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薰衣草离体培养技术研究

2012-04-29苏琛

湖北农业科学 2012年3期
关键词:薰衣草培养基

摘要:以薰衣草(Lavandula angustifolia)带芽茎段或顶芽为外植体,探讨不同激素种类与水平等对其愈伤诱导、不定芽增殖与不定根形成的影响,并筛选了薰衣草试管苗过渡移栽的适宜基质。结果表明薰衣草离体培养适宜的培养基分别为,不定芽启动培养基,MS+BA 1.0~2.0 mg/L+蔗糖30 g/L+琼脂6.5 g/L;继代增殖培养基,MS+BA 1.0~2.0 mg/L+IBA 0.25 mg/L+蔗糖30 g/L+琼脂6.5 g/L;生根培养基,White+IBA 0.4 mg/L+蔗糖20 g/L+琼脂6.5 g/L或White+NAA 0.8 mg/L+蔗糖20 g/L+琼脂6.5 g/L。以等体积的泥炭与珍珠岩混合后作为基质驯苗,幼苗成活率可达96.9%。

关键词:薰衣草(Lavandula angustifolia);离体培养;培养基

中图分类号:S573+.9;Q945.51文献标识码:A文章编号:0439-8114(2012)03-0623-03

Study on in vitro Cultivation of Lavandula angustifolia

SU Chen

(Xiangfan Vocational and Technical College, Xiangyang 441021,Hubei,China)

Abstract: Using stem or tip bud of Lavandula angustifolia as the explant, the effects of external hormone in medium on inducement of callus, multiplication of adventitious buds, and formation of adventitious roots were studied; And suitable ground substance for transplantation of L. angustifolia seedling was screened out. The results showed that medium for callus inducement should better be MS+BA 1.0~2.0 mg/L+ sucrose 30g/L+ agar 6.5 g/L. MS+BA 1.0~2.0 mg/L+IBA 0.25 mg/L+sucrose 30 g/L+ agar 6.5 g/L was good for multiplication of adventitious buds. And White+IBA 0.4 mg/L+ sucrose 20 g/L+ agar 6.5 g/L or White+ NAA 0.8 mg/L+ sucrose 20 g/L+ agar 6.5 g/L was suitable for adventitious roots formation. Using mixed peat and vermiculite with equal volume as transplantation ground substance was contributory to the growth of seedling as the survival rate could reach 96.9%

Key words: Lavandula angustifolia; in vitro cultutivation; medium

薰衣草(Lavandula angustifolia)为唇形科薰衣草属多年生植物,用途广泛,其干燥花在医药上可作为镇静、驱风、利尿、兴奋、强壮药,提取的精油可作为高级香水、香皂、洗涤用品的香料,近年来作为园林观赏植物受到广泛关注,极具开发利用前景[1-3]。但我国栽培薰衣草品种主要依靠从国外引种,且种子萌芽率低,给薰衣草生产快速发展带来困难。目前薰衣草离体培养与植株再生技术的研究已有少量报道[4-8],本试验以法国选育的薰衣草品种为材料,在已有的薰衣草离体培养技术的基础上,进一步探讨建立薰衣草植株再生体系进行无性快繁的技术,为实现薰衣草优良品种种苗规模化育苗奠定技术基础。

1材料与方法

1.1材料

薰衣草种子为法国进口,种植于襄樊职业技术学院试验基地,于2009年4月从薰衣草母株上采取生长健壮的带芽茎段作为外植体。

1.2方法

1.2.1外植体表面灭菌将采取的带芽茎段带回实验室,去叶并剪切成3~4 cm长的茎段,用饱和洗涤液浸泡5~10 min,流水冲洗20~30 min,在超净工作台上用75%的乙醇浸泡30 s,再用0.1%的HgCl2浸泡6~7 min,最后用无菌水冲洗3~4次,每次1~2 min,用无菌纸吸干水分,以备接种。

1.2.2启动培养取已表面灭菌的材料,切割成1~2 cm长的带1芽茎段,接种于启动培养基上,以获得无菌材料,35 d后统计萌芽率。启动培养基以MS为基本培养基,添加不同水平的BA(0.1、0.5、1.0、2.0 mg/L)。

1.2.3继代增殖培养启动培养中获得的无菌材料切成长约2 cm的带1芽茎段,接种于增殖培养基中,增殖培养基以MS为基本培养基,添加不同水平的BA(0.1、0.5、1.0、2.0、3.0 mg/L)和不同水平的IBA(0.10、0.25、0.50 mg/L)组合,共15个处理。30 d后统计增殖率,以筛选适宜的增殖培养基。

1.2.4生根培养将丛芽分割成2~3 cm高带3~4叶的单芽,接种于诱导生根培养基中,生根培养基以White为基本培养基,添加不同水平的IBA(0.1、0.4、0.8 mg/L)或不同的水平NAA(0.1、0.4、0.8 mg/L),并以White为对照,共7个处理。25 d后统计生根率,以筛选适宜的生根培养基。

以上启动培养基、增殖培养基中添加蔗糖30 g/L,生根培养基中添加蔗糖20 g/L,3种培养基均添加琼脂6.5 g/L、pH为5.8~6.2;高温高压湿热灭菌20 min。培养条件均为:光照强度1 500~2 000 lx,温度(23±1)℃,光照时间13 h/d。

