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精氨酸加压素对脓毒症大鼠的肝肾保护作用

2011-05-16杨磊李晓云柴琛乔玮鲁彦曹农

医学研究杂志 2011年7期
关键词:侧脑室盲肠中枢

杨磊 李晓云 柴琛 乔玮 鲁彦 曹农

脓毒症是指局部感染引起的全身炎症反应综合征(SIRS),运用液体复苏无效的顽固性低血压和器官功能障碍[1]。是严重创伤、烧伤、大手术后、重症胰腺炎和休克等常见的并发症,进一步发展可导致感染性休克、急性呼吸窘迫综合征和多脏器功能障碍综合征(MODS)[2]。严重脓毒症极易诱导继发多脏器功能损害,其中内毒素通过肠黏膜屏障进入血液是系列病损的始发点。盲肠结扎穿孔诱导的脓毒症易于产生肠道损伤而发生肝、肾功能的下降。脓毒症患者死亡的主要原因是顽固性低血压和多器官功能衰竭[3]。内分泌功能异常是脓毒症的另一重要特点,主要包括肾上腺功能不全和内源性精氨酸加压素(AVP)不足。肾上腺功能不全对血压及器官灌注的影响很小。精氨酸加压素是由下丘脑视上核(SON)和室旁核(PVN)合成分泌的一种九肽激素,其第8位氨基酸是精氨酸,主要储存在神经垂体,其分泌主要受血浆渗透压、血容量及血压调节。几乎所有的脓毒症患者在早期血浆AVP浓度升高,而后期则降低,这一点在脓毒症动物模型中也得到证实[4~6]。AVP在脓毒症发病过程中的这一变化是否影响器官灌注却罕见报道。本实验通过盲肠穿刺法(CLP)复制大鼠脓毒症模型,探讨AVP对器官灌注的影响,为脓毒症的治疗提供实验基础。

材料与方法

1.材料:(1)实验动物:清洁级成年雄性Spargue-Dawley大鼠42只,体重250~300g,购自兰州大学实验动物中心。随机分组。42只大鼠随机分为8组:①假手术组(n=4);②CLP4 h组(n=6):CLP术后4h留血清标本;③CLP8 h组(n=6):CLP术后8h留血清;④CLP12h组(n=6):CLP术后12h留血清标本;⑤AVP-i.c.v组(n=6):术后8h,侧脑室注射AVP(50ng/5μl)0.5h后留血清标本;⑥aCSF-i.c.v组(n=4):术后8h,侧脑室注射人工脑脊液(aCSF)5μl 0.5h后留血清标本;⑦AVP-i.v组(n=6):CLP术后6h静脉泵入AVP(2ng/kg/h)2h;⑧NS-i.v组(n=4):CLP术后6h静脉泵入生理盐水(NS)2h后留血清标本。(2)主要试剂与仪器:精氨酸加压素(AVP)购自Sigma公司;立体定位仪MP-8003购自深圳瑞沃德生命科技有限公司;生物信号记录系统RM6240系成都仪器厂产品;动物呼吸机(DW-2000型,上海嘉鹏科技有限公司)。(3)药品配制:静脉用精氨酸加压素(5nmol)直接溶解于生理盐水;侧脑室微量注射用AVP(50ng)直接溶解于人工脑脊液[aCSF(mmol/L):133.3 NaCl,3.4 KCl,1.3 CaCl2,1.2 MgCl2,0.6 NaH2PO4,32.0 NaHCO3,3.4 glucose;pH 7.4]。

