YB-1抑制三氧化二砷诱导的胃癌细胞自噬机制
2012-08-05龙璐璐许文林沈慧玲冷加燕
龙璐璐,许文林,沈慧玲,冷加燕
(江苏大学附属人民医院中心实验室,江苏镇江212002)
自噬是细胞的一种可调控的溶酶体降解过程,通过降解长寿命蛋白、部分细胞器等以实现自身代谢需要和细胞器的更新[1]。近年研究发现,肿瘤细胞的自噬和自噬性细胞死亡在一些治疗条件下可以被激活[2,3],在肿瘤的发生发展及治疗中的作用越来越受到关注。Y-box结合蛋白-1(YB-1)是Y-box结合蛋白家族成员之一,参与基因的转录翻译、DNA修复、细胞增殖与再生、药物的耐药和细胞应激反应等多种生物过程。本实验室前期研究发现小剂量的As2O3可以诱导肿瘤细胞自噬,YB-1可以抑制As2O3诱导的自噬[4]。为进一步探讨YB-1抑制自噬的分子机制,2011年3月~2011年12月,本研究应用As2O3模拟细胞损伤模型,利用 RNA干扰(RNAi)技术部分沉默或过表达人胃癌BGC-823细胞中的YB-1基因,观察 As2O3在BGC-823细胞自噬中的作用,并初步阐明其分子机制。
1 材料与方法
1.1 材料 人胃癌BGC-823细胞由本实验室保存。As2O3购自哈尔滨伊达药业。HA14-1购自美国Calbiochem公司。单丹磺酰戊二胺(MDC)购自Sigma公司。胎牛血清购自杭州四季青,人DMEM培养基购自GIBCO公司。RNA提取试剂盒购自上海生工公司,反转录试剂盒、qRT-PCR试剂盒、蛋白提取试剂盒购自TaKaRa公司。HRP标记的羊抗兔、鼠二抗均购自北京康为世纪生物公司。兔抗人YB-1、Bcl-2、Beclin1、LC3 抗体,鼠抗人 P62、actin 抗体,均购自Abcam公司。
1.2 方法
1.2.1 细胞培养、转染及分组 人胃癌BGC-823细胞以1×106接种在培养瓶中,用含有10% 胎牛血清DMEM培养基,37℃、5%CO2饱和湿度条件下培养。按照实验设计分组:空白对照(control)组、空质粒(HK)组、干扰质粒(siYB-1)组、空病毒(AdGFP)组、pAd1Easy/YB1腺病毒表达载体(AdYB-1)组,使用LipofectamineTM2000脂质体转染后24 h,鉴定转染效率。
1.2.2 HA14-1的制备及分组 HA14-1是Bcl-2的小分子配体,可与Bcl-2蛋白结合而降低其生物学活性。将该化合物以104μmol/L的浓度溶解于DMSO中,-70℃避光保存。根据实验设计将BGC-823细胞分为三组:AdGFP组、AdYB-1组、HA14-1组(AdYB-1转染后加入50μmol/L的HA14-1作用4 h)。
1.2.3 qRT-PCR检测Bcl-2和Beclin1的基因表达
Trizol法提取各组BGC-823细胞的总RNA,逆转录为cDNA,美国BIO-RAD荧光定量PCR仪扩增分析。Bcl-2基因上游引物:5'-GGAGGATTGTGGCCTTCTTTG-3',下 游 引 物:5'-GGTGCCGGTTCAGGTACTCA-3'。Beclin1基因上游引物:5'-ATCCTGGACCGTGTCACCATCCAGG-3',下游引物:5'-GTTGAGCTGAGTGTCCAGCTGG-3'。β-actin为内参,上游引物:5'-CTCGCGCTACTCTCTCTTTC-3',下游引物:5'-CATGTCTCGATCCCACTTAAC-3'。
1.2.4 MDC染色观察细胞自噬泡的聚集 BGC-823细胞以每孔5×104接种于24孔板中,按照实验分组。转染24 h后加入4μmol/L As2O3处理24 h,4%多聚甲醛固定,50μmol/L的MDC孵育。激光共聚焦显微镜下观察细胞自噬空泡的积聚。
1.2.5 Western blot检测 Beclin1、P62、LC3 蛋白表达 收集各组 BGC-823细胞,RIPA裂解细胞,12 000 r/min,4℃离心,SDS-PAGE分离蛋白,转移到PVDF膜上。1%BSA封闭 2 h。YB-1抗体(1∶200)、Bcl-2 抗 体 (1 ∶500)、Beclin1 抗 体(1∶800)、P62 抗体(1∶300)、LC3 抗体(1∶3 000)4℃孵育过夜。HRP标记羊抗兔二抗(1∶5 000)、羊抗鼠二抗(1∶5 000)孵育1 h。凝胶成像系统拍照分析。以β-actin为内参,以靶蛋白积分光密度(IOD)值与β-actin IOD值的比值反映靶蛋白相对水平。
1.2.6 统计学方法 采用SPSS13.0统计软件,数据均用x¯±s表示,多组间比较采用单因素方差分析,组间差异比较采用q检验。P≤0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 各组YB-1的表达 与HK组和AdGFP组相比,siYB-1组YB-1蛋白表达明显降低,AdYB-1组YB-1蛋白表达明显升高。见图1。
图1 转染siYB-1和AdYB-1后YB-1的表达
2.2 各组 Bcl-2、Beclin1基因表达水平比较 与AdGFP组和HK组相比,AdYB-1组Bcl-2/β-actin基因相对表达量明显增加(P<0.05),siYB-1组Bcl-2/β-actin表达降低(P<0.05)。见图2。各转染组Beclin1/β-actin基因相对表达量无统计学差异。
图2 qRT-PCR检测Bcl-2/β-actin基因相对表达量
