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化学-酶催化法制备D-谷氨酸与γ-氨基丁酸

2013-10-15杨成丽马子玉胡晓丽李大力

化学与生物工程 2013年11期
关键词:脱羧酶消旋氨基丁酸

杨成丽,马子玉,胡晓丽,李大力

(1.南京理工大学生物工程系,江苏 南京210094;2.南京农业大学微生物学系,江苏 南京210014;3.南京农业大学动物科技学院,江苏 南京210014)

L-谷氨酸脱羧酶(L-Glutamic acid decarboxylase,GAD)是一种广谱酶,可以催化L-谷氨酸(L-Glu)脱羧生成 γ-氨 基 丁 酸 (γ-Aminobutyric acid,GABA)[1]。GABA是有效的抑制性神经递质,在医药行业应用广泛,近年来在食品行业也越来越受关注[2,3]。GABA目前主要采用化学合成法、植物提取法和微生物发酵法生产,化学合成法安全性较差,植物富集的GABA含量很低,微生物发酵法主要使用含有GAD的菌种来发酵生产 GABA[3-5]。

D-谷氨酸(D-Glu)是许多药物、生物活性物质以及聚合体的重要前体和中间体,可与多种金属形成配合物,在超分子化学中也得到了广泛应用[6]。目前,DGlu的制备方法主要有手性拆分法、生物转化法两种,手性拆分法是利用手性拆分剂分离DL-Glu来生产DGlu[7],该法工艺复杂,工业化应用难度较大。生物转化法是利用菌体或酶来转化生产D-Glu。

作者从保加利亚乳杆菌粗提得到GAD,采用酶催化法由DL-Glu制备得到了D-Glu和GABA。

1 实验

1.1 菌种与培养基

保加利亚乳杆菌(Lactobacillus delbrueckii sp.Bulgaricus)从市售伊利原味酸奶中分离得到。接种环挑取市售伊利原味酸奶,平板划线培养,于37℃培养24h后,观察菌落形态并进行显微镜镜检,确定目的菌落。

改良LB培养基:蛋白胨2g·L-1,酵母膏5g·L-1,L-Glu 25g·L-1,pH 值6.0。

1.2 试剂与仪器

所用试剂均为国产分析纯。

WXG-4型旋光仪,上海光学仪器厂。

1.3 L-谷氨酸的消旋

参照文献[8]方法对L-Glu进行消旋。在1L圆底烧瓶中加入54.08g(0.32mmol)L-Glu、400mL乙酸和20mL蒸馏水,水浴加热并搅拌,L-Glu全部溶解后,加入4mL水杨醛于90℃搅拌反应7h,加入6g活性炭,煮沸5min,过滤,旋蒸浓缩后用1mol·L-1盐酸溶液调节pH值至3.2,过滤收集沉淀,用少量蒸馏水洗涤,干燥,即为DL-Glu。

1.4 L-谷氨酸脱羧酶粗提物的制备

将菌种接种于5mL改良LB培养基中,于37℃振荡培养18h,离心收集菌体,用蒸馏水重悬,冰浴中超声破碎菌体,加2BV冷冻丙酮,混匀后于-20℃放置10min,离心收集沉淀,即得GAD粗提物。

1.5 D-Glu与GABA的制备

将由5mL菌液制备得到的GAD粗提物、2mL 4 mmol·L-1的磷酸吡哆醛溶液、8mL 50mmol·L-1的DL-Glu(用pH 值4.4的 H3PO4-NaH2PO4缓冲溶液配制)混合均匀,于37℃反应不同时间。

反应液旋蒸浓缩后用1mol·L-1盐酸溶液调节pH值至3.2,静置后抽滤,获得D-Glu,测定旋光度,参照文献[9]计算D-Glu的光学纯度。滤液参照文献[10]加入2BV乙醇后,调节pH值至7.3,待有沉淀析出后抽滤,获得GABA,计算收率。

1.6 产物分析方法

采用薄层层析(TLC)分析反应体系中产物的形成,取一定时间的反应液在经过活化的硅胶板(G254)点样层析,展层剂为正丁醇∶乙酸∶水=4∶1∶3(体积比)。采用旋光仪测定谷氨酸的旋光度。

2 结果与讨论

2.1 DL-Glu的制备

实验得到 DL-Glu 38.86g,消旋率为94.92%,收率为71.9%。

2.2 D-Glu与GABA的制备

GAD能专一性催化L-Glu的脱羧反应,却不能催化D-Glu脱去羧基,因此,GAD可将DL-Glu中的LGlu转化为GABA。通过薄层层析(TLC)对反应进程进行监测,结果如图1所示。

图1 反应不同时间,DL-Glu底物反应液的TLC分析结果Fig.1 The TLC results for DL-Glu substrate solution reacted for different times

由图1可知,反应50h时,反应液点样层析后得到两个大小基本一致的点,表明酶催化反应基本完成。D-Glu收率为81%,光学纯度为93.2%。GABA收率为48.7%。产物D-Glu与GABA的TLC分析结果见图2。

3 结论

图2 产物TLC分析结果Fig.2 The TLC results for the product

采用化学-酶法制备了D-Glu和GABA。将LGlu通过化学消旋制备DL-Glu,再用GAD将DL-Glu中的L-Glu转化为GABA。用等电点沉淀法获取DGlu和GABA,所得D-Glu的光学纯度为93.2%、收率为81%,GABA收率为48.7%。

[1]许建军,江波,许时婴.谷氨酸脱羧酶(GAD)的研究进展[J].食品工业科技,2004,25(7):132-133.

[2]黄桂东,毛健,姬中伟,等.一株产γ-氨基丁酸植物乳杆菌 MJ0301培养基的优化[J/OL].食品科学,http://www.cnki.net/kcms/detail/11.2206.TS.20130105.1534.017.html.

[3]林亲录,王婧,陈海军.γ-氨基丁酸的研究进展[J].现代食品科技,2008,24(5):496-500.

[4]胡超,左斌,谢达平.酵母产γ-氨基丁酸发酵条件的研究[J].现代生物医学进展,2011,11(5):861-863.

[5]秦江辉,周礼红,胡开成,等.高产γ-氨基丁酸的红曲霉菌株选育[J].江苏农业科学,2012,40(3):320-322.

[6]许建军,江波,许时婴.Lactococcus lactis谷氨酸脱羧酶的分离纯化及部分酶学性质[J].无锡轻工大学学报(食品与生物技术),2004,23(3):79-84.

[7]翟立海,蒋立建,祝阳,等.以L-谷氨酸为原料制备D-谷氨酸的新方法[J].应用化工,2006,35(4):313-315.

[8]栗更新,许文松,王蓓,等.L-谷氨酸的消旋研究及DL-谷氨酸的制备[J].化学世界,2006,47(7):433-435.

[9]周新兰,周锡梁.氨基酸的检验方法[J].氨基酸杂志,1984,(2):59-64.

[10]马强.γ-氨基丁酸结晶工艺研究[D].无锡:江南大学,2009.

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