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恩施绿茶茶多糖对糖尿病模型大鼠血糖的影响*

2013-03-30王振富李玉山

中国应用生理学杂志 2013年1期
关键词:激酶绿茶葡萄糖

钟 灵 ,王振富,李玉山

(1.湖北民族学院附属民大医院,2.湖北民族学院医学院,恩施445000)

恩施绿茶盛产于有“中国硒都”之称的湖北恩施,因富含微量元素硒,故亦称硒茶,质地优于普通绿茶。茶多糖(tea polysaccharide,TPS)是从茶叶中提取的多糖类化合物,具有增强免疫力、降血糖、抗辐射、抗血凝、抗血栓等功效[1,2]。目前,糖尿病的死亡率仅次于意外死亡和肿瘤死亡,其治疗药物也很多,但大多不能根治,且副作用强。现在人们已经更多的注意到一些降糖植物上,把它用来预防及辅助治疗糖尿病。我国和日本民间均有用粗老茶治糖尿病的传统[3],茶叶愈粗老治糖尿病的效果愈好。为探讨恩施绿茶在预防及辅助治疗糖尿病方面的作用,我们从绿茶中提取了茶多糖粗品,进行了一系列的实验研究。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 主要试剂和仪器 FBG试剂盒由美国博晟公司提供,INS试剂盒由天津九鼎医学生物工程有限公司提供,MDA、SOD及GSH-Px试剂盒均由南京建成生物工程研究所提供,组织蛋白定量测定试剂盒由Bioresun公司提供,格列苯脲(HB-419)由苏州长征制药厂提供,四氧嘧啶由Sigma公司出品,ATP、NADP和G6PD购自巴贝赛克生物工程技术服务有限公司,三羟甲基氨基甲烷购自上海生物工程有限公司,AEROSET 09D05-01全自动生化分析仪(美国),756型紫外分光光度计(上海分析仪器总厂),GC-1200 r放射免疫计数器(中国安徽科大创新股份有限公司)。

1.1.2 动物 Wistar大鼠,雄性,离乳2周龄,体重30~40 g(由湖北省实验动物中心提供)。

1.1.3 绿茶茶多糖提取[4,5]绿茶由恩施自治州农

业科学院提供,茶叶→取样→磨碎(过40~50目筛)→温水浸提→沉淀剂沉淀(95%乙醇)→离心得沉淀物→无水乙醇、丙酮、无水乙醚交替搅拌洗涤2次→真空干燥→得粗茶多糖→称量(采用双道束原子荧光光谱法测定硒的含量为 1.9478μg/g)。

1.2 实验方法

1.2.1 糖尿病模型的建立[6]将离乳2周龄大鼠平衡喂养2周,禁食12 h后,经腹腔一次性注射四氧嘧啶,剂量为150 mg/kg bw,3 d后在禁食条件下尾静脉取血测血糖值、用糖尿试纸检测鼠尿,选择空腹血糖在12.00 mmol/L以上、尿糖呈强阳性(+++)的大鼠为糖尿病模型大鼠,正常对照组的空腹血糖值均在 6.00 mmol/L以下。

1.2.2 实验分组及处理 将大鼠分为6组(n=10),其中一组为正常对照组,其他糖尿病模型大鼠随机分为糖尿病模型组,阳性对照药(HB-419)组和茶多糖(TPS)低、中、高浓度剂量组。绿茶茶多糖灌胃剂量(100、300、500 mg/kg bw);阳性对照药组灌胃HB-419,给药剂量(2 mg/kg bw);正常对照组和糖尿病模型组同时灌胃等容量蒸馏水。各组每天给药一次,持续4周后终止实验,断头采血检测空腹血糖和酶活性的变化,并取其器官测定器官系数。

