置1 h,用紫外-可见分光光度计在200~900 nm波长范围内测定吸光度,得到没食子酸、单宁酸和菜籽提取液的吸收光谱,以此确定最适宜的标准物和比色波长。
1.2.5.2 显色时间的研究 取单宁酸标液0.5 mL,显色试剂与饱和碳酸钠溶液分别为2.0、4.5 mL,比色波长为 757 nm,35 ℃条件下研究反应时间(10、20、30、40、50、60、70、80 min)对吸光度的影响。
1.2.5.3 反应温度的研究 研究不同反应温度(20、25、30、35、40、45、50 ℃)对吸光度的影响,反应时间为50 min,其他条件同“1.2.5.2”节所述。
1.2.5.4 饱和Na2CO3溶液添加量的研究 研究饱和Na2CO3 溶液添加量(1.5、2.0、2.5、3.0、3.5、4.0、4.5、5.0 mL)对吸光度的影响,反应温度为40 ℃,其他条件同“1.2.5.3”节所述。
1.2.5.5 Folin-Ciocalteu显色剂用量的研究 研究显色剂用量(0.5、1.0、1.5、2.0、2.5、3.0、3.5 mL)对吸光度的影响,饱和Na2CO3溶液添加量为4 mL,其他条件同“1.2.5.4”节所述。endprint
1.2.6 标准曲线的绘制 精确吸取0、0.05、0.10、0.15、020、0.25、0.30、0.35、0.40、0.45、0.50 mL单宁酸标准溶液,按照前期试验确定的适宜条件进行显色反应,检测吸光度。以吸光度为纵坐标(y)、单宁酸浓度(mg/L)为横坐标(x)绘制标准曲线。
1.2.7 Folin-Ciocalteu比色方法评价
1.2.7.1 稳定性试验 取菜籽提取液进行显色反应,反应完全(50 min)后在30 ℃下避光放置0、15、30、45、60、90、120 min 后测定吸光度,根据吸光度的变化评价该比色法在一段时间内的稳定性。
1.2.7.2 精密度试验 从同一份菜籽提取液中取6份样本进行Folin-Ciocalteu比色法检测,计算各样本中的多酚含量(mg/g),以分析结果的相对标准偏差评价该比色方法的精密度。
1.2.7.3 重现性试验 从同一份菜籽原料中取5份样品,分别进行多酚提取,然后利用Folin-Ciocalteu比色法检测各提取液的多酚含量(mg/g),并计算结果的相对标准偏差,以评价该比色方法的重现性。
1.2.7.4 加标回收试验 往菜籽提取液中加入不同量的单宁酸,分别测定其多酚含量,并计算其回收率和相对标准偏差,以评价该比色方法的准确度和可靠性。
2 结果与分析
2.1 Folin-Ciocalteu法检测条件研究
2.1.1 比色波长和标准品 由图1可知,没食子酸、单宁酸和菜籽提取液与Folin-Ciocalteu试剂反应显色后,均在 730~770 nm 范围内有一明显吸收峰。其中,没食子酸在 736 nm 处吸收最强,单宁酸在762 nm处吸收最强,菜籽提取液在757 nm处吸收最强。因此本试验以单宁酸为标准品,以 757 nm 为菜籽多酚比色测定的波长。
2.1.2 显色时间 由图2可知,10~40 min时,吸光度随反应时间的延长而快速增加,50 min后显色反应完全并趋于稳定,因此确定50 min为显色反应时间。
2.1.3 反应温度 由图3可知,反应温度在20~35 ℃时,吸光度快速增加,40 ℃时吸光度达到最高,为0.476,之后吸光度随温度升高而下降,因此确定显色反应温度为40 ℃。研究结果说明反应温度能影响比色效果,温度过低或过高均不利于多酚显色。
2.1.4 饱和Na2CO3 溶液添加量 由图4可知,饱和Na2CO3溶液添加量在1~4 mL时,随着添加量增加,吸光度逐渐增加,4 mL时达到最大值,为0.496,之后吸光度随Na2CO3溶液添加量的增加而降低,因此确定显色反应体系中加入饱和Na2CO3溶液的体积为4 mL。研究结果说明Folin-Ciocalteu显色剂与酚类化合物的反应必须在碱性条件下才可以显色,显色反应对Na2CO3用量有相当的依赖性。
2.1.5 Folin-Ciocalteu显色剂用量 由图5可知,当 Folin-Ciocalteu 试剂添加量在0.5~2.5 mL时,随着显色剂用量增加,吸光度逐渐增加至0.502,之后吸光度趋于稳定,因此确定Folin-Ciocalteu比色法显色剂用量为2.5 mL。
2.2 标准曲线的绘制