1.2.5试管苗过渡移栽当试管苗不定根长0.8~1.0 cm,苗高3~4 cm时,从培养瓶中取出,洗净基部培养基,用600~800倍多菌灵稀释液浸泡基部2~3 min(药浴)后,种植于不同基质中进行过渡移栽,同时采取适度降温、遮光、增湿等技术措施,以提高试管苗过渡移栽成活率。过渡移栽基质设泥炭、泥炭与珍珠岩等体积混合、蛭石、珍珠岩等4个处理,25 d后统计成活率。

2结果与分析

2.1培养基中BA浓度对薰衣草愈伤与腋芽萌动的影响

带芽茎段接种于启动培养基上,5~7 d时腋芽始萌发,30~35 d时部分形成丛生芽。试验结果(表1)表明,腋芽萌发率有随启动培养基中BA浓度的提高而升高的趋势。在BA浓度为2.0 mg/L时,腋芽萌发率最高,不定芽数量多;在BA浓度较低时,不定芽数量少,但芽健壮、长势旺,综合两方面因素,薰衣草启动培养以MS培养基添加BA 1.0~2.0 mg/L的效果最好。

2.2激素种类与水平对薰衣草不定芽增殖的影响

带芽茎段接种于继代增殖培养基上,3~5 d后芽陆续萌发,25~35 d时再次形成不定芽丛。试验结果(表2)表明,继代增殖培养基中添加的BA与IBA水平不同,芽的增殖率与长势存在显著差异。增殖率与BA浓度密切相关,在试验浓度范围内,增殖率先随BA浓度的升高呈升高趋势,但BA浓度过高时,增殖率有所下降,且芽的长势减弱。后续试验也表明,BA浓度为3.0 mg/L时,随继代次数增加,不定芽出现玻璃化现象,不利于后期成苗。增殖率与IBA浓度亦表现出一定的相关性,在试验浓度范围内,IBA浓度为0.25 mg/L时增殖率最高。因此,薰衣草不定芽增殖培养中,MS培养基添加BA 1.0~2.0 mg/L和IBA 0.25 mg/L增殖效果好,丛芽壮。

2.3激素种类与水平对薰衣草不定根形成的影响

单芽接种于生根培养基上,7~10 d时切口处出现白色根状突起,试验结果(表3)表明,White添加IBA 0.4 mg/L或NAA 0.8 mg/L时生根率较高,但添加NAA 0.8 mg/L时根稍壮。

2.4不同基质对薰衣草试管苗过渡移栽成活率的影响

用等体积的泥炭与珍珠岩混合后做基质,试管苗生长快,过渡移栽成活率可达96.9%,苗质优良;而以蛭石做基质,试管苗生长缓慢,且过渡移栽成活率最低,为82.0%(表4)。此外,移栽试验表明,薰衣草试管苗苗龄20~25 d,根长0.8~1.0 cm时,试管苗生理活性旺,根吸收能力强,且此时期移栽不易伤根,成活率高。

3结论

本试验结果表明,薰衣草离体培养适宜的培养基分别为:不定芽启动培养基MS+BA 1.0~2.0 mg/L+蔗糖30 g/L+琼脂6.5 g/L;继代增殖培养基,MS+BA 1.0~2.0 mg/L+IBA 0.25 mg/L +蔗糖30 g/L+琼脂6.5 g/L;不定根分化培养基,White+IBA 0.4 mg/L+蔗糖20 g/L+琼脂6.5 g/L或White+NAA 0.8 mg/L+蔗糖20 g/L+琼脂6.5 g/L;以等体积的泥炭与珍珠岩混合后作为基质驯苗,幼苗成活率可达96.9%。

参考文献:

[1] 陈和平,周贺新,贺瑞振,等. 薰衣草的研究进展[J]. 农垦医学,2005,27(2):142-145..

[2] 刘忠军,刘虹,热西达,等. 薰衣草的引种栽培及应用研究[J]. 新疆农业科技,2005(2):44-45.

[3] 韩继龙. 薰衣草栽培技术[J]. 现代园艺, 2010(6):38-39.

[4] 王远会,项华,何叶,等. 薰衣草栽培管理技术[J]. 南方农业(园林花卉版),2009(5):24-25.

[5] 廖苏梅,周巍,徐程. 薰衣草的组织培养[J]. 植物生理学通讯,2004,40(3):336-336.

[6] 许耀祖,王晓军,赵民安,等. 薰衣草高频植株再生系统的建立[J]. 西南农业大学学报(自然科学版),2005,27(3):344-349.

[7] 许耀祖,王晓军,赵民安,等. 几种生物学因子对薰衣草胚性愈伤组织悬浮培养生长的影响[J]. 生物技术通讯,2005,16(1):34-36.

[8] 周辉明,陈燕,罗庆国. 薰衣草的组织培养和快速繁殖[J]. 三明农业科技,2006(3):12.

(责任编辑向闱)

收稿日期:2011-08-16

基金项目:湖北省襄阳市科技攻关项目

作者简介:苏琛(1968-),女,河北高碑店人,实验师,主要从事园艺与生物技术实践教学、研究与推广工作,(电话)13487131916(电子信箱)

dajie1968@126.com。

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