1.2.3 测定指标和方法 (1)血糖:采用葡萄糖氧化酶-过氧化酶法;(2)胰岛素(insulin,INS):采用放免法按说明书操作;(3)血清中氧自由基和酶:采用硫代巴比妥酸显色法检测丙二醛(malondialdehyde,MDA)含量,黄嘌呤氧化酶法测定超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD),二硫代二硝基苯甲酸法测定谷胱甘肽过氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px),严格按照试剂盒说明书操作比色测定;(4)肝葡萄糖激酶活性的测定参考[7,8]:实验结束后,迅速处死动物,摘取肝脏,用预冷的生理盐水冲洗除去血液,滤纸吸干称重,加9倍缓冲液,在低温(冰水)中用玻璃研磨器研磨制成10%的组织匀浆,高速离心取上清液冷冻保存待测;(5)器官系数计算参照楚晋等[9]的方法:器官系数=100ⅹ脏器湿重/动物体重。

1.3 数据分析

2 结果

2.1 对血糖的影响实验

在本实验室条件下,糖尿病模型大鼠在无任何干预措施的条件下病情呈进行性恶化,FBG水平逐渐升高,与对照组比较达极显著水平(P<0.01);采用绿茶茶多糖灌胃后,与糖尿病模型组比较各浓度剂量组在不同时期均呈现出明显降低FBG作用(P<0.05,P<0.01,表 1)

Tab.1 Effect of TPSon blood glucose of diabetic rats(±s,n=10)

Tab.1 Effect of TPSon blood glucose of diabetic rats(±s,n=10)

FBG:Fasting blood glucose;TPS:Tea polysaccharide**P<0.01 vs control group;#P<0.05,##P<0.01 vs diabetes group

Group Dosage(mg/kg bw)FBG(mmol/L)Before After 1 week After 2 weeks After 4 weeks Control 0 5.64±0.49 5.36±0.51 5.76±0.44 5.94±0.39 Diabetes 0 12.32±1.15 14.48±2.05** 16.75±2.16** 17.69±2.66**L-TPS 100 12.46±1.32 13.68±1.95 11.33±0.98## 9.61±1.01##M-TPS 300 12.87±1.18 13.01±2.01 10.64±1.02## 8.56±0.79##H-TPS 500 12.55±1.25 12.62±1.34# 9.65±0.95## 7.35±0.87##HB-419 2 12.62±1.35 12.11±2.04# 9.05±1.01## 6.85±0.95##

2.2 对糖尿病模型大鼠体质量和脾脏胸腺系数的影响

经过持续4周的实验观察,糖尿病模型大鼠体质量的增长速度较对照组明显变慢(P<0.01),且脾脏胸腺系数降低明显(P<0.01);与糖尿病模型组比较,绿茶茶多糖各剂量组大鼠体质量的增长速度明显变快,且脾脏胸腺系数上升明显(P<0.05,表 2)。

Tab.2 Effect of TPSon body weight,spleen and thymus index of diabetic ratsx±s,n=10)

Tab.2 Effect of TPSon body weight,spleen and thymus index of diabetic ratsx±s,n=10)

TPS:Tea polysaccharide**P<0.01 vs control group;#P<0.05,##P<0.01 vs diabetes group

Group Dosage(mg/kg bw)Spleen index Thymus index Control 0 76.21±2.16 141.90±10.23 0.422±0.031 0.098±0.018 Diabetes 0 75.09±4.84 103.56±14.04** 0.289±0.061** 0.061±0.014**L-TPS 100 74.98±5.08 123.62±10.12# 0.373±0.044# 0.087±0.019#M-TPS 300 75.97±4.83 131.03±9.97## 0.396±0.031## 0.096±0.018##H-TPS 500 75.59±6.01 131.56±10.75## 0.389±0.051# 0.095±0.019##HB-419 2 76.41±5.24 137.01±11.64## 0.387±0.053# 0.086±0.020 Body weight(g )Before After 4 weeks#

2.3 对糖尿病模型大鼠肝葡萄糖激酶活性和胰岛素的影响实验

与对照组比较,处于高糖状态下的肝细胞内肝葡萄糖激酶(glucokinase,GK)活力和INS的分泌明显下降(P<0.01),然而经过持续4周的灌胃绿茶茶多糖后,GK活性有明显的提高(P<0.01,表3),而INS虽有升高但不明显。

Tab.3 Effect of TPSon GK activity in livers and blood INS of diabetic rats(±s,n=10)

Tab.3 Effect of TPSon GK activity in livers and blood INS of diabetic rats(±s,n=10)

