速绫止血纱布结合封闭式负压引流对创面肉芽组织生成及愈合的影响
2013-01-29马亮梁杰莫自增吴志贤李响史玉仓
马亮 梁杰 莫自增 吴志贤 李响 史玉仓
速绫止血纱布结合封闭式负压引流对创面肉芽组织生成及愈合的影响
马亮 梁杰 莫自增 吴志贤 李响 史玉仓
目的观察速绫止血纱布和封闭负压引流技术相结合对实验动物创面肉芽组织生成及愈合的影响。方法选用80只健康、清洁SD大鼠随机分为对照组、速绫止血纱布组、封闭负压引流组、速绫止血纱布复合封闭负压引流组(简称复合组), 每组20只。于每只大鼠背部切除皮肤制作成创面模型。模型组创面自然愈合, 速绫止血纱布组以两层速绫止血纱布组敷于创面上;封闭负压引流组给予创面封闭负压引流治疗。速绫止血纱布复合封闭负压引流组:两层速绫止血纱布组敷于创面上, 后覆盖封闭负压引流治疗。每组20只动物随机分3批各20个创面, 第1、2、3个批次分别用于4、8、12d取材观察创面的肉芽生成率。第4个批次观察创面愈合时间。主要观察:①创面的肉芽生成率;②创面的愈合时间。结果①各组创面第4天愈合率比较差异无统计学意义(P>0.05)。4d以后复合组及封闭负压引流组愈合速度明显加快。第8天愈合率由高到低依次为复合组、封闭负压引流组、速绫止血纱布组、模型组, 组间比较差异有统计学意义(P<0.05)。各组愈合时间由快到慢排序同上。结论速绫止血纱布复合封闭负压引流技术可以更好地促进创面愈合。
止血纱布;封闭负压引流;创面愈合
创面不愈合一直是外科面临的问题, 随着近些年大量复合伤、大创面创伤增多和耐药菌株的不断出现, 这一问题显得尤为棘手。速绫止血纱布为可吸收性止血材料, 其成分为天然植物纤维经过可控氧化和生物技术处理而成的氧化纤维素丝织物, 在体内可被生物酶分解成单糖, 2~3周迅速吸收,无毒副作用, 无组织反应, 机体完全吸收。封闭负压引流技术是一种可促进创面愈合的治疗方法, 二者对创面的肉芽组织生长和愈合都有促进作用。基于以上理论, 本实验将速绫止血纱布复合封闭负压引流并观察其对大鼠创面愈合的影响并探讨其作用机制。
1 材料与方法
1.1 实验动物与材料 清洁级SD大鼠80只, 三个月龄, 体质量(300±20)g, 雌雄不限, 由广东医学院动物实验中心提供。采用随机对照动物实验。于2013年06月18日在广东医学院动物实验中心完成。速绫止血纱布由贵州金玖生物技术有限公司生产, 负压封闭引流材料由广州快康医疗器械有限公司生产的威通生产。
1.2 实验方法 在SD大鼠背部正中切除约5.0cm×3.0cm的皮肤作为创伤模型, 每只大鼠制作2个创面。按随机分组法分为4个处理组:模型对照组、速绫止血纱布组、封闭负压引流组、速绫止血纱布复合封闭负压引流组。每组20只动物随机分4批各10个创面, 分别用于4、 8、 12d计算愈合率并观察创面愈合时间。各组处理方法:模型对照组:创面形成后, 等待自然愈合。速绫止血纱布组:以面积与创面大小相等的速绫止血纱布纱布双层敷于创面上。封闭负压引流组:给予创面封闭负压引流治疗, 调节负压为125 mmHg[1],每天连续吸引8 h[2]。速绫止血纱布复合封闭负压引流组:给予创面封闭负压引流治疗, 负压吸引的时间、大小均与单纯封闭负压吸引组相同。以上处理方法均每2d换药一次,同时进行创面观察和计算创面的肉芽生成率。
1.3 创面计算方法 创面面积观察采用透明膜标记称量法[3],再转换为创面肉芽生成率。创面肉芽生成率=原始创面面积-当前新鲜创面面积/原始创面面积。
1.4 主要观察指标 ①各组SD大鼠第4、8、12d创面的肉芽生成率。②各组裸鼠创面的愈合时间。
1.5 统计学方法 实验参与者均经过正规培训, 实验结果采用盲法评估。实验结果采用统计软件SPSS 13.0进行统计分析。数据用(±s)来表示。两两比较用LSD检验。α=0.05。
2 结果
2.1 实验动物数量分析 实验动物死去一只, 造模创面肉芽组织生成的时间长短不一, 但是均有肉芽组织形成, 无肉芽组织不形成发生。若区组发生数据缺失则采用缺项估计补充。
各组大鼠第4、8、12天创面肉芽生成率比较见表1。
复合组创面肉芽组织生成率均比其余各组高, 但是各组创面肉芽组织生成率第4天比较差异无统计学意义(P>0.05)。
各组裸鼠愈合时间比较见表2。
表1 各组大鼠第4、8、12天创面肉芽生成率比较(±s, n=10)
表1 各组大鼠第4、8、12天创面肉芽生成率比较(±s, n=10)
分 组 第4天 第8天 第12天模型对照组 7.12±1.95 29.68±0.89 70.80±5.76速绫止血纱布组 7.33±1.52 33.19±1.53 78.71±4.52封闭负压引流组 8.18±1.09 46.76±1.72 85.12±5.85复合组 9.51±1.01 52.98±1.89 95.59±4.76
