利用化学蛋白组学方法分析小鼠肝中氨甲蝶呤相互作用蛋白质
2013-11-12于晓明张丽华张玉奎
于晓明,张丽华,张玉奎
(1.东南大学医学院生物化学与分子生物学系,江苏南京 210009;2.中国科学院大连化学物理研究所高效分离与表征实验室,辽宁大连 116021)
氨甲喋呤(methotrexate,MTX)是一种叶酸拮抗剂,最初被用于恶性肿瘤治疗[1],目前临床上常用于急性白血病、尤其是急性淋巴细胞性白血病的维持治疗[2-4],对头颈部肿瘤、乳腺癌、肺癌及盆腔肿瘤也有一定疗效。MTX也可以作为抗炎和免疫抑制剂用于其他非肿瘤疾病的治疗。MTX于20世纪50年代作为“改变病情抗类风湿药物”(disease modifying antirheumatic drug,DMARD)被用于类风湿关节炎治疗,目前是类风湿关节炎治疗的一线药物。但有1/3类风湿关节炎患者对氨甲喋呤治疗不敏感,而且骨髓抑制、肝细胞毒性等毒性作用在一定程度限制了其应用[5-7]。MTX也是治疗中度至重度银屑病的一线药物,但同样存在患者间反应性的差异和急性骨髓抑制、胃肠道反应及肝细胞毒性等作用[8-9]。作为抗炎和免疫抑制剂,MTX也被用于溃疡性结肠炎、以及多肌炎、皮肌炎、多发性肉芽肿等自身免疫性疾病的治疗和急性移植物抗宿主疾病的预防性治疗[10-11]。MTX治疗效果明显,但对其作用机制仍不清楚。因此,研究MTX细胞内作用靶点对于阐明其作用机制和毒性以及毒理具有重要意义,可以帮助增加有效性,减少毒性,实现个体化治疗。
化学蛋白组学是利用化合物标记或富集细胞或组织内与化合物有亲和作用的蛋白质组,再利用质谱对被标记或富集的蛋白质进行鉴定。基于亲和色谱的化学蛋白组学方法是通过固载小分子化合物的亲和色谱法纯化与化合物特异结合的蛋白质,再通过质谱对蛋白质进行分析和鉴定,其过程是将化合物通过间隔臂固载于固相载体表面,再利用此基质亲和富集细胞裂解液或组织匀浆液中相互作用的蛋白,对得到的蛋白质进行聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)分离和质谱分析鉴定[12]。上述化学蛋白组学方法已用于信号转导通路中蛋白激酶抑制剂的细胞内蛋白靶点分析和cAMP,cGMP及磷脂酰肌醇等第二信使分子的下游转导通路研究[13-15]。本文利用化学蛋白组学的原理和方法,以键合MTX的琼脂糖凝胶为亲和材料,富集小鼠肝组织内与其相互作用的蛋白,利用质谱对富集的蛋白质组进行分析和鉴定,研究MTX细胞内相互作用蛋白靶点,从而为进一步研究其作用机制和毒理提供实验线索和依据。
1 材料与方法
1.1 试剂
MTX-琼脂糖凝胶、苯甲基磺酰氟(phenylmethylsulfongl fluoride,PMSF)、胰蛋白酶、尿素、二硫苏糖醇、碘乙酸均购自于Sigma公司,其余试剂均为分析纯或色谱纯。
1.2 仪器
FS-2型高速匀浆器购自北京科思佳公司,离心超滤管购自于Millipore,LC-20AD高效液相色谱仪为SHIMADZU产品,LCQ离子阱质谱仪为Thermo公司出品,反相液相色谱C18微柱(5 μm,200 A,直径300 μm×50 mm)购自于依利特公司。
1.3 小鼠肝组织匀浆液样品制备
取小鼠肝 3 g,剪碎,以 PBS 100 mmol·L-1(pH 7.4)清洗3次去除组织含有的血液成分,加3 ml PBS(含有 PMSF 1 mmol·L-1)匀浆液,匀浆5 min,12000×g离心30 min,取上清备用。
1.4 匀浆样品与氨甲蝶呤-琼脂糖凝胶相互作用分析