GK:Glucokinase;INS:Insulin;TPS:Tea polysaccharide**P<0.01 vs control group;#P<0.05,##P<0.01 vs diabetes group

Group Dosage(mg/kg bw) GK(U/ml) INS(μU/ml )Control 0 9.49±1.41 13.96±2.08 Diabetes 0 6.11±0.95** 9.17±1.31**L-TPS 100 8.14±0.95## 10.05±1.93 M-TPS 300 8.32±0.89## 10.08±1.79 H-TPS 500 8.49±0.81## 11.12±2.47 HB-419 2 7.68±1.14# 13.12±3.01##

2.4 对糖尿病模型大鼠机体抗氧化功能的影响

与对照组比较,糖尿病模型组血清中MDA含量显著增加、SOD及 GSH-Px活性明显降低(P<0.01);与糖尿病模型组比较,绿茶茶多糖低、中、高浓度剂量组均能不同程度的提高SOD及GSH-Px的活性,减少 MDA的含量(P<0.01,表 4)。

3 讨论

糖尿病是一种常见的内分泌代谢疾病,主要分为Ⅰ型和Ⅱ型糖尿病。前者由胰岛β细胞破坏而导致胰岛素绝对缺乏所引起,后者为胰岛素相对不足所致。有研究表明,茶多糖是α-葡萄糖苷酶和α-淀粉酶的弱抑制剂,同时降低兔小肠刷状缘囊泡的葡萄糖转运活性,从而能够通过延缓或减慢糖在肠道的消化和吸收来降低餐后高血糖[10]。其机理仍待进一步研究。本实验采用四氧嘧啶造模糖尿病大鼠,结果模型大鼠在无任何干预措施的条件下病情呈进行性恶化,空腹血糖显著升高,胰岛素明显降低,说明了模型的建立成功。血糖稳态是保证器官组织生理功能正常的关键,高血糖环境往往伴随肝、肾、脾等多种器官功能的减退。实验结果表明,绿茶茶多糖能够降低四氧嘧啶糖尿病模型大鼠的血糖,其作用机制主要体现在以下几个方面:

Tab.4 Effect of TPSMDA content and SOD,GSH-Px activity of diabuetic rats(¯x±s,n=10)

抗氧化能力强,对器官组织有保护作用。本实验结果显示:糖尿病模型大鼠体液中MDA含量明显升高,SOD、GSH-Px活性显著下降,这说明大鼠的器官组织生理功能在长期高糖环境中已受到损伤,经过灌胃绿茶茶多糖后,血清中MDA含量明显减少,SOD、GSH-Px活性显著升高。这充分表明了绿茶茶多糖可通过清除体内产生的过多自由基,提高机体抗氧化功能,对器官组织细胞功能的修复和保护起到重要作用。

增强机体免疫力。脾脏是各类免疫细胞居住的场所,也是对血源性抗原物质产生免疫应答的部位。胸腺是T细胞发育和建立细胞免疫的重要器官。一些免疫抑制剂可使其萎缩,免疫增强剂可使其增重。脾脏胸腺系数上升明显是机体免疫力增强的一个重要参数。

本实验还观察了大鼠肝脏葡萄糖激酶活性,进一步从酶学水平揭示茶多糖降糖的机制,结果表明,绿茶茶多糖有类似胰岛素的作用,能够激活葡萄糖激酶,增强肝葡萄糖激酶活性发挥降血糖作用。葡萄糖激酶是己糖激酶的同功酶,它主要存在于成熟肝细胞和胰岛β细胞中,肝葡萄糖激酶受胰岛素调节,不受血糖浓度的影响,肝脏是糖代谢的重要器官,在肝脏糖代谢过程中,葡萄糖激酶(GK)催化葡萄糖转变为6-磷酸葡萄糖,KG活性异常在糖代谢紊乱的发生发展中起重要作用,肝脏又是胰岛素敏感器官,在胰岛素作用下,肝脏糖异生和糖原合成增强,肝糖输出降低,从而维持血浆葡萄糖浓度的稳定。恩施绿茶资源丰富,且饮茶符合人们的饮食习惯,易于坚持,因此,恩施绿茶资源的利用有不可估量的价值。

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