以单宁酸为标准品制作标准曲线(图6),回归方程为y=0.081 4x+0.031 1,x表示单宁酸浓度(mg/L),y表示吸光度,相关系数r2为0.997 9,表明单宁酸质量浓度在2~20 mg/L 范围内与其吸光度呈现良好的线性关系,符合朗伯比尔定律,该方程可用于多酚的定量测定。
2.3 Folin-Ciocalteu比色方法评价
2.3.1 稳定性试验 对Folin-Ciocalteu法测定菜籽多酚进行稳定性试验,显色反应体系水浴50 min后,避光放置0、15、30、45、60、90、120 min,测定的吸光度分别为0.495、0.495、0493、0.493、0.492、0.492、0.489。研究发现,随着时间延长,吸光度有下降趋势,但幅度不大,其相对偏差(RSD)为0419%,表明120 min内溶液稳定性良好。
2.3.2 精密度试验 从同一份菜籽提取液中取6份样本进行Folin-Ciocalteu比色法检测,计算各样本中的多酚含量分别为22.78、23.56、22.99、22.76、23.2、23.0 mg/g,其相对偏差(RSD)为1.295%,表明该方法具有较高的精密度,能满足样菜籽多酚样品分析的要求。
2.3.3 重现性试验 从同一份菜籽原料中取5份样品,分别提取其多酚,然后利用Folin-Ciocalteu比色法检测各提取液的多酚含量,分别为23.20、23.56、22.78、23.31、22.45 mg/g,其相对偏差(RSD)为2.30%,表明该方法重现性较好。
2.3.4 加标回收试验 由表1可知,6次加标回收试验的最低回收率为97.7%,最高回收率为102.1%,平均回收率为99.55%,回收率相对标准偏差(RSD)为1.49%,表明本研究所建立的Folin-Ciocalteu检测法准确可靠,完全可用于菜籽多酚含量的测定。
3 结论
本研究采用Folin- Ciocalteu比色法测菜籽多酚含量,以单宁酸为标准品,确定最佳的显色条件为Folin- Ciocalteu显色剂2.5 mL、饱和Na2CO3溶液4 mL、反应温度40 ℃、反应时间50 min、比色测定波长757 nm。标准曲线的线性回归方程为y=0.081 4x+0.031 1,相关系数r2为0.997 9,且单宁酸质量浓度在2~20 mg/L范围内与其吸光度呈现良好的线性关系。该法的稳定性试验、精密度试验、重现性试验、回收率试验的相对标准偏差(RSD)分别为0.419%、1.295%、230%、1.49%,表明本研究建立起的Folin- Ciocalteu比色法能快速、准确地测定菜籽多酚含量。
参考文献:
[1]张清安,范学辉. 多酚类物质抗氧化活性评价方法研究进展[J]. 食品与发酵工业,2011,37(11):169-172.
[2]陈 萌,杨 湄,刘昌盛,等. 菜籽多酚的制备、检测及其在加工过程中的变化研究进展[J]. 中国油料作物学报,2013,35(1):102-103.
[3]王文杰. 高锰酸钾滴定法测定茶多酚有关用剂的特性研究[J]. 福建茶叶,2002(1):15-17.
[4]李春阳,许时婴,王 璋. 低浓度香草醛-盐酸法测定葡萄籽、梗中原花青素含量的研究[J]. 食品工业科技,2004(6):128-130.
[5]肖 纯,张凯农,阳长敏,等. 铁氰化钾分光光度法测定单宁的适用性[J]. 华北农学报,1996,11(2):127-130.
[6]Singleton V L,Orthofer R,Lamuela-Raventos R M. Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of Folin-Ciocalteu reagent[J]. Methods in Enzymology,1999,299:152-178.
[7]郑仕宏,张海德,何 双,等. Folin-Ciocalteus法测定槟榔中多酚含量的研究[J]. 中南林业科技大学学报,2009,29(6):165-169.
[8]何志勇,夏文水. Folin-Ciocalteu比色法测定橄榄中多酚含量的研究[J]. 林产化学与工业,2006,26(4):15-18.
[9]刘丽香,Tanguy L,梁兴飞,等. Folin-Ciocalteu比色法测定苦丁茶中多酚含量[J]. 茶叶科学,2008,28(2):101-106.
