ApoG2联合紫杉醇对鼻咽癌细胞及其移植瘤的抑制作用观察
2013-08-05汪森明石丰榕朱震威
钟 梅,汪森明,石丰榕,朱震威
(南方医科大学附属珠江医院,广州510282)
鼻咽癌是我国常见的恶性肿瘤之一,发病率呈逐年上升趋势[1],尽管近年来其治疗有较大进展,但肿瘤转移或治疗后复发率仍较高。Apogossypolo ne(ApoG2)是棉酚的一种新型衍生物,具有抗肿瘤活性高、毒性小、稳定性好的特点[2]。紫杉醇(PTX)从紫杉树皮中提取,是作用于细胞微管的主要抗肿瘤药物之一,对多种肿瘤有明显疗效。近期我们观察了ApoG2联合PTX对人鼻咽癌CNE-2细胞及其移植瘤的抑制作用,并初步探讨其可能机制,旨在为鼻咽癌的治疗提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 材料 Balb/c-nu裸鼠由广东省实验动物中心提供,4~6周龄,体质量16~20 g,雌雄不拘,在无特定病原体(SPF)条件下饲养。动物质量和环境设施合格证号分别为:SCXK(粤)2008-0002、SYXK(粤)-2007-0081。人鼻咽癌CNE-2细胞株由南方医科大学肿瘤研究所细胞中心提供(采用含10%胎牛血清的DMEM培养基,于37℃、5%CO2培养箱中培养)。ApoG2由美国密歇根大学医学院肿瘤中心徐梁教授惠赠。PTX购自海南中化联合制药有限公司。兔源Bcl-2多克隆抗体为美国CST公司产品,兔SP检测试剂盒(SP-9000)、DAB显色试剂盒(ZLI-9031)、AP标记山羊抗兔IgG均购自北京中杉公司。其余试剂为国产分析纯。
1.2 ApoG2、PTX对CNE-2细胞生长的抑制作用观察
1.2.1 ApoG2、PTX 干预及半数抑制浓度(IC50)、细胞抑制率测定 取对数生长期CNE-2细胞,计数为8×104个/mL,取每孔100 μL接种于96孔培养板,置于37℃、5%CO2孵箱中培养,待24 h细胞贴壁后加入含不同药物的培养液干预。①ApoG2干预:加入含ApoG2完全培养液200 μL,ApoG2浓度分别为为 5、10、20、40、60 μmol/L;②PTX 干预:加入含PTX 的完全培养液 200 μL,浓度分别为 0.001、0.01、0.1、1、2 μmol/L;③ApoG2 及 PTX 联合干预:加入含ApoG2及PTX的完全培养液200 μL,两药浓度不变。对照孔不加细胞悬液只加含0.1%DMSO培养液200 μL。加药后每个浓度设3个复孔,继续放入培养箱中培养。48 h后终止培养,每孔加入MTT20 μL(5 mg/mL)培养4 h,离心吸去培养液,每孔加入150 μL DMSO震荡10 min,使结晶物充分溶解。酶联免疫检测仪检测490 nm波长处吸光度值(OD值)。计算48 h的IC50、细胞抑制率及两药相互作用系数(CDI)。
1.2.2 ApoG2、PTX干预及细胞凋亡率检测 取对数生长期CNE-2细胞消化传代,待细胞长至70%满度时,吸弃旧培养液分为四组。对照组不干预;ApoG2 组予 ApoG2 20 μmol/L,PTX 组予 PTX 0.01 μmol/L,联合组予 ApoG2及 PTX,药物浓度同
1.2.1 。干预后继续培养48 h,取5 ×105个细胞,常规低速离心5 min,弃上清液加入400 μL的Binding Buffer重悬细胞,加入5 μL的 Annexin V-FITC混匀,加入5 μL碘化丙啶(PI)混匀,室温条件下避光反应10 min,流式细胞仪检测细胞凋亡率。
1.3 ApoG2、PTX对CNE-2细胞皮下移植瘤的抑瘤作用观察
1.3.1 皮下移植瘤模型建立及ApoG2、PTX干预取于H-DMEM培养基中培养的对数生长期CNE-2细胞制备细胞悬液。于12只Balb/c-nu裸鼠右背部皮下各接种5×105个CNE-2细胞(约0.1 mL)。待肉眼可见局部肿瘤生长时将小鼠随机分为四组(各3只)腹腔给药:对照组注射生理盐水;PTX组注射PTX 20 mg/kg(0.2 mL),隔日 1 次,共3 次;ApoG2组注射ApoG2 80 mg/kg(0.2mL),共5次;联合组联合应用ApoG2及PTX,给药剂量、方式及时间同单药组。
1.3.2 观察项目 ①肿瘤抑制率:待对照组肿瘤体积超过1 cm3(给药15 d左右)时处理小鼠,完整剥离皮下瘤结节,称重,计算肿瘤抑制率。肿瘤抑制率=(对照组瘤重-实验组瘤重)/对照组瘤重。绘制移植瘤生长曲线。②肿瘤组织Bcl-2蛋白表达:取各组移植瘤标本,石蜡包埋,4 μm切片。常规二甲苯脱腊,梯度酒精水化后置于枸橼酸缓冲液中微波加热至92~98℃,2 min后改为小火10 min以修复抗原,自然冷却至室温,按SP试剂盒说明书完成免疫染色各步骤,以PBS代替一抗作为阴性对照。结果判定:每组选取3张切片进行分析。Bcl-2阳性表达为肿瘤细胞胞质染成棕黄色。高倍镜(400×)下观察10个高倍视野,计数1 000个细胞,计算阳性细胞百分率。
1.4 统计学方法 采用SPSS13.0统计软件行统计学处理。数据以¯x±s表示,两样本均数比较采用t检验,多个样本均数比较应用单因素方差分析(Oneway ANOVA)。P≤0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 细胞生长抑制情况
