植物Na+/H+逆向转运蛋白研究进展
2012-05-09杜利霞董宽虎朱慧森
杜利霞,董宽虎,朱慧森
(山西农业大学 动物科技学院,山西 太谷 030801)
Na+/H+逆向转运蛋白是细菌、酵母、藻类、动物和高等植物的膜系统上普遍存在的一种转运蛋白,参与细胞质内的pH、Na+浓度调节及细胞体积变化等生命活动[1,2]。在 GenBank中已经注册的Na+/H+逆向转运蛋白基因序列已经达到400多个,氨基酸序列达236个[3]。近年来,Na+/H+逆向转运蛋白基因以及该基因表达活性的调节机制,蛋白的结构功能等的研究受到学术界的广泛关注,特别是随着研究的不断深入,发现该蛋白在植物耐盐性方面起重要作用。仅从Na+/H+逆向转运蛋白的结构特点、生理功能及其与植物耐盐性关系方面的研究进展进行论述。
1 Na+/H+逆向转运蛋白的分类
1.1 质膜Na+/H+逆向转运蛋白
植物Na+/H+逆向转运蛋白活性首次在大麦中发现[4],并定位于质膜,质膜 Na+/H+逆向转运蛋白主要与植物对Na+的外排有关,是植物抗拒盐离子毒害的首个屏障。
在酵母中首次克隆了质膜Na+/H+逆向转运蛋白基因(SOS1)[5]。植物质膜Na+/H+逆向转运蛋白基因是Shi等[6]2000年首次从拟南芥(Arabidopsis thaliana)中克隆到,植物中的SOS1定位于叶和根的质膜上,分子量为127kDa。在SOS1和其他质膜Na+/H+逆向转运蛋白氨基酸序列中,均存在一个非常保守的Na+结合区,没有发现氨氯吡咪(Na+通道阻断物)结合位点[7,8]。其 N末端为一个疏水结构,可能由10~12个跨膜结构域组成,跨膜区和微生物、动物的Na+/H+逆向转运蛋白序列类似,SOS1序列另一个特征是它有个长的亲水尾部,将近700个氨基酸,尾部面向细胞质,就有更多机会跟那些调控逆向转运蛋白活性的诸多蛋白相互作用,以此达到调节Na+/H+运输,适应盐环境的目的[7,8]。Shi等[6]利用图位克隆策略克隆到的质膜Na+/H+逆向转运蛋白SOS1基因的研究发现,该基因位于拟南芥的第2染色体上,具有22个内含子和23个外显子,编码1 146个氨基酸。
已经克隆的植物质膜Na+/H+逆向转运蛋白基因(表1)。在克隆质膜Na+/H+逆向转运蛋白基因过程中,研究者发现绝大多数高等植物的质膜Na+/H+逆向转运蛋白均有单基因编码[10,11]。目前仅在海草(Cymodocea nodosa)[12]和昆诺阿藜(Chenopodium quinoa)[7]中分别克隆到2个编码质膜Na+/H+逆向转运蛋白的基因。可见,大多数植物的质膜Na+/H+逆向转运蛋白可能是一个单基因家族。
1.2 液泡膜Na+/H+逆向转运蛋白
液泡膜Na+/H+逆向转运活性首次被发现是在甜菜根部贮藏组织的液泡膜上[13],之后,许多具有液泡膜Na+/H+交换活性的植物陆续被发现。Nass等[14]在筛选酵母cnb1突变体的抑制子时,发现了1个与耐盐性有关的新基因NHX1,它编码Na+/H+逆向转运蛋白,定位于液泡膜上负责将Na+区隔化入液泡。将Na+的区隔化入液泡,是酵母及植物降低细胞质内Na+水平的另一途径,一方面减少了Na+在细胞质内对细胞器的毒害作用,另一方面也降低了植物细胞的渗透势,有利于植物在高盐低渗的环境下吸收水分,维持植物的生长。