2.实验方法:(1)脓毒症大鼠模型制备:实验前12h禁食,自由饮水。按Shi等报道的方法行CLP致脓毒症手术[7]。腹腔注射戊巴比妥钠(40mg/kg)麻醉后固定,碘伏消毒2遍,铺无菌洞巾。沿下腹部腹正中线做1.5cm切口,结扎盲肠根部(避免结扎回肠及盲肠系膜血管),用16号针头穿刺盲肠2次,并轻轻挤压盲肠,直至有少量粪渣流出,然后将盲肠放回腹腔,逐层缝合腹壁切口,假手术组开腹后仅翻动盲肠。术后于腹部皮下注射无菌生理盐水(30ml/kg)以补充术中体液丢失。(2)侧脑室微量注射:侧脑室微量注射参考文献报道[8],腹腔注射(氨基甲酸乙酯800mg:α-氯醛糖40mg:四硼酸钠40mg/kg)复合麻醉药后,大鼠仰卧位固定于手术台,行气管插管、右侧股动、静脉和左侧股静脉插管。动脉导管通过压力传感器(P-300B)连接生物信号记录系统(RM6240,成都仪器厂)持续监测机体BP和HR。气管插管接动物呼吸机(DW-3000型)通入富含氧气的空气(10~12ml/kg,60~70次/分)。根据大鼠对疼痛刺激反应通过左股静脉管补充麻醉药。大鼠体温在通过红外灯维持37℃。大鼠头部固定于脑立体定位仪(MP-8003)上,切开颅顶皮肤,剥离顶骨骨膜,用浸生理盐水的棉球压迫止血。用牙科钻在前囟后钻一小孔,参照Paxinos及Watson鼠脑图谱(Paxinos& Watson,2007),以前囟(bregma)为原点,坐标为向后:1.0mm,旁开:1.5mm,颅骨表面向下:4.5mm。借助立体定位仪将微量注射器插入侧脑。每次注射容量为5μl,给药时间超过30s。实验结束后给药部位注射膀胺天蓝2μl做组织学定位,10min后切片做组织学定位验证。剔除注射部位不在侧脑室的结果。(3)指标及检测方法:血浆肝、肾功能检测:应用全自动生化分析仪对留取实验动物血浆进行谷丙转氨酶(ALT)、谷草转氨酶(AST)、碱性磷酸酶(ALP)、血尿素氮(BUN)、血肌酐(Cr)水平测定。

结 果

1.CLP术后不同时间大鼠肝、肾功能发生的变化。与假手术组相比较,CLP大鼠血浆 ALT、AST、ALP、BUN及Cr随时间延长逐渐升高,术后8h开始有统计学意义;其中,CLP术后8~12h血浆 ALT、AST、ALP、BUN 及 Cr升高更显著(表 1)。

表1 CLP术后不同时间大鼠肝肾功能的变化

2.CLP术后8h中枢给予AVP(50ng)肝、肾功能的变化。为了观察在中枢内补充AVP对大鼠肝、肾产生的影响,我们在CLP术后8 h通过侧脑室注射AVP的方式在大鼠中枢内补充AVP,并检测大鼠血浆ALT、AST、ALP、BUN 及 Cr。和对照组比较,侧脑室注射AVP后血浆 ALT、AST、ALP、BUN及 Cr明显升高(表2)。

表2 CLP术后8h中枢给予AVP(50ng)肝、肾功能的变化

3.CLP术后6h静脉持续泵入AVP[2ng/(kg·h)]2h肝肾功能的变化。为了观察持续通过静脉补充AVP对CLP大鼠肝、肾功能的影响,我们在造模后6h开始通过静脉给药的方式给大鼠持续补充AVP[2ng/(kg·h)]2h,给药后检测血浆 ALT、AST、ALP、BUN及Cr的变化。与对照组比较,静脉补充AVP 2h后,大鼠血浆 ALT、AST、ALP、BUN 及Cr明显降低。

表3 CLP术后6h静脉持续泵入AVP[2ng/(kg·h)]2h肝、肾功能的变化

讨 论

脓毒症是机体对感染的失控应答,即脓毒症发病时,机体启动应答机制,刺激AVP分泌,脓毒症早期血浆AVP浓度升高,血压及器官的灌注维持在正常或稍低水平,随着脓毒症病情的进展,中枢NO产生增加抑制AVP的表达,中枢AVP表达减少,分泌增加,出现AVP的中枢耗竭[9,10]。磁共振检查发现在感染性休克病人代表储存血管加压素的神经垂体T1加权信号丧失,说明在感染性休克发生时,体内储备的血管加压素迅速耗尽可能是血浆浓度下降的主要原因[11]。脓毒症后期,因中枢 AVP耗竭导致血浆AVP浓度下降,血压持续降低,器官灌注不足。

