小反刍兽疫的流行、诊断与防控

张传亮，周 蕾，赵灵燕，陆国林，徐 辉

（浙江省动物疫病预防控制中心，杭州310020）

小反刍兽疫的流行、诊断与防控

张传亮，周 蕾，赵灵燕，陆国林，徐 辉

（浙江省动物疫病预防控制中心，杭州310020）

小反刍兽疫是严重危害山羊和绵羊等家畜的A类动物传染病，目前该病已经给我国养羊业造成了巨大的损失。文章对该病的流行与传播、诊断方法及防控措施进行了综述，以期为该病的有效防控提供一些参考。

小反刍兽疫；流行；诊断；防控

小反刍兽疫（peste des petits ruminants，PPR）俗称羊瘟，又名小反刍兽假性牛瘟（pseudorinderpest）、肺肠炎（pneumoenteritis）、口炎肺肠炎复合症（stomatitis-pneumoenteritis complex），是由小反刍兽疫病毒（peste des petits ruminants virus，PPRV）引起的一种急性高度接触性传染病，主要感染小反刍动物，以发热、口炎、腹泻、肺炎为特征。世界动物卫生组织（Office International Des Epizootie，OIE）将其列为必需报告A类动物疫病，在我国被列为一类动物疫病，是《国家动物疫病中长期防治规划（2012—2020年）》明确规定重点防范的外来动物疫病之一。

1 流行与传播

PPR是严重危害畜牧业生产安全的重大疫病之一，1942年首次发现于西非的科特迪瓦（象牙海岸），而后逐渐向中部非洲、东部非洲、中东地区、西亚和西南亚地区扩散，地理分布呈从西向东移动的趋势［1］。根据OIE公报，2004年国际上共有29个国家爆发该病。到2006年初，我国周边国家和地区包括孟加拉国、印度、尼泊尔、巴基斯坦、哈萨克斯坦、坦萨克斯坦和蒙古等国先后爆发了大规模PPR疫情［2］。2007年7月，我国西藏阿里地区首次证实爆发小反刍兽疫疫情［3］，2013年12月份以来，我国新疆、甘肃、内蒙古等省（区）先后发生小反刍兽疫疫情。截止2014年6月底，已波及22省（区）249县（市、区）。此次我国的PPR疫情传播快、跨度大、风险高，给我国畜牧业生产造成了严重损失，给动物疫病防控工作带

来了严重威胁。

2 病原学

PPRV属副黏病毒科（paramyxoviridae）麻疹病毒属（morbillivirus），同属的其他成员还有牛瘟病毒（rinderpest virus，RPV）、犬瘟热病毒（canine distemper virus，CDV）、海豹瘟病毒（porpoise distemper virus，PDV）等。PPRV共分为4个系，其中I、Ⅱ、Ⅲ系源于非洲，Ⅳ系源于亚洲，但只有1个血清型［4］。在我国西藏地区发生的小反刍兽疫属于Ⅳ系，推测该病是从印度传入我国的。PPRV粒子呈多形性，通常为粗糙的球形，直径一般130～390 nm，该病毒外被8.5～14.5 nm厚的囊膜，囊膜上有8～15 nm的纤突，纤突只含血凝素而无神经氨酸酶，但同时具有神经氨酸酶和血凝素活性；核衣壳总长约1 000 nm，直径约18 nm，为螺旋中空杆状并有特征性的亚单位。

PPRV基因组是不分节段的单股负链RNA，RNA链从3′至5′依次是N-P-M-F-H-L6个基因，分别编码N蛋白、P蛋白、基质蛋白（M）、融合蛋白（F）、血凝素蛋白（H）和L蛋白6种结构蛋白和2种非结构蛋白（C、V）［5-6］。N蛋白紧紧包裹RNA，并形成螺旋结构，起到保护核酸的作用；在感染PPRV的动物血清中针对N蛋白的抗体占主导地位，但不能中和抗体。P蛋白参与构成核衣壳蛋白复合体，同时与L蛋白作用形成有活性的RNA聚合酶。M蛋白与病毒的成熟、释放有关，在成熟病毒粒子从细胞内释放的过程中，M蛋白发挥决定性的作用。F蛋白具有诱导细胞溶血素、细胞融合，以及启动病毒感染细胞的生物学活性。H糖蛋白具有神经氨酸酶活性和血凝素活性，主要作为受体连接宿主细胞和病毒；是主要的保护性免疫原，能够诱导机体产生中和抗体。L蛋白具有病毒转录酶和复制酶的成分，具有多聚酶、甲基化、帽化和多腺苷酸化等活性。