表1 克隆的植物质膜Na+/H+逆向转运蛋白基因Table 1 The plasma membrane Na+/H+antiporters from some plants
Sardet等[15]完成了第1个液泡膜 Na+/H+逆向转运蛋白(NHE)的分子克隆,其氨基酸序列的亲水性图谱显示Na+/H+逆向转运蛋白的N末端结构域是由大约500个氨基酸形成的12个跨膜片段组成,这一区域对Na+/H+逆向转运蛋白的底物、Na+的竞争性抑制剂氨氯吡咪及其衍生物敏感,是负责转运的区域;与之相连的C末端结构域由大约300个氨基酸组成,位于细胞质一侧,此结构域内含有多个蛋白激酶作用位点,能够与钙调素结合,参与多种信号反应,是调节活性的区域。酵母液泡膜上的Na+/H+逆向转运蛋白(NHX1)与NHE家族类似,也是内在蛋白,N末端结构域含有12个跨膜的片段,由633个氨基酸组成[14]。拟南芥的Na+/H+逆向转运蛋白(AtNHX)与酵母的NHX1以及人的NHE6结构相似,由538个氨基酸组成[16]。拟南芥液泡膜Na+/H+逆向转运蛋白可以分为9个跨膜结构域和一个亲水C端结构域;跨膜区为疏水,呈螺旋状,含有Na+结合的重要残基。这些区域含有阳离子运输的结构,其中的3个疏水区为非跨膜结构,而与液泡膜显示出一定的关联。其N端处于细胞质中,而几乎整个的C端亲水区处于液泡膜内[17]。
表2 已克隆的一些植物液泡膜Na+/H+逆向转运蛋白基因Table 2 The tonoplast membrane Na+/H+antiporters from some plants
2 Na+/H+逆向转运蛋白的功能
2.1 Na+的外排
Na+从土壤向根中的单向运输有一个重要特点,就是高速。尽管Na+的内流速率很高,但根部并没有快速积累Na+。而且在盐渍环境中,随时间的延长,根部的Na+含量变化不大,但地上部分的Na+含量却趋向于升高,但速度很慢,这暗示穿过质膜的Na+外流量很大[18]。Na+外排是避免Na+在细胞质中积累的一种直接途径。植物将Na+排出细胞外时需逆着电化学势梯度,是一个主动运输过程。在高等植物中,Na+的外排是通过质膜Na+/H+逆向转运蛋白实现,且质膜Na+/H+逆向转运蛋白的基因是高等植物中唯一具备将Na+排到细胞外功能的离子平衡调节基因[19]。质膜 H+-ATPase(P-ATPase)用水解ATP产生的能量将H+从细胞质中泵出细胞,产生跨质膜的 H+电化学势梯度,提供能量,从而驱动质膜上的Na+/H+逆向转运蛋白,使H+顺其电化学势进入细胞,Na+则逆电化学势排出细胞[20]。这一点已经得到Vitart等的证实[21]。
2.2 Na+区隔化
无论是盐生植物还是非盐生植物的细胞质中酶对Na+都非常敏感。为了保持胞质内Na+的非毒性水平,植物细胞除了将胞质中的Na+排出细胞以外,另一个途径就是将细胞质中的Na+区隔化入液泡。Na+区隔化至液泡中后,一方面降低了胞质中的Na+浓度,避免胞质中过高Na+对生理生化代谢的干扰;另一方面还可降低植物细胞水势,促进植物从外界吸水,从而有利于植物在盐渍化土壤上的生存。Na+进入液泡是通过液泡膜上的 Na+/H+逆向转运体完成[22,23]。液泡膜上的Na+/H+逆向转运蛋白行使功能需要依赖于液泡膜上的H+-PPase和H+-ATPase所产生的跨膜质子电化学势梯度为驱动力,将胞质Na+区隔化入液泡中。