响应面法优化平枝栒子多糖提取工艺研究
2011-01-19郑小江罗兴武
曾 智,郑小江,肖 浩,罗兴武
(1.生物资源保护与利用湖北省重点实验室,湖北 恩施 445000; 2.湖北省生物医药产业药用植物资源开发利用技术创新基地,湖北 恩施 445000; 3.湖北民族学院 生物科学与技术学院,湖北 恩施 445000)
平枝栒子[1-2](CotoneasterhorizontalisDecne)属于蔷薇目(Rosales),蔷薇科(Rosaceae),平枝栒子属(Cotoneaster).平枝栒子广布于我国陕西、甘肃、湖北、湖南、四川、贵州、云南.平枝枸子属落叶或半常绿匍匐灌木;高不超过0.5 m,枝水平开张成整齐两列状;小枝圆柱形,幼时外被糙付毛,老时脱落,黑褐色.叶片近圆形或宽椭圆形,稀倒卵形.花期5~6月,果期9~10月.
近年来,大量研究表明多糖除了有免疫调节、抗肿瘤的生物学效应、抗衰老、降血糖、抗凝血等[3]作用外,还具有抗氧化与抗病毒活性[4],且其对机体毒副作用小.因此,对多糖的研究已经成为医药界的热门领域.响应面法(response surface methodology)[5]是采用多元二次回归方法作为函数估计的工具,与传统的“正交试验设计分析方法”相比,具有试验周期短,求得的回归方程精度高,能研究几种因素交互作用等优点[6-7].另外,王献等[8]分别采用热水浸提及超声波提取水溶性茯苓多糖,结果二者的提取率分别为13.0%和8.6%,表明热水浸提多糖得率高.因此本实验中采用热水浸提、响应面的方法来优化提取工艺,以期得到最佳的提取工艺条件.
1 材料与方法
1.1 材料与试剂
平枝栒子采自于湖北省农业科学院中药材研究所(恩施市新塘乡长岭岗).
无水乙醇(AR)、苯酚(AR)、浓硫酸(AR)、葡萄糖标准品(AR)、三氯甲烷(AR)、正丁醇(AR).
1.2 仪器与设备
FA-1004B电子天平 上海精密科学仪器有限公司;HWS12数显恒温水浴锅 上海一恒科技有限公司;低速大容量多管离心机 上海安亭科学仪器厂;紫外可见分光光度计TU-1810北京普析通用仪器有限责任公司.
表1 浸提温度对多糖提取率的影响
表2 浸提时间对多糖提取率的影响
1.3 方法
1.3.1 多糖提取工艺流程 平枝栒子→干燥→粉碎→浸提→定容→醇沉→去蛋白→取1 mL→测吸光度.
1.3.2 提取工艺的主要步骤 精确称取平枝栒子粉末0.5 mg置于50 mL的烧杯中,加入一定体积的蒸馏水,在一定温度下水浴一段时间,4 800 r/min离心30 min取上清液定容至25 mL,取5 mL加入3倍体积的无水乙醇于4℃冰箱中过夜,4 800 r/min离心15 min取沉淀定容至10 mL,加入sevage试剂2.4 mL去蛋白,然后取1 mL溶液测其吸光度.
1.3.3 多糖含量与提取率的测定
1.3.3.1 测定方法 多糖含量与提取率的测定:采用苯酚-硫酸法[9-12].精密吸取上述去蛋白后的样品液1.0 mL,加入1.0 mL 5%的苯酚溶液,然后加入5 mL 98%的浓H2SO4.摇匀后在40℃水浴中反应15 min,再在冷水中冷却10 min,在480 nm下测其吸光度.
1.3.3.2 标准曲线绘制 精密称取105℃下干燥至恒重的葡萄糖标准品10.00 mg,置于小烧杯中用蒸馏水溶解,再定容至25 mL,摇匀,即配得葡萄糖标准溶液.取7支干净的试管,分别精密吸取葡萄糖标准溶液0.0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6 mL,分别加入蒸馏水补至2.0 mL,按上述方法分别加入新鲜配制的5%苯酚溶液[13]1.0 mL,摇匀,迅速加入浓硫酸5.0 mL,摇匀后置40℃水浴中加热15 min,取出置冷水中冷却10 min,用分光光度计在波长480 nm处测定吸光度,得标准曲线方程:y=0.123 2x-0.000 3,R2=0.999 3.
2 结果与分析
2.1 单因素实验
2.1.1 浸提温度对平枝栒子多糖提取率的影响 精确称取平枝栒子粉0.5 g,每个梯度称取3份,选取时间2.0 h、料液比1∶12,分别在温度为50、60、70、80、90、99℃提取,测得平枝栒子多糖得率如图1中所示.
2.1.2 时间对平枝栒子多糖提取率的影响 精确称取平枝栒子粉0.5 g,每个梯度称取3份,在温度为90℃、料液比1∶12的条件下,各样品分别提取1.0、1.5、2.0、2.5、3.0、3.5 h,结果见表2.
2.1.3 料液比对平枝栒子多糖提取率的影响 精确称取平枝栒子粉0.5 g,每个梯度称取3份,在温度90℃、提取时间2.5 h,各样品料液比分别为1∶8、1∶12;1∶16、1∶20、1∶24、1∶28,结果见表3.