表2 各组裸鼠创面愈合时间比较(±s, n=10,d)
表2 各组裸鼠创面愈合时间比较(±s, n=10,d)
愈合时间模型对照组 16.98±1.02速绫止血纱布组 15.70±0.98封闭负压引流组 14.50±1.25复合组 13.08±0.97分 组
各组创面愈合时间以天计算, 复合组及封闭负压引流组愈合时间短于其他组(P<0.05);复合组愈合时间短于封闭负压引流组, 差异有统计学意义(P<0.05)。各组愈合时间由快到慢排序为:复合组、封闭负压引流组、速绫止血纱布组、模型组。
2.2 可能影响结果的偏倚因素分析 伤口换药对创面生长的影响;个别实验动物中途死亡, 造成实验数据丢失;实验动物数量偏少, 可能存在误差较大等情况发生。
3 讨论
速绫是一种可吸收性止血材料, 其成分为天然植物纤维经过可控氧化和生物技术处理精制而成的氧化纤维素丝织物, 在体内可被生物酶分解成单糖, 2~3周迅速吸收, 无毒副作用, 无组织反应, 机体完全吸收。血机理:产生大量负离子激活凝血系统;收缩血管, 为血小板提供粘着和聚集框架;吸收血液和渗液, 成胶状物, 紧密贴附于出血创面, 堵塞、封闭毛细血管末端和微淋巴管, 以减少渗出;防组织粘连;广谱杀菌[4,5]。
封闭负压引流技术是一种能够促进创面肉芽组织生成及愈合的物理疗法, 由德国的Fleischmann博士于等1992年发明的, 经过众多医疗工作者研究及多年临床实践表明:封闭负压引流能影响创面基质金属蛋白酶、胶原酶或纤溶酶等的平衡状态[6-11], 负压吸引能通过消除水肿, 提高创面微循环血流速度, 扩张微血管, 增加形成新的血管床并促进血管新生, 使创面局部血流灌注量增加, 促进肉芽组织生长[12-17]。对多种影响创面愈合的细胞因子具有调节作用, 减少炎症介质的分泌, 预防过度炎症反应的发生[18], 并能干预创面组织细胞的基因表达, 从而表现出较明显的减少创面组织坏死、促进肉芽组织增殖和创面愈合的功能[19-21]。本实验中发现,速绫止血纱布和封闭负压引流结合应用从实验结果来看, 早期可明显减少伤口的出血, 复合组创面肉芽组织生成均比其余各组高, 但是各组创面第4天愈合率比较差异无统计学意义(P>0.05), 推测可能与早期创面处于炎症激化高峰期有关。在创面愈合中期, 第四天以后, 复合组创面的肉芽生成率明显提高(P<0.05), 由实验结果各组愈合时间由快到慢排序为:复合组、封闭负压引流组、速绫止血纱布组、模型组, 可以说明速绫止血纱布有一定的促进创面肉芽组织生成及愈合的作用。
[1] Greene AK, Puder M, Roy R, et al.Microdeformational wound therapy: effects on angiogenesis and matrix metallopro-teinases in chronic wounds of 3debilitated patients.Ann Plast Surg, 2006,56(4): 418-422.
[2] Morykwas MJ, Argenta LC, Shelton-Brown EI, et al.Vacuumassisted closure: a new method for wound control and treatment:animal studies and basic foundation.Ann Plast Surg, 1997, 38(6):553-562.
[3] 郑富盛.细胞形态立体计量学.北京:北京医科大学中国协和医科大学联合出版社, 1990:241-247.
[4] 林道浙, 徐定银, 陈积贤.可溶性止血纱布在甲状腺手术中的应用.中华普外科手术学杂志(电子版), 2010, 4(2): 200-201.
[5] 丁炳谦.可溶性止血纱布在外伤性脑出血手术中的应用.河南实用神经疾病杂志, 2000, 3(5): 79.
[6] Ropke CD, da Silva VV, Kera CZ,et al.In vitro and in vivo inhibition of skin matrix metalloproteinases by Pothomorphe umbellata root extract.Photochem Photobiol, 2006,82(2):439-442.
[7] Xue M, Le NT, Jackson CJ.Targeting matrix metalloproteases toimprove cutaneous wound healing.Expert Opin Ther Targets,2006, 10(1): 143-155.