PPRV可在胎绵羊肾、胎羊及新生羊的睾丸细胞、Vero细胞上增殖，并产生细胞病变（CPE），形成合胞体。PPRV在自然环境下抵抗力较低，50℃60 min即可灭活，在pH值4.0～10.0范围内稳定，对酒精、乙醇、乙醚和去污剂敏感，苯酚和2%的NaOH都是有效的消毒剂。但是，在冷藏和冷冻组织中能存活较长时间。

3 流行病学

山羊和绵羊是该病的自然宿主，山羊比绵羊更易感，临床症状更严重，山羊不同品种的易感性有差异。易感羊群发病率通常达60%以上，病死率可达50%以上。鹿、野山羊、长角大羚羊、东方盘羊、瞪羚羊、驼可感染发病，牛和羊多呈亚临床感染。本病传染源主要为患病动物和隐性感染动物，主要通过呼吸道和消化道感染。传播方式主要是接触传播，可通过与病羊直接接触发生传播，病羊的鼻液、粪尿等分泌物和排泄物含有大量的病毒，与被病毒污染的饲料、饮水、衣物、工具、圈舍和牧场等接触也可发生间接传播，在养殖密度较高的羊群偶尔会发生近距离的气溶胶传播。大量的流行病学资料显示，集市和共同放牧区是PPR传播的重要场所［2］。该病一年四季均可发生，但多雨季节和干燥寒冷季节多发。潜伏期一般4～6 d，短则1～2 d，长者10 d，《国际动物卫生法典》规定潜伏期21 d。

4 临床症状

羊临床症状较典型，绵羊症状一般较轻微，以突然发热、眼鼻排出分泌物、口腔溃疡、呼吸失调、咳嗽、恶臭的腹泻和死亡为特征。根据症状可分为温和型、标准型和急性型。温和型症状轻微，发热，类似感冒症状。标准型症状典型，发热，体温可达40～41℃，持续3～8 d，口鼻分泌物严重增加，腹泻严重，有时有口腔溃疡；有时表现支气管肺炎，类似羊支原体肺炎；后期出现带血水样腹泻，严重脱水，消瘦；怀孕母羊可发生流产。急性型较少发生，急性死亡，感染后1～2 d内死亡。

5 致病机理与病理变化

PPRV主要通过呼吸道侵入机体，然后在呼吸道黏膜上皮细胞、局部淋巴结等部位大量复制引起原发病灶，并迅速通过淋巴和血液循环到达全身组织器官，PPRV迅速增殖并产生很高的滴度，引起全身性感染。剖检可见口腔和鼻腔黏膜糜烂坏死；支气管肺炎，肺尖肺炎；坏死性或出血性肠炎，盲肠、结肠近端和直肠出现特征性条状充血、出血，呈斑马状条纹；淋巴结特别是肠系膜淋巴结水肿，脾脏肿大并可出现坏死病变；组织学上可见肺部组织出现多核巨细胞以及细胞内嗜酸性包含体。

6 诊断

根据山羊或绵羊出现急性发热、腹泻、口炎等症状，羊群发病率、病死率较高，传播迅速，且出现肺尖肺炎病理变化时，可判定为疑似小反刍兽疫，确诊需进一步做实验室诊断。无菌采集病羊口、鼻棉拭子和抗凝血，采集被扑杀或刚死亡病畜的脾、胸腺、肠系膜和支气管淋巴结、肠黏膜、肺等组织，无菌采集全血，用常规方法分离血清。