表3 料液比对多糖提取率的影响
表4 响应面试验因素水平表
2.2 响应面法优化提取工艺条件
根据Box-benhnken的中心组合试验设计原理[5],综合各单因素实验结果,以提取温度、料液比、浸提时间为因素,采用响应面分析方法进行试验设计,试验设计见表4.
对浸提时间、温度、料液比作如下变换:X1=(T-90)/9,X2=(z-20)/4,X3=(t-2.5)/0.5,以三次试验所得多糖提取率的平均值为响应值(Y),设计试验与设计结果见表5,15个试验中,1~12是析因试验,13~15是中心试验,用来估计试验误差.
表5 响应面试验设计与数据处理
所得结果,用响应面分析软件分析得到如下的结果:
表6 Y的估计回归系数结果
表7 回归方程的方差分析
由表6结果可知:温度、浸提时间的一次方及其二次方、料液比的二次方对平枝栒子多糖的提取率影响都极显著(P<0.01).
通过软件分析结果得到平枝栒子多糖得率为响应值的最优方程为:
其中X1=(T-90)/9,X2=(t-2.5)/0.5,X3=(z-20)/4.
回归方程中各变量对指标(响应值)影响的显著性是由F检验来判定的,概率P越小,相应变量的显著性就越高.由表6可知,各因素的一次项及二次项对响应值的影响都是极显著的,交互项X2X3是显著的.同时由表7也可以看出,回归模型的相关系数R2=0.093 068/0.093 266=99.78%,回归方程也是极显著的.因此,该回归方程可以用来描述各因素与响应值之间的关系,进而确定平枝栒子多糖提取的最佳条件.对回归方程求一阶偏导数等于零,整理可得如下三式:
0.046-0.094X1=0
(1)
0.019-0.108X2-0.035X3=0
(2)
0.040-0.176X3-0.035X2=0
(3)
联立上述式(1)~(3)解方程组得:X1=0.489,X2=0.109,X3=0.206,代入X1=(T-90)/9,X2=(t-2.5)/0.5,X3=(z-20)/4,分别得到浸提温度T=94.4℃、料液比1∶20.824、浸提时间2.099h.但考虑到实际操作的便利,将其最佳提取工艺条件修正为提取温度94℃,料液比1∶21,浸提时间2.1h.
根据所得结果,由响应面分析软件得到如图1~3.
从图1~3上可以形象地看出各因素的交互作用对响应值(多糖得率)的影响.根据以上Box-benhnken的中心组合试验,得到平枝栒子的最佳提取工艺条件为:提取温度为95℃,料液比为1∶21,浸提时间2.1h.
3 结论
在单因素试验的基础上,通过Box-Benhnken设计及响应面分析,建立了响应值与各因素之间的数学模型,据此模型可以预测理论提取率为0.877%.据此二次回归模型,确定了平枝栒子多糖的最佳提取工艺:提取温度为95℃,料液比为1∶21,浸提时间2.1h.按此工艺条件提取平枝栒子多糖,其一次实际提取率可达0.865%.实际得率与理论值相差甚小,说明该模型能够很好地预测试验结果,可以简单快速地用来设计和分析各种与此相关的试验.
[1] 中国科学院中国植物志编辑委员会.中国植物志(第二卷)[M].北京:科学出版社, 1959.
[2] 中国科学院植物研究所.中国高等植物图鉴(第一册)[M].北京:科学出版社,1994:201.
[3] 李小平.红枣多糖提取工艺研究及其生物功能初探[D].西安:陕西师范大学,2004.
[4] 罗祖友,吴季勤,吴谋成.植物多糖的抗氧化与抗病毒活性[J].湖北民族学院学报:自然科学版,2007,25(1):77-81.
[5] 吴有炜.试验设计与数据处理[M].苏州:苏州大学出版社,2002:115-154.
[6] 陈为,周苗苗,李晓娜,等.正交设计在三七多糖提取中的应用[J].吉林医药学院学报,2009,30:15-17.
[7] 周静华,李汉伟.正交试验优选大理百合多糖提取的工艺[J].食品研究与开发,2010,30(4):17-19.
[8] 王献,赵文杰,苏波.气-质联用法研究水溶性茯苓多糖提取方法[J].中南民族大学学报:自然科学版,2010,29(1):28-31.
[9] 武芸,郑小江,卜贵军,等.响应面分析法优化平枝栒子草多糖的提取工艺[J].食品科学,2010,31(18):109-111.
[10] 刘军海,黄宝旭,蒋德超.响应面分析法优化艾叶多糖提取工艺研究[J].食品科学,2009,30(2):114-118.
[11] 李盈蕾,陈建华,孙吉佑,等.响应面分析法优选黄花菜多糖提取工艺[J].ChinaBrewing,2010,220(7):72-74.
[12] 官波,郑文诚.山药多糖提取工艺的优化[J].营养与功能,2010,26(1):98-100.
[13] 王秀奇,秦淑媛.基础生物化学实验[M].2版.北京:高等教育出版社,1999:103-105.