肺癌组织中14-3-3ζ的表达与上皮细胞间质转化的相关性研究
2012-08-05王琳琳于洪升蒋捍东
王琳琳,于洪升,蒋捍东,2
(1青岛大学医学院附属医院,山东青岛266003;2上海交通大学附属仁济医院)
近年研究发现,上皮细胞间质转化(EMT)在各种上皮细胞来源的恶性肿瘤侵袭转移过程中发挥了重要作用[1],是恶性肿瘤转移的早期事件。所以EMT相关因子的研究逐步成为热点,并有望为肿瘤靶向治疗提供新的依据。14-3-3蛋白是一个广泛表达的酸性蛋白家族,最初在脑脊液提取物中被发现,14-3-3蛋白的亚型与肿瘤的发生密切相关,并被作为潜在的肿瘤抑制基因或致瘤基因,近年来14-3-3ζ与肺癌的研究逐渐增多,但与EMT和肿瘤转移的关系研究很少,本研究采用免疫组化法检测14-3-3ζ与上皮性钙黏附素(E-cad)、波形蛋白(vimentin)在肺癌组织中的表达,并分析14-3-3ζ与E-cad、vimentin的相关性及其临床病理特征,以期揭示14-3-3ζ在EMT和肿瘤转移中的作用及其临床应用价值。
1 材料与方法
1.1 材料 收集青岛大学医学院附属医院2008~2011年手术切除的60例肺癌患者石蜡包埋组织(患者术前均未经过化疗和放疗),其中鳞癌34例,腺癌26例;高分化16例,中分化23例,低分化21例;淋巴结转移36例,无淋巴结转移24例。以35例肺癌患者癌旁正常肺组织作对照。鼠抗人E-cad和vimentin单克隆抗体及DAB显色试剂盒由北京中杉金桥生物有限公司提供。鼠抗人14-3-3ζ和craf单克隆抗体购自北京博奥森生物技术有限公司。
1.2 方法
1.2.1 检测方法 免疫组织化学染色:切片、组织切片进行预处理、阻断内源性过氧化物酶、抗原修复、滴加一抗、滴加通用型IGG抗体-HRP多聚体、应用DAB溶液显色。苏木静复染,常规脱水,透明,封片。结果判定:免疫组化染色以胞膜、胞质和胞核内出现棕黄色颗粒为阳性,按照染色强度与阳性细胞百分比的乘积评分:即0~2分(-),3~4分(+),5~7分(++),8~9分(+++)。参考 Sarrio等[2]方法,选择E-cad表达阴性同时vimentin表达阳性的病例,记为EMT(+)。
1.2.2 统计学方法 采用SPSS17.0统计软件,组间表达差异的分析采用χ2检验,各因子表达的相关性采用Pearson相关分析。P≤0.05为有统计学差异。
2 结果
2.1 E-cad、vimentin 在肺癌的表达 E-cad 阳性表达于细胞膜和(或)胞质上,vimentin表达在胞质上。见图1、2。肺癌中E-cad和vimentin的阳性表达率分别是 31.70%(19/60)、51.70%(31/60),正常肺组织分别是77.10%(27/35)、0(0/35)。肺癌组织与正常肺组织的E-cad及vimentin阳性表达比较有统计学差异(χ2值分别为 18.30、26.84,P 均 <0.01)。
图1 E-cad在肺癌组织中的表达(HE,×200)
图2 vimentin在肺癌组织的表达(HE,×200)
2.2 14-3-3ζ、c-raf在肺癌组织中的表达 肺癌组织中14-3-3ζ阳性表达在细胞质和膜上,c-raf阳性表达在细胞质中,镜下呈棕黄色颗粒。见图3、4。14-3-3ζ、c-raf在肺癌组织中的阳性表达率分别是45.00%(27/60)、30.00%(18/60),在正常肺组织分别为5.71%(2/35)、2.85%(1/35),肺癌组织中的14-3-3ζ、c-raf阳性表达明显高于正常肺组织(χ2值分别为16.09、10.18,P 均 <0.01)。
图3 14-3-3ζ在肺癌组织中的表达(HE,×200)
图4 c-raf在肺癌组织中的表达(HE,×200)
2.3 肺癌组织中 14-3-3ζ、c-raf、E-cad、vimentin 的表达与临床病理特征的关系 见表1。
表1 肺癌组织中14-3-3ζ、c-raf、E-cad、vimentin的表达与临床病理特征的关系(例)
2.4 肺癌组织中14-3-3ζ、c-raf的表达与EMT的相关性 EMT(+)组肺癌组织中14-3-3ζ、c-raf的阳性表达率分别是 79.20%(19/24)、54.20%(13/24),EMT(-)组肺癌组织中14-3-3ζ、c-raf的阳性表达率分别是 22.20%(8/36)、13.90%(5/36),即 14-3-3ζ、c-raf在EMT(+)组的阳性表达率明显高于EMT( -)组(χ2值分别为 18.87、11.12,r值分别为0.925、0.820,P 均 <0.01)。