[8] Mwau ra B, Mahend ran B, Hynes N, et al.The impact of differentialexpression of extracellular matrix metalloproteinase inducer, matrix metalloproteinase-2, tissue inhibitor of matrix metalloproteinase-2and PDGF-AA on the chronicity of venous leg ulcers.Eur J Vasc Endovasc Surg, 2006, 31(3):306-310.
[9] 喻爱喜, 余国荣, 邓凯, 等.封闭负压吸引联合组织瓣移植治疗严重感染性骨外露.中华显微外科杂志, 2006, 29(3): 219-220.
[10] 胡恺轩, 章宏伟, 周芳, 等.两种负压治疗临床疗效比较.中华烧伤杂志, 2009, 25(4): 253-257.
[11] 李绍光, 刘智, 刘树清, 等.负压封闭引流(VSD)技术治疗四肢皮肤缺损伴感染创面.中国骨与关节外科, 2008, 1(4/5):200-204.
[12] Venturi ML, Attinger CE, Mesbahi AN, et al.Mechanisms and clinical applications of the vacuum-assisted closure (VAC) Device:a review.Am J Clin Dermatol, 2005, 6(3):185-194.
[13] Whelan C, Stewart J, Schwartz BF.Mechanics of wound healing and importance of Vacuum Assisted Closure in urology.J Urol, 2005,173(5): 1463-1470.
[14] Wackenfors A, Gustafsson R, Sjogren J, et al.Blood flow responses in the peristernal thoracic wall during vacuum-assisted closure therapy.Ann Thorac Surg, 2005, 79(5):1724-1730.
[15] 李跃军, 曹大勇, 陈绍宗.封闭负压引流技术对创面愈合过程纤溶酶原激活剂级联表达的影响.中华整形外科杂志, 2006,22(4): 306-309.
[16] J Morykwas MJ, Simpson J, Punger K, et al.V.A.C.Vacuum-assisted closure: state of basic research and physiologic foun-dation.PlastReconstr Surg, 2006, l17(7s):121S-126S.
[17] Baharestani M, Am jad I, Bookout K, et al.V.A.C.Therapy in the management of paediatric wounds clinical review and ex-perience.Int Wound J, 2009, 6(suppl 1): 1-26.
[18] 杨帆, 胡帛, 白祥军, 等.负压封闭引流对兔皮肤创面炎症细胞趋化和炎症因子分泌的影响.重庆医学, 2012,41(7): 686-688.
[19] 石冰,陈绍宗,段晓莉,等.封闭负压引流技术对人慢性创面创缘组织中c-fos表达的影响.实用美容整形外科杂志, 2002,13(6):330-332.
[20] 汤苏阳,陈绍宗,胡昭华,等.封闭负压引流技术对失感觉神经支配创伤愈合中Bcl-2与NGF/NGFmRNA表达的影响.中华整形外科杂志, 2004,20(2):139-142.
[21] 李金清,陈绍宗,付小兵,等.封闭负压引流对猪皮肤软组织爆炸伤感染创面肉芽组织生成的影响.解放军医学杂志,2004, 29(8):690-693.
Influence of surgical hem ostatic gauze p lus vacuum-assisted closure on the granulation tissue formation
and healthing
MA Liang, LIANG Jie, MO Zi-zeng, et al.Department of Plstic Surgery,Affiliated Hospital of Guangdong Medical College, Guangzhou 524001, China
Objective To study effect of surgical hemostatic gauze in combination with vacuumassisted closure on wound healing and granulation tissue of experimental animals.Methods Eighty healthy SD mouses were randomized into four groups: model group, surgical hemostatic gauze group,vacuum-assisted closure group, and sugical hemostatic gauze plus vacuum-assisted closure group(Abbreviations: composite group).Each group had twenty animals.Removal of skin on the back of each SD mouses were made into a wound model.The wounds of model group healed naturally, the wounds of the remaining groups were treated with surgical hemostatic gauze, vacuum-assisted closure, and surgical hemostatic gauze plus vacuum-assisted closure, respectively.Ten wounds of each group were randomized into four patches.On days 4, 8 and 12, the former three patches were used for observing the granulation tissue formation rate, while the fourth patch for observing the healing time.The granulation tissue formation rate, healing time.Results On day 4, there were no significant differences in the healing rate among different groups (P> 0.05).The healing speed of the vacuum-assisted closure group and the surgical hemostatic gauze plus vacuum-assisted closure group accelerated rapidly after four days.On day 8, thehealing rate ranged from high to low, as surgical hemostatic gauze plus vacuum-assisted closure group, vacuumassisted closure group, surgical hemostatic gauze group, and model group.The differences among different groups were significant (P<0.05).Each group healing time from fast to slow sort ibid.Conclusion Surgical hemostatic gauze in combination with vacuum-assisted closure can obviously promote wound healing.
Surgical hemostatic gauze;Vacuum-assisted closure;Wound healing
524000广东省湛江市广东医学院附属医院整形外科
梁杰