2.3 各组 Bcl-2、Beclin1蛋白表达水平比较 与AdGFP组和HK组相比,Bcl-2蛋白表达在AdYB-1组升高,在siYB-1组降低;而 Beclin1蛋白表达在AdYB-1组明显降低,siYB-1组显著升高(P均 <0.01)。见图3A。自噬水平检测显示,AdYB-1组P62蛋白聚集增加,LC3Ⅱ/LC3Ⅰ降低(P <0.01),抑制了自噬;应用siYB-1干扰YB-1表达后,促进了自噬的发生。
2.4 HA14-1对YB-1抑制自噬的影响 MDC染色结果显示,与AdGFP组相比,AdYB-1组自噬泡聚集减少,而转染AdYB-1后加入HA14-1处理后,自噬泡重新聚集。Western blot检测结果显示,与AdGFP组相比,AdYB-1组Beclin1蛋白表达降低,P62蛋白聚集增加,LC3Ⅱ/LC3Ⅰ减少,自噬水平降低。转染AdYB-1并加入HA14-1后,Beclin1蛋白恢复表达,P62蛋白降解增加,LC3Ⅱ/LC3Ⅰ重新升高。见图3B。提示HA14-1可能通过抑制Bcl-2的活性、上调Beclin1的表达影响YB-1对As2O3诱导的BGC-823细胞自噬的活性。
图3 Western blot检测蛋白结果
3 讨论
自噬广泛存在于真核细胞的病理生理过程中,在维持细胞稳态和促进细胞生存方面起重要作用[5]。近年研究发现As2O3可诱导多种肿瘤细胞发生自噬及自噬性细胞死亡。本实验室的前期研究也发现As2O3可诱导BGC-823细胞自噬的发生。
YB-1是肿瘤细胞生存的一个正调控因子。YB-1的表达可以促进肿瘤细胞增殖,介导肿瘤细胞抗凋亡及产生耐药等[6]。但是有关YB-1抑制自噬的研究并未见报道,本实验室的前期研究首次揭示YB-1可以抑制As2O3诱导的肿瘤细胞自噬。提示YB-1作为一个癌基因和抗细胞死亡的分子,在肿瘤的进程中可能参与更广泛的病理过程,其抑制As2O3诱导的自噬的功能可能为肿瘤发生发展及治疗提供新的理论依据。本实验采用RNAi技术部分沉默或过表达YB-1,探讨YB-1抑制As2O3诱导的BGC-823细胞自噬的分子机制。
Beclin1是调节细胞自噬过程的关键基因之一,其机制主要是与Ⅲ型PI3K形成复合物,参与募集胞质中含有FYVE或PX基序的蛋白质,调节前自噬体的形成及自噬蛋白在自噬体膜上的定位过程[7]。Pattingre等[8]研究表明,抗凋亡蛋白 Bcl-2能够与Beclin1形成复合物,抑制Beclin1依赖的自噬。本研究发现Bcl-2与YB-1抑制As2O3诱导的BGC-823细胞自噬相关,并且加用Bcl-2抑制剂HA14-1使Bcl-2失活后,Beclin1表达下调,减弱了YB-1对自噬的抑制作用。提示YB-1对As2O3诱导的BGC-823细胞自噬的抑制作用可能是通过上调了Bcl-2的表达,从而抑制Beclin1而实现的。
[1]Paglin S,Hollister T,Delohery T,et al.A novel response of cancer cells to radiation involves autophagy and formation of acidic vesicles[J].Cancer Res,2001,61(2):439-444.
[2]Kanzawa T,Germano IM,Komata T,et al.Role of autophagy in temozolomode-induced cytotoxicity for malignant glioma cells[J].Cell Death Differ,2004,11(4):448-457.
[3]Edinger AL,Thompson CB.Death by design:apoptosis,necrosis and autophagy[J].Curr Opin Cell Biol,2004,16(6):663-669.
[4]冷加燕,许文林,沈慧玲,等.YB-1腺病毒载体的构建及其对乳腺癌MCF-7细胞耐药性的影响[J].江苏大学学报(医学版),2011,21(4):33-37.
[5] Lockwood TD,Minassian IA.Protein turnover and proliferation.Failure of SV-3T3 cell to increase lysosomal proteinases,increase protein degradation and crease net protein accumulation[J].Biochem J,1982,206(2):215-218.
[6]Uramoto H,Izumi H,Ise T,et al.p73 interacts with cMyc to regulate Y-box-binding proyein-1 expression[J].J Biol Chem,2002,277(35):31694-31702.
[7]Meijer AJ,Codogno P.Regulation and role of autophagy in mammalian cells[J].Int J Biochem Cell Biol,2004,36(12):2445-2462.
[8]Pattingre S,Tasssa A,Qu X,et al.Bcl-2 antiapoptotic proteins inhibit Beclin 1-dependent autophagy[J].Cell,2005,122(6):927-939.