2.5 肺癌组织中14-3-3ζ的表达与c-raf的相关性c-raf(+)组中14-3-3ζ的阳性表达率是72.20%(13/18),c-raf(-)组肺癌组织中14-3-3ζ的阳性表达率是 33.30%(14/42),即 c-raf(+)组 14-3-3ζ的阳性表达明显高于 c-raf(-)组(χ2=7.699,r=0.705,P <0.01)。提示14-3-3ζ与c-raf在肺癌组织中的异常表达存在相关性。
3 讨论
14-3-3蛋白是一个广泛表达的酸性蛋白家族,它的亚型与肿瘤的发生密切相关,并被作为潜在的肿瘤抑制基因或致瘤基因[3,4],因此,14-3-3 蛋白的不同亚型可以为抗癌治疗提供新的途径。14-3-3ζ是该家族中的一个亚型,有关14-3-3ζ与肺癌的关系已逐渐成为研究热点。Qi等[5]利用RT-PCR和Western blot检测到正常肺组织中14-3-3ζ的微量存在,而肺癌组织中表达增高。臧东钰等[6]研究发现,14-3-3ζ在正常肺组织中微量表达,在NSCLC中表达显著增多,且随着肺癌分化程度的降低,其阳性表达率逐渐增强。本实验发现,14-3-3ζ在正常肺组织中阳性表达率低于肺癌组织,同时高中分化组阳性表达率低于低分化组,提示14-3-3ζ的表达与肺癌的分化程度存在相关性,可能促进了肺癌的发生和发展。本研究中淋巴结转移阳性组14-3-3ζ的表达率高于淋巴结转移阴性组,与臧东钰等[6]结果一致,由此认为14-3-3ζ在癌细胞的侵袭和淋巴结转移中也发挥了至关重要作用。
EMT的特征主要是失去上皮细胞特性,表达间质细胞特点[7],表现为E-cad蛋白的下降,vimentin表达的增加,导致细胞运动力增强,增加肿瘤的侵袭性和转移性。EMT存在于人体多个生理和病理过程中,它的发生涉及到多个信号转导通路和复杂的分子机制,其中一条重要的通路是受体酪氨酸激酶ras/MAPK通路,丝氨酸/苏氨酸酶 c-raf信号作为ras的效应物,反作用于TGF-β的生长抑制和诱导凋亡,强化TGF-β的致侵袭效应,从而诱导MDCK细胞(Madin-Darby canine kidney,一种英国小猎犬的肾细胞)发生EMT。Huang等[8]在对前列腺癌的研究中发现此信号通路可通过TGF-β的介导,增强MMP-2的分泌,最终导致肿瘤细胞的侵袭。Janda等[9]的研究结果表明,c-raf可以减少E-cad的表达,降低细胞间黏附作用,促进EMT的发生。本研究也发现,EMT(+)组肺癌组织中c-raf的阳性表达高于EMT(-)组,我们推测c-raf作为ras的效应物在ras/MAPK通路调控EMT的过程中起着重要作用,促进了EMT的发生。
有研究表明,ras作为c-raf的活性刺激因子不能充分活化c-raf,需要14-3-3ζ等参与,14-3-3ζ作用下的c-raf在无活性与有活性形式间快速转变,14-3-3ζ蛋白的结合有助于靶蛋白活性调控信号的输入,并在维持c-raf高度催化活性中发挥重要作用,14-3-3ζ可能是c-raf和ras复合物形成的协同分子[10]。Petosa等[11]研究发现,14-3-3ζ蛋白通过与 c-raf结合调节受体酪氨酸激酶ras/MAPK信号通路,促进肿瘤转移。Matta等[12]研究发现,14-3-3ζ和EMT 标记蛋白β-catenin之间具有相关性,β-catenin可能是14-3-3ζ作用的一个靶点。本实验显示,14-3-3ζ的表达与c-raf存在相关性;14-3-3ζ在EMT(+)组的阳性表达率明显高于EMT(-)组,我们推测14-3-3ζ在EMT过程中发挥着重要作用,促进了EMT的发生,进而促进肿瘤的转移,受体酪氨酸激酶ras/MAPK信号通路可能是其调控EMT的一条途径,在此通路中c-raf可能是14-3-3ζ的一个作用靶点,所以14-3-3ζ的深入研究将有望为肺癌的诊断和治疗开辟一条新的途径。