[10]张晓丽,曾晓雄,李春阳. 菜籽多酚提取工艺的优化[J]. 食品与机械,2012,28(2):142-146.endprint
1.2.6 标准曲线的绘制 精确吸取0、0.05、0.10、0.15、020、0.25、0.30、0.35、0.40、0.45、0.50 mL单宁酸标准溶液,按照前期试验确定的适宜条件进行显色反应,检测吸光度。以吸光度为纵坐标(y)、单宁酸浓度(mg/L)为横坐标(x)绘制标准曲线。
1.2.7 Folin-Ciocalteu比色方法评价
1.2.7.1 稳定性试验 取菜籽提取液进行显色反应,反应完全(50 min)后在30 ℃下避光放置0、15、30、45、60、90、120 min 后测定吸光度,根据吸光度的变化评价该比色法在一段时间内的稳定性。
1.2.7.2 精密度试验 从同一份菜籽提取液中取6份样本进行Folin-Ciocalteu比色法检测,计算各样本中的多酚含量(mg/g),以分析结果的相对标准偏差评价该比色方法的精密度。
1.2.7.3 重现性试验 从同一份菜籽原料中取5份样品,分别进行多酚提取,然后利用Folin-Ciocalteu比色法检测各提取液的多酚含量(mg/g),并计算结果的相对标准偏差,以评价该比色方法的重现性。
1.2.7.4 加标回收试验 往菜籽提取液中加入不同量的单宁酸,分别测定其多酚含量,并计算其回收率和相对标准偏差,以评价该比色方法的准确度和可靠性。
2 结果与分析
2.1 Folin-Ciocalteu法检测条件研究
2.1.1 比色波长和标准品 由图1可知,没食子酸、单宁酸和菜籽提取液与Folin-Ciocalteu试剂反应显色后,均在 730~770 nm 范围内有一明显吸收峰。其中,没食子酸在 736 nm 处吸收最强,单宁酸在762 nm处吸收最强,菜籽提取液在757 nm处吸收最强。因此本试验以单宁酸为标准品,以 757 nm 为菜籽多酚比色测定的波长。
2.1.2 显色时间 由图2可知,10~40 min时,吸光度随反应时间的延长而快速增加,50 min后显色反应完全并趋于稳定,因此确定50 min为显色反应时间。
2.1.3 反应温度 由图3可知,反应温度在20~35 ℃时,吸光度快速增加,40 ℃时吸光度达到最高,为0.476,之后吸光度随温度升高而下降,因此确定显色反应温度为40 ℃。研究结果说明反应温度能影响比色效果,温度过低或过高均不利于多酚显色。
2.1.4 饱和Na2CO3 溶液添加量 由图4可知,饱和Na2CO3溶液添加量在1~4 mL时,随着添加量增加,吸光度逐渐增加,4 mL时达到最大值,为0.496,之后吸光度随Na2CO3溶液添加量的增加而降低,因此确定显色反应体系中加入饱和Na2CO3溶液的体积为4 mL。研究结果说明Folin-Ciocalteu显色剂与酚类化合物的反应必须在碱性条件下才可以显色,显色反应对Na2CO3用量有相当的依赖性。
2.1.5 Folin-Ciocalteu显色剂用量 由图5可知,当 Folin-Ciocalteu 试剂添加量在0.5~2.5 mL时,随着显色剂用量增加,吸光度逐渐增加至0.502,之后吸光度趋于稳定,因此确定Folin-Ciocalteu比色法显色剂用量为2.5 mL。
2.2 标准曲线的绘制
以单宁酸为标准品制作标准曲线(图6),回归方程为y=0.081 4x+0.031 1,x表示单宁酸浓度(mg/L),y表示吸光度,相关系数r2为0.997 9,表明单宁酸质量浓度在2~20 mg/L 范围内与其吸光度呈现良好的线性关系,符合朗伯比尔定律,该方程可用于多酚的定量测定。
2.3 Folin-Ciocalteu比色方法评价
2.3.1 稳定性试验 对Folin-Ciocalteu法测定菜籽多酚进行稳定性试验,显色反应体系水浴50 min后,避光放置0、15、30、45、60、90、120 min,测定的吸光度分别为0.495、0.495、0493、0.493、0.492、0.492、0.489。研究发现,随着时间延长,吸光度有下降趋势,但幅度不大,其相对偏差(RSD)为0419%,表明120 min内溶液稳定性良好。
2.3.2 精密度试验 从同一份菜籽提取液中取6份样本进行Folin-Ciocalteu比色法检测,计算各样本中的多酚含量分别为22.78、23.56、22.99、22.76、23.2、23.0 mg/g,其相对偏差(RSD)为1.295%,表明该方法具有较高的精密度,能满足样菜籽多酚样品分析的要求。
