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外源寡糖对奶山羊血清生化指标和抗氧化指标的影响

2012-06-06宇王利华孙国强程明汪文鑫张孝凯祁茹褚永康林英庭

动物营养学报 2012年2期
关键词:奶山羊寡糖饲粮

肖 宇王利华孙国强程 明汪文鑫张孝凯祁 茹褚永康林英庭*

(1.青岛农业大学动物科技学院,青岛 266109;2.青岛市畜牧兽医研究所,青岛 266100)

随着社会和经济的发展,人们对无公害动物源性产品(肉、蛋、奶类等)的需求日益迫切,其中如何解决抗药性、药物残留,改善畜禽产品品质等问题成为目前营养界研究的热点。寡糖作为抗生素替代品,不能被消化道内源酶消化,也不能被有害菌利用,却能够选择性地促进一种或几种消化道有益菌(如双歧杆菌、乳酸杆菌)的生长繁殖,从而增强动物机体的抵抗力。近年来国内外对果寡糖(FOS)、甘露寡糖(MOS)、异麦芽寡糖(IMO)、半乳甘露寡糖(GMOS)、壳聚糖等功能性寡糖替代抗生素对单胃动物和水生动物生长性能和血清生化指标影响的研究报道较多[1-4],寡糖对反刍动物血清生化指标的影响却鲜有报道。本研究探讨了奶山羊饲粮中添加不同寡糖对血清生化指标和抗氧化指标的影响,筛选和确定适宜于作为奶山羊饲料添加剂的寡糖种类,旨在为寡糖在奶山羊领域的合理利用提供理论依据。

1 材料与方法

1.1 试验材料

寡木糖(XOS),山东龙力生物科技股份有限公司提供,纯度为70%;IMO,保龄宝生物股份有限公司提供,纯度为90%;FOS,保龄宝生物股份有限公司提供,纯度为90%;GMOS,购于山东仁和生物有限公司,纯度为80%;MOS,购于武汉远程科技发展有限公司,纯度为50%。

1.2 试验动物及分组

选用体况良好、年龄相近、体重(32.80±2.45)kg的6月龄去势崂山奶山羊6只,采用分期分组试验设计,每期中5只羊饲喂以混合精料为基础,分别添加1%(以有效含量计)不同外源寡糖的试验饲粮,另外1只饲喂不添加寡糖的对照饲粮(CT)。试验共分4期,每期35 d,其中预试期7 d,正试期28 d。试验动物及分组见表1。

表1 试验动物及分组Table 1 Experimental animals and groups

1.3 混合精料组成及营养水平

试验混合精料组成及营养水平见表2。

表2 混合精料组成及营养水平(风干基础)Table 2 Composition and nutrient levels of mixed concentrate(air-dry basis) %

1.4 饲养管理

试验期间奶山羊单笼饲养,每日07:00和17:00分2次等量饲喂,先精后粗,精料425 g/d,粗料1 000 g/d(全株玉米青贮∶花生蔓为1∶2),精粗比约30∶70,自由饮水,各组间饲养管理完全一致。

1.5 测定指标与方法

1.5.1 血清抗氧化指标的测定

正试期第14、28天晨饲前,6只奶山羊分别静脉采血10 mL,37℃水浴锅静置1~2 h,3 500 r/min离心15 min,取上层血清于-80℃冰箱中保存。采用南京建成生物工程研究所试剂盒测定血清中总超氧化物歧化酶(T-SOD)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活性及丙二醛(MDA)含量。

1.5.2 血清生化指标的测定

正试期第28天晨饲前,6只奶山羊分别静脉采血10 mL,37℃水浴锅静置1~2 h,3 500 r/min离心15 min,取上层血清于-80℃冰箱中保存。采用OLYMPUS AU2700全自动生化分析仪测定血清中总蛋白(TP)、白蛋白(ALB)、球蛋白(GLB)、葡萄糖(GLU)、尿素氮(UN)、甘油三酯(TG)、总胆固醇(T-CHO)、低密度脂蛋白胆固醇(LDL-C)、高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)、钙(Ca)、磷(P)含量以及谷丙转氨酶(GPT)、谷草转氨酶(GOT)活性。