2.1.1 细胞抑制率 ApoG2、PTX单用及联用48 h细胞抑制率见表1。由表1可见,ApoG2、PTX单用对细胞生长均有抑制作用,与对照组比较,FApoG2=601.523,PApoG2=0.000;FPTX=482.730,PPTX=0.000;联合组抑制率随两药浓度增强逐渐增加,两者之间存在交互效应(F=12.590,P=0.000),CDI<1,两者发挥协同效应。作用48 h后ApoG2与PTX的IC50值分别为 45.41 μmol/L 和 0.13 μmol/L。
表1 ApoG2、PTX单用及联用48 h CNE-2细胞抑制率(n=3,%,¯x±s)
2.1.2 细胞凋亡率 20 μmol/L APoG2、0.01 μmol/L PTX及二者联用48 h细胞凋亡率分别为:对照组(2.17 ±0.32)%,APoG2 组(4.39 ±0.30)%,PTX 组(18.81 ±1.32)%,联合组(24.13±1.56)%。联合组明显高于单药组,P<0.05。提示ApoG2与PTX联用较各单药应用能更明显诱导CNE-2细胞凋亡。
2.2 移植瘤生长抑制情况 皮下接种鼻咽癌CNE-2细胞4 d后肉眼可见局部肿瘤生长。
2.2.1 移植瘤生长情况 各组移植瘤生长曲线见图1。对照组、PTX组、ApoG2组、联合组治疗初期肿瘤均逐渐增大.但对照组生长速度在各时间点上均快于3个治疗组。从第5天开始各治疗组和对照组相比,肿瘤体积的变化差异有显著性(P<0.01)。
图1 各组移植瘤生长情况
2.2.2 瘤重及抑瘤率 治疗结束后各组平均瘤重及抑瘤率比较见表2。
表2 治疗结束四组平均瘤重及抑瘤率比较(n=3,¯x±s)
2.2.3 肿瘤组织Bcl-2蛋白表达 Bcl-2表达率对照组为(91.29±3.61)%,ApoG2组为(67.12 ±4.57)%,PTX 组为(50.62 ±2.80)%,联合组为(31.54±6.02)%;与对照组比较,PTX 组、ApoG2组和联合组表达率均明显降低,P<0.01;联合组显著低于PTX组和ApoG2组,P均<0.01。
3 讨论
研究证实,ApoG2是Bcl-2的小分子阻断剂,能够诱导多种细胞凋亡[3,4]。PTX是目前已经明确的作用于细胞微管的抗肿瘤药物[5],其通过促进微管蛋白聚合抑制解聚,保持微管蛋白稳定,抑制细胞有丝分裂,而对正常的细胞基本无影响,是目前治疗鼻咽癌的重要化疗药物之一[6]。近年研究发现,微管的完整性被破坏后可导致Bcl蛋白磷酸化,促使细胞发生凋亡;Bcl-2磷酸化可抑制Bcl-2与Bax二聚体的形成,抑制Bcl-2的功能[7]。
线粒体依赖性细胞凋亡通路是指调节线粒体膜表面Bcl-2家族蛋白的表达,引起细胞色素C(Cytc)从线粒体内膜释放.促进凋亡体(由Cyt-c、Apaf和Caspase-9)的形成,进一步活化效应性的Caspase,从而调控细胞凋亡。高表达的抗凋亡的Bcl-XL和Bcl-2蛋白可以与线粒体外膜VDAC(电压依赖经的离子通道)结合,保护线粒体膜的完整性,当ApoG2结合抗凋亡蛋白并抑制其保护功能后,线粒体膜的完整性很快就被破坏;Bcl-2和Bcl-XL蛋白过表达均会抑制线粒体依赖性细胞凋亡通路,且会增加细胞对放化疗的抵抗性。Arnold等[8]研究表明,ApoG2能抑制淋巴瘤细胞增殖,诱导细胞色素C从线粒体释放到细胞质,促进凋亡相关蛋白Caspase-3和Caspase-9活化,最终诱导淋巴瘤细胞发生凋亡。
Bcl-2是迄今为止功能最明确的细胞凋亡拮抗基因,其广泛分布于细胞膜系统(特别是在线粒体膜上),有阻止细胞色素C释放、抑制细胞凋亡的作用。抗凋亡的Bcl-2家族蛋白在抑制肿瘤细胞凋亡中起着关键作用,这类蛋白在许多类型的肿瘤中均呈高表达,如鼻咽癌、胰腺癌、乳腺癌、胃癌和肺癌[9,10]。鉴于其可能与肿瘤的放疗抵抗、化疗耐药以及不良预后相关,抑制Bcl-2活性或降低Bcl-2的表达水平可能成为鼻咽癌治疗的一条新途径。
本研究结果显示,ApoG2与PTX单药对细胞的抑制作用随药物浓度提高而增强,呈浓度依赖性,二者联合应用有协同作用;PTX与ApoG2联用的凋亡率高于单药应用,但总体凋亡率并不高,原因可能是部分凋亡晚期细胞已碎裂成碎片,与坏死无法区别;细胞凋亡早期细胞内结构已发生变化,但细胞膜完整,染料无法进入细胞内以及结合外翻的细胞膜进行染色。本研究结果显示,ApoG2、PTX及两者联用均可抑制移植瘤生长,随着作用时间的延长抑制作用更加明显,此与前期研究及国外文献报道相符[11,12];从第 5 天起至治疗结束,联合组肿瘤生长抑制率均明显高于ApoG2组及PTX组,显示ApoG2及PTX有明显的协同作用,ApoG2可增强PTX的敏感性。为进一步探讨这种联合效应是否可特异性抑制靶蛋白的表达,我们采用免疫组化法检测了移植瘤组织Bcl-2蛋白的表达情况,结果提示PTX与ApoG2联用可协同抑制Bcl-2蛋白表达。
综上所述,ApoG2具有抗鼻咽癌及化疗增敏作用,且无明显毒副反应,可能是一种良好的治疗鼻咽癌的新药。
[1]Jia WH,Huang QH,Liao JY,et al.Trends in incidence and mortality of nasopharyngeal carcinoma over a 20-25 year period(1978/1983-2002)in Sihui and Cangwu counties in southern China[J].BMC Cancer,2006,6(期?):178.
