规模化羊场小反刍兽疫的诊断与防控

姜晓东 邵明旭 朱瑞良（山东农业大学动物科技学院 山东省动物生物技术与疫病防治重点实验室 山东 泰安 271018)

规模化羊场小反刍兽疫的诊断与防控

姜晓东 邵明旭 朱瑞良*（山东农业大学动物科技学院 山东省动物生物技术与疫病防治重点实验室 山东 泰安 271018)

小反刍兽疫是由小反刍兽疫病毒引起的一种严重的烈性、接触性传染病。主要感染小反刍兽，其中山羊和绵羊高度易感。此病被世界卫生组织(OIE)规定为A类疫病，我国规定为一类动物疫病。2007年7月，我国西藏的阿里地区首次暴发小反刍兽疫，死亡近300只山羊和绵羊，给当地的养羊业带来很大的经济损失。近年来该病在非洲、中东以及与我国接壤的南亚地区呈蔓延的趋势，并且作为一种重大的跨国动物疫病，给我国的规模化羊场带来很大的威胁，对我国的动物卫生安全提出了严峻挑战。随着我国规模化羊场的迅速发展，对小反刍兽疫的防控也显得格外重要。本文通过对小反刍兽疫的流行病学、诊断及预防等方面的阐述，以其为规模化羊场防控该病提供有效依据。

1 流行病学

1.1 易感动物

山羊和绵羊是小反刍兽疫的天然宿主，山羊比绵羊更易感，3～8月龄的山羊更易感。岩羊、野山羊、盘羊等野生小反刍动物也可感染发病。牛和猪对该病毒易感，但不表现出临床症状，也不传播疾病。

1.2 传播途径

小反刍兽疫具有高度的传染性，通过直接接触病畜的分泌物和排泄物而传播，污染区域内的水源、饲料、垫料等都会被感染动物的分泌物污染而成为传染源，在养殖密度较高的羊群偶尔会发生近距离的气溶胶传播。由于小反刍兽疫病毒具有囊膜，所以对热、干燥环境、强酸强碱及紫外线等都非常敏感。虽然病畜不能长期的携带病毒，但是有研究发现临床上恢复期的山羊在11～12周时仍能检测出病毒抗原。

2 诊断

2.1 临床诊断

根据发病羊的临床症状，小反刍兽疫分为3个型：最急性型、急性型和温和型。

2.1.1 最急性型 多见于幼羊，潜伏期短，一般为2d左右，具体表现为体温升高到41～43℃，精神不振，食欲减退甚至废绝，口腔和眼镜流出粘液性分泌物。感染羊先期便秘后出现水样腹泻，从发病到死亡不超过5～6d。没有明显的临床症状，死亡率达100%。

2.1.2 急性型 潜伏期为4～6d，临床上一般为在3～21d之间。患病羊发病急剧，高热41℃以上，稽留3～5d。初期表现为鼻镜干燥，口鼻腔流黏液脓性分泌物，呼出恶臭气体，口腔黏膜和齿龈充血，进一步发展为颊粘膜出现广泛性损害，导致液大量分泌排出，出现坏死性病灶，感染部位包括下唇、下齿龈等处。病羊严重脱水、消瘦，并伴有咳嗽、胸部啰音以及腹式呼吸的表现。幼羊发病严重，发病率和死亡率都很高。

2.1.3 温和型 不表现出明显的临床症状，轻微短暂的发热，有时可见鼻腔和眼镜流出大量的分泌物，并在鼻孔处有结痂。

2.1.4 剖检病变 剖检病羊病变与牛瘟相似，眼部出现结膜炎，弥散性卡他性炎症。肠炎，胃肠道大面积坏死，糜烂性损伤从嘴延伸到瘤胃、网胃交接处。皱胃呈有规则、有轮廓的糜烂，创面红色出血。大肠、盲肠、结肠有小红色出血点，时间稍长汇合在一起，呈“斑马纹”样特征性线状条纹。支气管和肺出现干酪样病灶，肺脏表面、支气管黏膜有出血点。在鼻甲、喉等处有出血斑。

2.2 鉴别诊断

根据小反刍兽疫的典型的临床症状可初步做出假设性诊断。由于小反刍兽疫病毒的不同毒株的致病性各异，在临床上易与山羊和绵羊的常见疾病混淆，使得病情恶化从而增加该病的诊断和治疗难度。本病应与牛瘟、羊传染性胸膜肺炎、巴氏杆菌病、羊传染性脓疱、口蹄疫和蓝舌病相鉴别。

2.2.1 与牛瘟的鉴别 小反刍兽疫病毒主要感染山羊，绵羊较少发病，牛及大型偶蹄兽常呈隐性感染。鉴于牛瘟已根本消除，所以基本可排除牛瘟。同时采用聚合酶链反应技术了特异性对这两种病毒进行鉴别。