1.6 数据处理与统计分析

试验数据采用Excel软件整理,SPSS 17.0软件One-way ANOVA进行方差分析,LSD法进行组间差异显著性检验。试验数据以“平均值±标准差”表示。

2 结果

2.1 饲粮中不同寡糖对奶山羊抗氧化指标的影响

由表3可知,正试期第14天,各试验组的T-SOD和GSH-Px活性与对照组相比无显著差异(P>0.05);FOS组和GMOS组的MDA含量分别比对照组降低了 18.66%(P <0.05)和 21.53%(P<0.01)。正试期第28天,各组间 GSH-Px活性差异均不显著(P>0.05);FOS组、MOS组、GMOS组的MDA含量分别比对照组降低了25.00%(P <0.05)、26.22%(P <0.05)、30.49%(P<0.01);GMOS组的T-SOD活性比对照组提高 14.30%(P <0.05)。

表3 饲粮中不同寡糖对奶山羊抗氧化指标的影响Table 3 Effects of different dietary oligosaccharides on antioxidant indices of dairy goats

2.2 饲粮中不同寡糖对奶山羊血清生化指标的影响

由表4可知,饲粮中不同寡糖对奶山羊血清ALB、GLU、T-CHO、Ca含量和 GOT 活性影响不显著(P>0.05)。各试验组的TP和GLB含量都有提高的趋势,FOS组和GMOS组的TP含量分别比对照组提高了 7.69%(P <0.05)和 7.22%(P<0.05);FOS组、MOS组和 GMOS组的 GLB含量分别比对照组提高了7.24%(P<0.05)、7.49%(P <0.05)、9.12%(P <0.01)。饲粮中添加不同寡糖后,各试验组的UN、TG含量均有降低趋势,GMOS组分别比对照组降低了12.71%(P <0.05)和 19.05%(P <0.05)。FOS 组和GMOS组的LDL-C含量分别比对照组降低了21.95%(P <0.05)和 23.17%(P <0.05);GMOS组的HDL-C含量分别比对照组和XOS组提高了23.30%(P <0.05)和18.69%(P < 0.05)。MOS组和GMOS组的血清P含量分别比对照组提高了14.56%(P <0.05)和 17.09%(P <0.05)。MOS组和GMOS组的GPT活性分别比对照组降低11.76%(P <0.05)和12.75%(P <0.05)。

3 讨论

3.1 饲粮中不同寡糖对血清抗氧化指标的影响

抗氧化是机体免受自由基损伤的一种自我保护机制。自由基是一类非常活跃的化学物质,是具有不成对电子的原子或分子。自由基中最主要的是氧自由基,如果沉积在血管壁上,会使血管发生纤维性病变,导致动脉管硬化、高血压、心肌梗塞;沉积在脑细胞时,会引起神经官能不全[5]。

表4 饲粮中不同寡糖对奶山羊血清生化指标的影响Table 4 Effects of different dietary oligosaccharides on serum biochemical indices of dairy goats

超氧化物歧化酶(SOD)能够有效清除超氧阴离子自由基,可以催化氧自由基链中的第1个自由基·生成H2O2,从而阻止·启动的自由基连锁反应[6],其活性反映了机体清除氧自由基的能力。GSH-Px能够清除H2O2,并将脂质过氧化物ROOH还原成相应醇,使活性氧减少,从而减轻细胞膜多不饱和脂肪酸的过氧化作用,降低不饱和脂肪酸和脂类被氧化的机会及ROOH分解产物引起的细胞损伤[7]。由此看出,SOD和GSH-Px彼此之间相互协调共同完成机体的抗氧化功能。MDA是体内脂质过氧反应链中的终产物,其含量高低反映了机体脂质过氧化的程度及细胞膜过氧化的程度,间接反映细胞损伤的程度[8]。本试验结果显示,饲粮中添加寡糖可通过提高血清相关抗氧化物的活性来增强奶山羊的抗氧化功能,具体表现为FOS、MOS、GMOS可显著降低血清MDA含量,GMOS显著提高T-SOD活性。这与车向荣等[2]在仔猪上的试验,商常发等[9]在乳房炎奶牛中的试验结果一致。由此可见,添加寡糖能够在一定水平上改善奶山羊的抗氧化机能,增强机体抵抗力。