取0.1 ml键合MTX的琼脂糖凝胶分别装入2 个离心管内,以 PBS 100 mmol·L-1(pH 7.4)进行清洗。取500 μl肝组织匀浆液加入离心管内,与凝胶于室温反应1 h,以1 ml 0.1%PBST(PBS中含有0.1%吐温-20)清洗凝胶去除凝胶表面非特异吸附蛋白,共洗涤10次。收集最后一次洗脱液(PBST洗脱液)进行SDS-PAGE分析。以 NaCl 1 mol·L-1洗脱结合于 MTX-琼脂糖凝胶表面的蛋白,收集样品进行SDS-PAGE分析。
1.5 SDS-PAGE检测洗脱样品蛋白
对PBST洗脱液,NaCl 1 mol·L-1洗脱液中的蛋白样品进行SDS-PAGE分析,采用银染法对凝胶进行染色处理。
1.6 样品除盐
将亲和富集的蛋白样品溶液装入截留分子量3000 u的超滤离心管,以 12000×g超滤浓缩15 min至溶液体积为 0.2 ml,再加入 1 ml Tris-HCl 0.15 mo·lL-1(pH 8.4),以上述条件超滤浓缩至0.2 ml,如此重复超滤浓缩3次进行溶液置换。
1.7 蛋白酶解
将洗脱的蛋白样品溶解于终浓度8 mol·L-1尿素中,加入二硫苏糖醇进行还原,56℃反应40 min,再加入碘乙酸,室温反应 40 min。以 Tris-HCl(pH 8.5)50 mmol·L-1稀释至尿素浓度为2 mol·L-1后加胰蛋白酶于37℃酶解24 h。
1.8 μRPLC-ESI-MS/MS 分析
μRPLC-ESI-MS/MS 分析条件如下所示。流动相 A为98%水(含0.1%甲酸),流动相 B为98%乙腈(ACN,含0.1%甲酸)。其分离梯度如下:0 min,0%B;110 min,40%B;110.1 min,80%B;130 min,80%B;流速,5.0 μl·min-1。上样体积为100 μl,上样及除盐时间为40 min。
LCQ仪器采用正离子模式,加热毛细管温度为150℃,喷雾电压为3.0 kV,MS/MS扫描碰撞能量为35%。总离子流色谱图质量范围为质荷比(m/z)400~2000。MS/MS谱图采用数据依赖模式,并且针对全扫描中前三个最高峰进行MS/MS扫描。MS/MS数据采用基于SEQUST算法的BioWorks(版本号3.1)软件检索。检索参数设置如下:数据库,ipi MouseⅤ蛋白质数据库;胰蛋白酶完全酶切,允许最大两个漏切位点;母离子的质量容忍度为2 u;碎片离子的质量容忍度为1 u。
2 结果
2.1 亲和富集蛋白样品分析
亲和富集蛋白样品的SDS-PAGE分析结果如图1所示,可以看出PBST洗脱样品中几乎不含有蛋白(泳道2),NaCl 1 mol·L-1洗脱样品蛋白含量明显高于PBST 洗脱样品(泳道1),说明NaCl 1 mol·L-1可以使保留于MTX-琼脂糖凝胶上的蛋白解离被洗脱。
Fig.1 SDS-PAGE analysis of eluents from methotrexate-argarose after incubation of liver homogenate with the argarose beads.M:marker;lane 1:NaCl 1 mol·L -1 eluent;lane 2:PBST eluent.
2.2 亲和富集蛋白μRPLC-ESI-MS/MS分析
将亲和收集得到的蛋白样品进行超滤浓缩和溶液置换后以胰蛋白酶酶解蛋白样品,酶解产物进行μRPLC-ESI-MS/MS 分析,结果如图2所示。通过检索数据库鉴定样品中蛋白种类如表1所示。在鉴定得到的蛋白质中经过2个肽段鉴定的蛋白为9个,其余蛋白为1个肽段鉴定。对得到的蛋白初步分类包括:代谢相关酶类(其中与一碳单位和叶酸代谢有关的有甲酰四氢叶酸脱氢酶、蛋氨酸合成酶、S-腺苷同型半胱氨酸水解酶)、细胞骨架相关蛋白、肿瘤相关蛋白、与基因转录、翻译相关蛋白及其他功能蛋白等。
Fig.2 μ HPLC analysis of trypsin digests of proteins eluted by NaCl.