[1]Sakurai H,Maeshima A,Watanabe S,et al.Grade of stromal invasion in small adenecarcinoma of the lung:histopathological minimal invasion and prognosis[J].Am J Surg Pathol,2004,28(2):198-206.
[2] SarrióD,Rodriguez-Pinilla SM,Hardisson D,et al.Epithelialmesenchymal transition in breast cancer relates to the basal-like phenol-type[J].Cancer Res,2008,68(4):989-997.
[3]Vercoutter-Edouart AS,Lemine J,LeBourhis X,et al.Proteomic analysis reveals that 14-3-3sigma is down-regulated in human breast cancer cells[J].Cancer Res,2001,61(1):76-80.
[4]Nomuar M,Shimizu S,Sugiyama T,et al.14-3-3 interacts directly with and negatively regulates proapoptotic Bax[J].J Bioi Chem,2003,278(3):2058-2065.
[5]Qi W,liu X,Qiao D,et al.Isoform-specific expression of 14-3-3 proteins in human lung cancer tissues[J].Int J cancer,2005,113(3):359-363.
[6]臧东钰,李晓明,张林,等.14-3-3ζ与β-连接素在人T1期非小细胞肺癌中的表达及意义[J].解剖学报,2009,40(5):826-829.
[7] Thiery JP.Epithelial-mesenchymal transitions in development and pathologies[J].Curr Opin Cell Biol,2003,15(6):740-746.
[8]Huang X,Chen S,Xu L,et al.Genistein inhibits p38 map kinase activation,matrix metalloproteinase type 2 and cell invasion in human prostate epithelial cells[J].Cancer Res,2005,65(8):3470-3478.
[9]Janda E,Nevolo M,Lehmann K,et al.Raf plus TGF beta-dependent EMT is initiated by endocytosis and lysosomal degradation of E-cadherin[J].Oncogene,2006,25(54):7117-7130.
[10]Thorson JA,Yu LW,Hsu AL,et al.14-3-3 proteins are required formaintenance of Raf-1 phosphorylation and kinase activity[J].Mol Cell Biol,1998,18(9):5229-5238.
[11] Petosa C,Masters SC,Bankston LA,et al.14-3-3zeta binds a phosphorylated Raf peptide and an unphosphorylated peptide via its conserved amphipathic groove[J].J Biol Chem,1998,273(26):16305-16310.
[12]Matta A,Bahadur S,Duggal R,et al.Over-expression of 14-3-3zeta is an early event in oral cancer[J].BMC Cancer,2007,7:169.