[2]Kitada S,Leone M,Sareth S,et al.Discovery,characterization,and structure-activity relationships studies of proapoptotic polyphenols targeting B-cell lymphocyte/leukemia-2 proteins[J].J Med Chem,2003,46(20):4259-4264.
[3]Lin J,Wu YJ,Yang DJ,et al.Effect of apogossypolone on induction apoptosis in multiple myeloma cells and its mechanisms[J].J Exp Hematol,2009,17(1):92-98.
[4]Hu ZY,Zhu XF,Zhong ZD,et al.ApoG2,a novel inhibitor of antiapoptotic Bcl-2 family proteins,induces apoptosis and suppresses tumor growth in nasopharyngeal carcinoma xenografts[J].Int J Cancer,2008,123(10):2418-2429.
[5]Eum KH,Lee M.Crosstalk between autophagy and apoptosis in the regulation of paclitaxel-induced cell death in v-Ha-ras-transformed fibroblasts[J].Mol Cell Biochem,2011,348(1-2):61-68.
[6]Vermorken JB,Remenar E,van Herpen C.Cisplatin,fluorouracil,and docetaxel in unresectable head and neck cancer[J].N Engl J Med,2007,357(17):1695-1704.
[7]Vantieghem A,Xu Y,Assefa Z,et al.Phosphorylation of Bcl-2 in G2/M phase-arrested cells following photodynamic therapy with hypericin involves a CDKl-mediated signal and delays the onset of apoptosis[J].J Biol Chem,2002,277(40):37718-37731.
[8]Arnold AA,Aboukameel A,Chen J,et al.Preclinical studies of Apogossypolone:a new nonpeptidic pan small-molecule inhibitor of Bcl-2,Bcl-XL and Mcl-1 proteins in follicular small cleaved cell lymphoma model[J].Mol Cancer,2008,7(20):453-463.
[9]Evans JD,Cornford PA,Dodson A,et al.Detailed tissue expression of bcl-2,bax,bak and bcl-x in the normal human pancreas and in chronic pancreatitis,ampullary and pancreatic ductal adenocarcinomas[J].Pancreatology,2001,1(3):254-262.
[10]Yan yan,Qiao Minze,Jia Xiumei,et al.FENG.Expressions of JAK1,p-STAT3 and bc-l 2 in Gastric Cancer and Their Significance[J].Cancer Res Prev Treat,2009,36(8):657-661.
[11]Niu XG,Wang SM,Ding WM.Inhibition and apoptosis effects of apogossypolone on breast cancer cell line MCF-7[J].Tumor,2010(12):1022-1026.
[12]Banerjee S,Choi M,Aboukameel A,et al.Preclinical studies of apogossypolone,a novel pan inhibitor of bcl-2 and mcl-1,synergistically potentiats cytotoxic effect of gemcitabine in pancreatic cancer cells[J].Pancreas,2010,39(3):323-331.