6.1 血清学检测

可采用小反刍兽疫单抗竞争ELISA检测法和间接ELISA抗体检测法。

6.2 病原学检测

可采用细胞培养法分离病毒，也可直接对病料进行检测；病毒检测可采用反转录聚合酶链式反应（RT-PCR）结合核酸序列测定，亦可采用抗体夹心ELISA。

6.3 结果判定

符合疑似小反刍兽疫结果判定，且血清学或病原学检测阳性，可确诊为小反刍兽疫。

6.4 鉴别诊断

应注意与牛瘟、羊传染性胸膜肺炎、巴氏杆菌病、羊传染性脓疱、蓝舌病、口蹄疫、羊痘等相鉴别［7］。

7 防控措施

7.1 提高环境控制水平

养殖场户应做好日常饲养管理和消毒工作，外来人员和车辆进场前应彻底消毒，切实提高生产安全水平。严格执行动物防疫有关法律法规，严禁从疫区引进羊只，对外来羊只，尤其是来源于活羊交易市场的羊调入后必须隔离观察30 d以上，经临床诊断确认健康无病，方可混群饲养。发现可疑病例，应及时向当地兽医部门报告。

7.2 切实加强检疫监管

畜牧兽医部门要依法开展羊只及其产品的检疫监管，切实做好产地、屠宰、运输等环节的检疫监管；加强检疫合格证明和牲畜耳标管理，严格执行登记备案制度；加大执法力度，严厉打击倒买倒卖检疫证章标志、违规跨省调运活羊、不按规定处置染疫动物及动物产品等违法行为。

7.3 规范处置新发疫情

对新发疑似疫情，要在做好疫情报告、采样送检工作的同时，立即采取临时隔离控制措施，必要时可采取封锁、扑杀等措施。一旦确诊，应按照“早、快、严、小”的原则，采取严格的封锁、扑杀、检疫、消毒、无害化处理以及疫源的追踪调查和处理等综合性防治措施，科学规范地开展疫情处置工作，以有效控制和扑灭疫情。

7.4 及时构筑免疫屏障

按要求及时做好种羊免疫工作，对发生疫情或检出阳性的地区，以及受威胁区，要以县为单位对羊只开展紧急免疫。同时，要根据风险评估结果，对高风险区羊进行全面免疫。另外，加强边境地区疫情监测，对与有疫情国家相邻的边境县，定期对羊群进行预防性强制免疫，建立免疫隔离带，防范境外疫情传入。目前，商品化的PPR细胞毒活疫苗，诱导的免疫力可维持3年左右。

［1］BanyardAC，ParidaS，BattenC，etal．Globaldistributionofpestedes petits ruminants virus and prospects for improved diagnosis and control［J］.J Gen Virol，2010，91：2885-2897．

［2］蒋梅，扬仕标，张念祖．小反刍兽疫流行趋势与防控［J］.动物医学进展，2007，28（增刊）：88-91．

［3］陆则基，王志亮，刘雨田，等.西藏阿里地区小反刍兽疫流行病学调查研究［J］.中国动物检疫，2008，25（12）：44-47．

［4］Kwiatek O，Minet C，Grillet C，et al.Peste des petits ruminants（PPR）outbreakinTajikistan［J］.JCompPathol，2007，136（2-3）:111-119.

［5］Bailey D，Banyard A，Dash P C，et al.Full genome sequence of peste des petits ruminants virus，a member of the Morbillivirus genus［J］. Virus Research，2005，110：119-124.

［6］Diallo A．Control of peste des petits ruminants and poverty alleviation［J］.J Vet Med B，2006，53：11-13.

［7］李林，才学鹏，孟庆玲，等.小反刍兽疫研究概况［J］.现代生物医学进展，2011，11（7）：1373-1375.

S858.26，S858.27

A

2095-3887（2014）05-0068-03

10.3969/j.issn.2095-3887.2014.05.021

2014-06-30

张传亮，男，兽医师。