这意味着通过增大液泡膜质子泵基因表达来增大H+跨膜梯度,可以为液泡膜Na+/H+逆向转运蛋白介导Na+/H+交换提供更强大的驱动力,这样就有可能将细胞质中过多的Na+区隔化到液泡内腔中,增强细胞的耐盐性。该观点已由Li等[24]证实,研究过量表达盐地碱蓬 Na+/H+逆向转运蛋白基因SsNHX1和拟南芥液泡膜焦磷酸酶基因AVP1的拟南芥植株比野生型拟南芥植株有更强的抗盐能力。从而证明,盐胁迫下液泡膜上的Na+/H+逆向转运蛋白、H+-PPase和 H+-ATPase三者需要协调工作,才能最有效的将细胞质中过多的Na+区隔化入液泡,这样,Na+含量可降低到无毒害水平,从而增加植株的耐盐性。
2.3 调节pH值
SOS1外排Na+的同时,将细胞外的H+转运至胞质中,使细胞质酸化,从而有利于细胞质中代谢活动的正常进行[25,26]。SOS1的 Na+/H+转运活性受到抑制时(如SOS1突变),拟南芥根部H+内流受到抑制,细胞质发生碱化,pH值显著升高[27]。由此可见,质膜Na+/H+逆向转运蛋白具有调控细胞pH值的功能[28]。Na+/H+逆向转运蛋白影响细胞质或细胞器pH的变化,同时也影响细胞生长对环境pH的要求。如野生型拟南芥的细胞质pH约为7.0,但chx2321突变株则为7.4,突变株在pH 4.0的环境下较pH 7.0的环境中生长良好[29]。啤酒酵母在碱性条件下,利用质膜Na+-ATP酶将Na+泵出胞外,但在酸性环境下则是利用Na+/H+逆向转运体将Na+排出细胞。可见,Na+/H+逆向转运蛋白参与了细胞质内pH的调节。
3 Na+/H+逆向转运蛋白与耐盐性的关系
目前酵母和高等植物的Na+/H+逆向转运蛋白倍受重视,Na+通过Na+/H+的逆向转运在液泡中积累或排除细胞质外是植物耐盐性的重要机制[30,31],是盐生植物和耐盐甜土植物的主要特征[32,33]。甜土植物体内不存在Na+/H+逆向转运蛋白基因,有无盐处理都不显示Na+/H+逆向转运活性;耐盐的甜土植物通过NaCl胁迫诱导出Na+/H+逆向转运活性:如75mmol/L NaCl和150mmol/L NaCl处理向日葵,其根部液泡膜微囊上的Na+/H+逆向转运蛋白对Na+的 Km 分 别 为 64mmol/L 和 8mmol/L,而Vmax不变,说明盐处理没有改变Na+/H+逆向转运蛋白的数量,只是Na+激活了已经存在的Na+/H+逆向转运蛋白[34];盐生植物Na+/H+逆向转运活性是结构性的,无盐条件下Na+/H+逆向转运活性较低,盐处理后由于Na+/H+逆向转运蛋白的合成增加,其活性也增加,所以说Na+/H+逆向转运蛋白的有无及其活性高低与植物的耐盐性密切相关。
土壤盐渍化是农业生产面临的最严重的非生物逆境之一,工程措施解决盐渍化的可能性甚小,因而培育耐盐的作物品种是未来农业发展的有效途径。对于植物耐盐工程而言,获得关键的耐盐基因尤为重要,Na+/H+逆向转运蛋白在植物抵御盐胁迫中发挥着重要作用,这类蛋白可以维持Na+在植物体内的稳态,从而减轻过多的Na+对细胞造成的毒害。随着人们对植物耐盐性机理的进一步了解和分子技术的提高,对该基因分离、克隆,并转移到非抗盐的农作物中,对与传统的育种方法结合,会得到大量的抗盐性植物新品种改良盐碱地,经济效益可观,应用前景广阔。
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