3.2 饲粮中不同寡糖对血清蛋白质代谢的影响

血清中TP、ALB、GLB和UN的含量变化反映了动物机体蛋白质的吸收和代谢情况。血清中TP由ALB与GLB组成,其含量升高是蛋白质代谢旺盛的体现,有利于机体对蛋白质的吸收和利用,从而降低饲料消耗[10]。本试验中,GMOS和FOS能够显著提高血清TP含量,说明寡糖对奶山羊的蛋白质沉积和合成具有一定的促进作用。血清GLB主要由机体免疫器官分泌,它能与外来的特异性抗原起免疫反应而保护机体,其含量的高低影响机体的免疫力,GMOS、MOS、FOS能够显著提高血清GLB含量,说明寡糖可以增强奶山羊的免疫力,与本试验中相关抗氧化指标的改善相一致。血清ALB也是机体蛋白质的一个来源,它能够增加血容量和维持血浆胶体渗透压,同时有运输和解毒的作用,其促使组织蛋白和血浆蛋白之间的相互转化,是衡量肝脏功能和机体营养状况的重要指标。奶山羊饲喂不同寡糖的饲粮后ALB含量变化不显著但均有升高趋势。血清UN反映了动物体内蛋白质代谢和氨基酸的平衡情况,当其含量下降时,说明机体蛋白质合成率较高、氨基酸平衡良好[11-12];当其含量过高时,则会使氮以尿素或气体的形式排出体外,降低饲料中氮的利用率。本试验中各试验组均降低了血清UN含量,说明添加不同种类寡糖可以改善奶山羊体内的蛋白质代谢和氨基酸平衡,加强动物对营养物质的吸收,提高饲料利用率,这与本试验中寡糖能够提高TP、ALB、GLB含量的结果相一致。

3.3 饲粮中不同寡糖对血清血糖和脂类代谢的影响

GLU主要指血液中的葡萄糖,它是所有动物体内不可缺少的营养物质,不仅是动物代谢(大脑神经系统、肌肉、脂肪组织、乳腺等)的唯一能源,而且还是合成脂肪代谢所必须的还原性辅酶(NADPH)以及合成乳糖和乳脂的前提物。本试验中各试验组GLU含量较对照组有升高趋势,可能是因为添加的寡糖经瘤胃微生物发酵产生的丙酸产量提高,而丙酸是糖异生的主要前体,有增强机体肝脏组织糖异生能力的作用,从而提高奶山羊GLU含量。