2.3.3 重现性试验 从同一份菜籽原料中取5份样品,分别提取其多酚,然后利用Folin-Ciocalteu比色法检测各提取液的多酚含量,分别为23.20、23.56、22.78、23.31、22.45 mg/g,其相对偏差(RSD)为2.30%,表明该方法重现性较好。
2.3.4 加标回收试验 由表1可知,6次加标回收试验的最低回收率为97.7%,最高回收率为102.1%,平均回收率为99.55%,回收率相对标准偏差(RSD)为1.49%,表明本研究所建立的Folin-Ciocalteu检测法准确可靠,完全可用于菜籽多酚含量的测定。
3 结论
本研究采用Folin- Ciocalteu比色法测菜籽多酚含量,以单宁酸为标准品,确定最佳的显色条件为Folin- Ciocalteu显色剂2.5 mL、饱和Na2CO3溶液4 mL、反应温度40 ℃、反应时间50 min、比色测定波长757 nm。标准曲线的线性回归方程为y=0.081 4x+0.031 1,相关系数r2为0.997 9,且单宁酸质量浓度在2~20 mg/L范围内与其吸光度呈现良好的线性关系。该法的稳定性试验、精密度试验、重现性试验、回收率试验的相对标准偏差(RSD)分别为0.419%、1.295%、230%、1.49%,表明本研究建立起的Folin- Ciocalteu比色法能快速、准确地测定菜籽多酚含量。
参考文献:
[1]张清安,范学辉. 多酚类物质抗氧化活性评价方法研究进展[J]. 食品与发酵工业,2011,37(11):169-172.
[2]陈 萌,杨 湄,刘昌盛,等. 菜籽多酚的制备、检测及其在加工过程中的变化研究进展[J]. 中国油料作物学报,2013,35(1):102-103.
[3]王文杰. 高锰酸钾滴定法测定茶多酚有关用剂的特性研究[J]. 福建茶叶,2002(1):15-17.
[4]李春阳,许时婴,王 璋. 低浓度香草醛-盐酸法测定葡萄籽、梗中原花青素含量的研究[J]. 食品工业科技,2004(6):128-130.
[5]肖 纯,张凯农,阳长敏,等. 铁氰化钾分光光度法测定单宁的适用性[J]. 华北农学报,1996,11(2):127-130.
[6]Singleton V L,Orthofer R,Lamuela-Raventos R M. Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of Folin-Ciocalteu reagent[J]. Methods in Enzymology,1999,299:152-178.
[7]郑仕宏,张海德,何 双,等. Folin-Ciocalteus法测定槟榔中多酚含量的研究[J]. 中南林业科技大学学报,2009,29(6):165-169.
[8]何志勇,夏文水. Folin-Ciocalteu比色法测定橄榄中多酚含量的研究[J]. 林产化学与工业,2006,26(4):15-18.
[9]刘丽香,Tanguy L,梁兴飞,等. Folin-Ciocalteu比色法测定苦丁茶中多酚含量[J]. 茶叶科学,2008,28(2):101-106.
[10]张晓丽,曾晓雄,李春阳. 菜籽多酚提取工艺的优化[J]. 食品与机械,2012,28(2):142-146.endprint
1.2.6 标准曲线的绘制 精确吸取0、0.05、0.10、0.15、020、0.25、0.30、0.35、0.40、0.45、0.50 mL单宁酸标准溶液,按照前期试验确定的适宜条件进行显色反应,检测吸光度。以吸光度为纵坐标(y)、单宁酸浓度(mg/L)为横坐标(x)绘制标准曲线。
1.2.7 Folin-Ciocalteu比色方法评价
1.2.7.1 稳定性试验 取菜籽提取液进行显色反应,反应完全(50 min)后在30 ℃下避光放置0、15、30、45、60、90、120 min 后测定吸光度,根据吸光度的变化评价该比色法在一段时间内的稳定性。
1.2.7.2 精密度试验 从同一份菜籽提取液中取6份样本进行Folin-Ciocalteu比色法检测,计算各样本中的多酚含量(mg/g),以分析结果的相对标准偏差评价该比色方法的精密度。
1.2.7.3 重现性试验 从同一份菜籽原料中取5份样品,分别进行多酚提取,然后利用Folin-Ciocalteu比色法检测各提取液的多酚含量(mg/g),并计算结果的相对标准偏差,以评价该比色方法的重现性。
1.2.7.4 加标回收试验 往菜籽提取液中加入不同量的单宁酸,分别测定其多酚含量,并计算其回收率和相对标准偏差,以评价该比色方法的准确度和可靠性。