我们在实验中发现,CLP术后4h,脓毒症大鼠肝肾功能维持在接近正常水平,4h以后,脓毒症大鼠肝、肾功能持续受损。可能是因为CLP术后4h内,中枢AVP释放增加,血浆AVP浓度升高,使血压能维持在正常水平,器官灌注正常,肝、肾功能未出现明显受损;CLP术后4h以后,因中枢AVP耗竭,出现失代偿,血浆AVP浓度开始降低,因此血压降低,器官灌注不足,肝、肾功能持续受损。因此我们在CLP术后8h侧脑室微量注射AVP,以期达到改善因AVP不足引起的低灌流状态,然而结果显示,侧脑室微量注射AVP后,与对照组相比,肝、肾功能受损反而加重。其机制尚不清楚,推测可能是中枢AVP增加易化皮质醇的释放,脓毒症时外周皮质醇的增加可促进TNF-α的表达,血浆TNF-α升高进一步加重器官损伤,或者CLP术后8h肝、肾功能因灌注而出现受损,中枢补充AVP后血浆AVP升高,肝、肾的血液灌注有所改善,出现缺血再灌注损伤[12,13]。CLP术后 6h持续给予AVP静脉泵入与对照组相比可明显改善肝、肾功能,脓毒症早期补充外源性AVP可减少中枢AVP的消耗,改善脓毒症大鼠的血压,避免器官灌注不足。上述结果表明AVP对肝肾功能具有保护作用,其保护作用是通过外周升压作用,提高器官灌注,从而减轻脓毒症时低血压导致的肝肾功能损害有关。

1 Mahler DA,Selecky PA,Harrod CG,et al.American College of Chest Physicians consensus statement on the management of dyspnea in patients with advanced lung or heart disease.Chest,2010,137(3):674-691

2 任成山.脓毒症的发病机制.中国急救医学,2005,25(10):748

3 Parrillo JE.Pathogenetic mechanisms of septic shock.N Engl J Med,1993,328(20):1471-1477

4 Sharshar T,Blanchard A,Paillard M,et al.Circulating vasopressin levels in septic shock.Crit Care Med,2003,31(6):1752-1758

5 Wilson MF,Brackett DJ,Tompkins P,et al.Elevated plasma vasopressin concentrations during endotoxin and E.coli shock.Adv Shock Res,1981,6:15-26

6 Brackett DJ,Schaefer CF,Tompkins P,et al.Evaluation of cardiac output,total peripheral vascular resistance,and plasma concentrations of vasopressin in the conscious,unrestrained rat during endotoxemia.Circ Shock,1985,17(4):273-284

7 Shi KY,Shen FM,Liu AJ,et al.The survival time post-cecal ligation and puncture in sinoaortic denervated rats.J Cardiovasc Pharmacol,2007,50(2):162-167

8 Stepniakowski K,Budzikowski A,Lon S,et al.Central cardiovascular effects of AVP and ANP in normotensive and spontaneously hypertensive rats.J Auton Nerv Syst,1994,47(1-2):33-43

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10 Oliveira-Pelegrin GR,Aguila FA,Basso PJ,et al.Role of central NO-cGMP pathway in vasopressin and oxytocin gene expression during sepsis.Peptides,2010,31(10):1847-1852

11 Sharshar T,Carlier R,Blanchard A,et al.Depletion of neurohypophyseal content of vasopressin in septic shock.Crit Care Med,2002,30(3):497-500

12 Zelena D,Langnaese K,Domokos A,et al.Vasopressin Administration into the Paraventricular Nucleus Normalizes Plasma Oxytocin and Corticosterone Levels in Brattleboro Rats.Endocrinology,2009,150(6):2791-2798

13 宋新明,王吉甫.皮质醇导致脓毒症大鼠tnf-α释放增加.中国病理生理杂志,1999,15(6):571

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