血清TG和总胆固醇(TC)含量反映了体内脂质代谢的状况,它们含量的上升往往引起肾脏、心血管和脑血管方面的疾病,就现代畜牧产业发展情况以及人类对畜产品的需求来看,如何降低机体脂肪和胆固醇的含量成为目前畜禽生产亟待解决的问题。胡彩虹等[13]研究表明,肉仔鸡饲粮中添加 FOS可以增加血清 HDL-C含量,0.6%和0.8%FOS可以显著降低血清TC、LDL-C含量和LDL-C/HDL-C值,0.8%FOS可以显著降低血清极低密度脂蛋白胆固醇(VLDL-C)含量。商常发等[14]连续饲喂奶牛6 g/d的壳聚糖3~5周时,试验组奶牛血清胆固醇含量分别比对照组显著降低了 21.24%、21.82%和 28.96%,并且各组胆固醇含量有随饲喂壳聚糖时间的增加而逐渐下降的趋势。孙茂红等[15]研究表明,600 mg/d壳聚糖可显著降低犊牛血清TC含量,并有降低TG含量的趋势。上述研究与本试验结果基本一致,分析其作用机理可能有以下几点:1)功能性寡糖不易被动物消化吸收,属水溶性膳食纤维,具有膳食纤维的部分生理功能[16],通过结合、黏附等作用调节机体的脂类代谢,从而降低血脂和胆固醇,改善血糖生成;2)寡糖可以减少肝脏分泌的低密度脂蛋白和极低密度脂蛋白,并降低脂肪酸合成酶的活性及其基因表达[17];3)在寡糖产生的挥发性脂肪酸中,丙酸是肝脏糖、脂、胆固醇合成过程中多种酶的抑制剂,长期服用可影响酶活性而调节糖、脂、胆固醇代谢[18];4)寡糖能促进双歧杆菌等有益菌的增殖,而双歧杆菌、乳酸杆菌对胆汁盐有同化和共沉积作用,降低肠道胆汁酸浓度,增加胆汁酸和胆固醇在粪中的排出量,同时胆汁酸浓度的降低导致肠道内脂肪酶的活性下降,使饲料中脂肪的乳化分解减弱,吸收减少[13,19]。

3.4 饲粮中不同寡糖对血清Ca、P的影响

本试验结果表明,不同寡糖有提高血清Ca含量的趋势,GMOS和MOS显著提高了奶山羊的血清P含量。分析以上结果认为:一方面可能因为寡糖经细菌发酵产生有机酸,如乙酸、丙酸和丁酸,从而降低消化道pH,增强肠道溶解不溶性Ca盐、镁(Mg)盐的能力,从而促进 Ca、P、Mg等离子的吸收;另一方面,Ohta等[20]报道,大肠中 Ca的吸收率与Ca结合蛋白的含量呈正相关,小肠中Ca的吸收与Ca结合蛋白含量呈负相关,补充FOS后增加了大肠中而减少了小肠中Ca结合蛋白的含量,所以FOS可能通过转细胞途径促使大肠中Ca离子的吸收。肖明松等[21]在中华幼鳖饲料中添加200、400、1 000 mg/kg FOS和糖萜素,结果发现,随着饲料中FOS和糖萜素水平的提高,Ca、P的表观消化率显著提高,而粪便中氮、P、Ca的含量显著降低。黄纪明等[22]研究表明,IMO能够提高大鼠在模拟失重状态下对Ca的吸收,提高其血清骨钙素含量,从而促进其骨骼钙化。李晓丽等[10]报道0.9%FOS能显著提高21日龄固始鸡血清钙含量。目前有关寡糖对动物血清矿物质代谢的研究主要集中在单胃动物上,对反刍动物矿物质代谢的影响及作用机理鲜有报道,仍有待于进一步研究。

3.5 饲粮中不同寡糖对血清GPT、GOT活性的影响

GPT和GOT广泛存在于动物肝细胞内,其活性变化是反映肝细胞和心脏细胞受损的2个重要指标。正常情况下,GPT和GOT活性是相对稳定的,当心脏和肝脏组织细胞发生炎症、坏死、中毒等,造成细胞受损或在热冷应激状态下时,转氨酶便会释放到血液里,使血清转氨酶活性升高[23-24]。本试验中,各试验组血清 GOT 活性与对照组相比有降低趋势,MOS组和GMOS组血清GPT活性显著低于对照组。由此可以说明寡糖对奶山羊肝脏和心脏无损害,这为寡糖在生产中的应用提供了依据。

4 结论

①FOS、MOS和GMOS显著降低奶山羊血清MDA含量,GMOS显著提高T-SOD活性。

②FOS显著提高TP和GLB含量,显著降低LDL-C含量;MOS显著提高GLB和P含量,显著降低GPT活性;GMOS显著提高TP、GLB、HDL-C和P含量,显著降低UN、TG、LDL-C含量和GPT活性。

③ 奶山羊饲粮中添加的寡糖种类有FOS、MOS和GMOS,其中GMOS为首选。

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