2 结果与分析
2.1 Folin-Ciocalteu法检测条件研究
2.1.1 比色波长和标准品 由图1可知,没食子酸、单宁酸和菜籽提取液与Folin-Ciocalteu试剂反应显色后,均在 730~770 nm 范围内有一明显吸收峰。其中,没食子酸在 736 nm 处吸收最强,单宁酸在762 nm处吸收最强,菜籽提取液在757 nm处吸收最强。因此本试验以单宁酸为标准品,以 757 nm 为菜籽多酚比色测定的波长。
2.1.2 显色时间 由图2可知,10~40 min时,吸光度随反应时间的延长而快速增加,50 min后显色反应完全并趋于稳定,因此确定50 min为显色反应时间。
2.1.3 反应温度 由图3可知,反应温度在20~35 ℃时,吸光度快速增加,40 ℃时吸光度达到最高,为0.476,之后吸光度随温度升高而下降,因此确定显色反应温度为40 ℃。研究结果说明反应温度能影响比色效果,温度过低或过高均不利于多酚显色。
2.1.4 饱和Na2CO3 溶液添加量 由图4可知,饱和Na2CO3溶液添加量在1~4 mL时,随着添加量增加,吸光度逐渐增加,4 mL时达到最大值,为0.496,之后吸光度随Na2CO3溶液添加量的增加而降低,因此确定显色反应体系中加入饱和Na2CO3溶液的体积为4 mL。研究结果说明Folin-Ciocalteu显色剂与酚类化合物的反应必须在碱性条件下才可以显色,显色反应对Na2CO3用量有相当的依赖性。
2.1.5 Folin-Ciocalteu显色剂用量 由图5可知,当 Folin-Ciocalteu 试剂添加量在0.5~2.5 mL时,随着显色剂用量增加,吸光度逐渐增加至0.502,之后吸光度趋于稳定,因此确定Folin-Ciocalteu比色法显色剂用量为2.5 mL。
2.2 标准曲线的绘制
以单宁酸为标准品制作标准曲线(图6),回归方程为y=0.081 4x+0.031 1,x表示单宁酸浓度(mg/L),y表示吸光度,相关系数r2为0.997 9,表明单宁酸质量浓度在2~20 mg/L 范围内与其吸光度呈现良好的线性关系,符合朗伯比尔定律,该方程可用于多酚的定量测定。
2.3 Folin-Ciocalteu比色方法评价
2.3.1 稳定性试验 对Folin-Ciocalteu法测定菜籽多酚进行稳定性试验,显色反应体系水浴50 min后,避光放置0、15、30、45、60、90、120 min,测定的吸光度分别为0.495、0.495、0493、0.493、0.492、0.492、0.489。研究发现,随着时间延长,吸光度有下降趋势,但幅度不大,其相对偏差(RSD)为0419%,表明120 min内溶液稳定性良好。
2.3.2 精密度试验 从同一份菜籽提取液中取6份样本进行Folin-Ciocalteu比色法检测,计算各样本中的多酚含量分别为22.78、23.56、22.99、22.76、23.2、23.0 mg/g,其相对偏差(RSD)为1.295%,表明该方法具有较高的精密度,能满足样菜籽多酚样品分析的要求。
2.3.3 重现性试验 从同一份菜籽原料中取5份样品,分别提取其多酚,然后利用Folin-Ciocalteu比色法检测各提取液的多酚含量,分别为23.20、23.56、22.78、23.31、22.45 mg/g,其相对偏差(RSD)为2.30%,表明该方法重现性较好。
2.3.4 加标回收试验 由表1可知,6次加标回收试验的最低回收率为97.7%,最高回收率为102.1%,平均回收率为99.55%,回收率相对标准偏差(RSD)为1.49%,表明本研究所建立的Folin-Ciocalteu检测法准确可靠,完全可用于菜籽多酚含量的测定。
3 结论
本研究采用Folin- Ciocalteu比色法测菜籽多酚含量,以单宁酸为标准品,确定最佳的显色条件为Folin- Ciocalteu显色剂2.5 mL、饱和Na2CO3溶液4 mL、反应温度40 ℃、反应时间50 min、比色测定波长757 nm。标准曲线的线性回归方程为y=0.081 4x+0.031 1,相关系数r2为0.997 9,且单宁酸质量浓度在2~20 mg/L范围内与其吸光度呈现良好的线性关系。该法的稳定性试验、精密度试验、重现性试验、回收率试验的相对标准偏差(RSD)分别为0.419%、1.295%、230%、1.49%,表明本研究建立起的Folin- Ciocalteu比色法能快速、准确地测定菜籽多酚含量。
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