2.2.2 与羊传染性胸膜肺炎的鉴别 在急性病例中二者均有呼吸道症状存在，但羊传染性胸膜肺炎是由支原体引起的，以浆液性和纤维素性肺炎、胸膜炎为主要症状，为无黏膜病变和腹泻症状。

2.2.3 与巴氏杆菌病的鉴别 在急性病例中都有呼吸道症状的存在，但羊巴氏杆菌病由巴氏杆菌引起，以胸腔积水、肺炎及呼吸道黏膜和内脏器官发生出血性炎症为主，无溃疡性和坏死性口腔炎及舌糜烂。

2.2.4 与羊传染性脓疱的鉴别 羊传染性脓疱是由副痘病毒引起，口唇、眼和鼻孔周围的皮肤上出现丘疹和水疱，并迅速变为脓疱，最后形成痂皮或疣状病变即桑葚病垢，但无腹泻症状。

2.2.5 与蓝舌病的鉴别 蓝舌病是由蓝舌病毒引起的，以颊粘膜和胃肠道黏膜严重卡他性炎症为主，乳房和蹄冠等部位发生病变，但不发生水疱。无腹泻现象。小反刍兽疫无蹄部病变。

2.2.6 与口蹄疫的鉴别 口蹄疫是由口蹄疫病毒引起的，临床以口鼻黏膜、蹄部和乳房等处皮肤发生水疱和糜烂为特征。蹄部有明显的损伤，患病羊出现跛行。

2.3 实验室诊断

2.3.1 病原学检测 小反刍兽疫抗原检测方法主要有捕获酶联免疫吸附试验、琼脂凝胶免疫扩散、对流免疫电泳以及病毒分离鉴定。捕获酶联免疫吸附试验简单、快速、灵敏度高。琼脂凝胶免疫扩散操作方法简单、经济、对实验室的条件要求低，甚至可以在野外完成检测。对流免疫电泳是抗原检测中耗时最短的一种检测方法。病毒的分离鉴定具有特异性好、敏感性高的优点，但操作复杂，在实际应用中受到一定的限制，但是在小反刍兽疫暴发流行时，仍然需要对病毒分离鉴定以进行深入的研究。

2.3.2 血清学诊断 对于恢复期的病羊，病毒抗原逐渐被清除，无法通过抗原检测作出诊断，需要检测病羊体内是否含有针对病毒的抗体存在。常用的检测方法是酶联免疫吸附法。除此之外还有血细胞凝集试验、乳胶凝集试验和病毒中和试验，病毒中和试验是国际贸易中要求进行的一项检测试验。

2.3.3 分子生物学技术 目前常用的检测小反刍兽疫的方法主要有DNA探针和RT-PCR两种技术。可用于特异性鉴定，并且敏感性较高。实验室有更为先进的一步法荧光定量RT-PCR和环介导等温扩增技术，敏感性和特异性更高。

3 防控

3.1 传统的防控措施

对于本病的防控建立和实施生物安全体系是根本，是控制该病及其他疫病的关键之举，是养殖场预防疫病所需要做的主要工作。规模化羊场应该建立健全防疫制度，加强日常饲养管理和消毒。对于外来引进的活羊必须隔离观察30d以上，经临床和血清学检查确认健康无病，方可混群饲养。发现可疑的羊只应迅速隔离诊断，防止疫情进一步扩大。对羊场的小反刍兽疫疫情要做好监控工作。限制疫区的绵羊和山羊的运输，对来自疫区的羊只进行严格的检疫，限制从疫区进口动物及其产品，对染病羊只及时扑杀，尸体要焚烧、深埋，有疫情的羊舍应彻底清洗和消毒，苯酚、乙醇、2%NaOH都是有效的消毒剂。

3.2 疫苗接种

由于目前对小反刍兽疫尚无有效的治疗方法，发病初期使用抗生素和磺胺类药物仅能降低死亡率，所以最常用的防控方法是接种疫苗。现在羊场普遍使用的为弱毒苗，Nigeria 75/1为世界卫生组织规定的唯一允许使用的弱毒疫苗，具有良好的免疫原性和免疫持续性，但注意活疫苗的使用仅限于受威胁区域，没有发生该病的地区不要使用疫苗，否则容易导致本病的蔓延。除此Nigeria 75/1疫苗之外，各种新型疫苗也陆续研制出来，例如耐热疫苗、基因重组疫苗及植物疫苗等。

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1007-1733(2014)10-0038-02

2014–07–16）

山东省现代农业产业技术体系羊产业创新团队建设经费资助(SDAIT-09-011-06)

*通讯作者