Tab.1 Protein identification by μ HPLC-ESI-MS/MS analysis
3 讨论
利用以键合化合物为配基的亲和材料富集相互作用蛋白是研究化合物细胞内蛋白靶点的常用方法,基于亲和富集的化学蛋白组学方法即利用亲和材料首先富集捕获与配基相互作用的蛋白,再利用高通量质谱分析方法对蛋白质进行鉴定。亲和富集蛋白的第一步就是准备亲和色谱材料,琼脂糖凝胶是一种常用的凝胶层析介质,具有亲水性、大孔性、非特异性吸附少等优点,在分离生物大分子和基因工程产品下游工艺等领域具有广泛的用途。本文采用的亲和介质材料是键合MTX的琼脂糖凝胶,通过化学键合方法使MTX固载于凝胶表面,并在药物分子与凝胶表面引入了适当长度间隔臂,从而减少可能存在的空间位阻效应对药物配基与靶蛋白相互作用的影响。
针对鉴定的蛋白,与MTX治疗类风湿关节炎的作用机制可能相关、值得进一步关注和研究的蛋白包括:S-腺苷同型半胱氨酸水解酶(S-adenosylhomocysteine hydrolase,SAHH)、蛋氨酸合成酶(betaine-homocysteine methyltransferase)、干扰素诱导蛋白10受体(interferon-inducible protein 10)等。SAHH是细胞内广泛存在的一种酶,它催化 S-腺 苷 同 型 半 胱 氨 酸 (S-adenosylhomocysteine,AdoHcy)水解生成腺苷和同型半胱氨酸,直接影响细胞内AdoHcy、腺苷和同型半胱氨酸水平。有文献报道类风湿关节炎患者使用MTX后血液同型半胱氨酸水平升高[16-18],提示 MTX 可能与AdoHcy水解酶相互作用,影响体内同型半胱氨酸水平。关于MTX治疗类风湿关节炎的一个机制是通过增加体内腺苷含量介导的,如使用MTX处理成纤维细胞和上皮细胞可以使细胞外腺苷水平增加[19]。目前研究认为MTX影响腺苷代谢的分子机制为 MTX抑制 5-氨基咪唑-4-甲酰胺核苷酸(5-aminoimidazole-4-carboxamide ribonucleotide,AICAR)转甲酰酶,使细胞内AICAR水平升高,进而抑制AMP脱氨酶和腺苷脱氨酶,从而促进AMP转化生成腺苷[20]。本文结果提示 MTX可能与SAHH相互作用,直接影响细胞内腺苷水平。AdoHcy是依赖S-腺苷甲硫氨酸的转甲基酶的强效抑制剂[21],SAHH已被选择作为多种新药研发的重要靶点,如免疫抑制剂、抗病毒药、防治动脉粥样硬化和阿尔茨海默病药物。目前还没有报道MTX与SAHH相互作用。所以,本实验结果为进一步研究MTX治疗类风湿关节炎的分子机制及了解SAHH的功能提供了新的实验线索。
蛋氨酸合成酶催化同型半胱氨酸甲基化生成蛋氨酸,由甲基四氢叶酸提供甲基。使用大剂量MTX化疗治疗原发性中枢神经系统淋巴瘤时,中枢神经系统白质的改变是化疗的典型副作用。而S-腺苷蛋氨酸是形成中枢神经髓鞘的必需物质,所以可以推论MTX与AdoHcy水解酶和蛋氨酸合成酶相互作用,继而影响蛋氨酸代谢可能是其诱发中枢神经系统白质改变的一个机制。
干扰素诱导蛋白10受体是由7个跨膜亚单位组成的膜结合分子,属于G蛋白偶联受体超家族。干扰素诱导蛋白10与受体相互作用,通过一系列信号转导途径介导免疫细胞的迁移、活化,参与多种疾病包括类风湿性关节炎的发生。MTX从20世纪50年代开始被试用治疗类风湿关节炎,取得良好疗效。到目前MTX已经被作为治疗类风湿关节炎的首选,然而它的作用机制还不是很明确。本实验结果提示,干扰素诱导蛋白10受体很可能是MTX治疗类风湿关节炎的一个新的蛋白靶点。综上所述,本文利用化学蛋白组学的原理和方法,以键合MTX的琼脂糖凝胶为亲和材料,利用液相色谱与质谱联用鉴定了小鼠肝组织内与MTX相互作用的潜在蛋白靶点,为进一步研究MTX作用机制和毒理提供了实验线索和依据。
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