甘草地上部分活性部位的急性毒性和长期毒性实验研究*
2023-11-20刘海帆冀祖恩彭一峰张丽孙琰琴罗恒磊张薇
刘海帆，冀祖恩，彭一峰，张丽，孙琰琴，罗恒磊，张薇
（1.中国中医科学院中药研究所，北京 100700；2.新疆甘草及制品研究重点实验室，库尔勒 841011；3.新疆全安药业股份有限公司，库尔勒 841011）
甘草地上部分为甘草（Glycyrrhiza uralensisFisch.）的干燥茎叶，其资源丰富且总黄酮含量可达5.64%[1]。课题组前期研究表明甘草地上部分醇提物具有抗慢性非细菌性前列腺炎（CNP）的作用[2]，且黄酮类成分为其主要活性成分[3]。本研究对甘草地上部分醇提物进一步富集黄酮后得到的活性部位进行急性毒性和长期毒性实验，为甘草地上部分活性部位在临床上的安全应用提供合理的科学依据。
1 仪器与材料
1.1 仪器 BC-2800vet 迈瑞兽用全自动血液细胞分析仪（深圳雷杜生命科技）；Chemray800 全自动生化分析仪（深圳雷杜生命科技）；ME203E/02 电子天平（梅特勒-托利多仪器上海有限公司）；KZ-Ⅱ高速组织研磨仪（武汉赛维尔生物科技有限公司）；D3024R 台式高速冷冻离心机（大龙兴创实验仪器北京股份公司）；MX-F 涡旋混合器（武汉赛维尔生物科技有限公司）；EP-150-M 1.5 mL 离心管（武汉赛维尔生物科技有限公司）；KE0037273 1 000 μL 移液器、YE3K030591 200 μL 移液器、DS35110 50 μL移液器、KE0012951 10 μL 移液器（移液器均购自大龙兴创实验仪器北京股份公司）；1012710P 载玻片（江苏世泰实验器材有限公司）；Sw101-35 烤箱（上海苏博仪器有限公司）；10212450C 盖玻片（江苏世泰实验器材有限公司）；EG11 组织包埋机（德国徕卡）；SYD-PK 切片烤片机（沈阳誉德电子仪器有限公司）；RM2245 切片机（德国徕卡）。
1.2 药物与试剂 本实验样品甘草地上部分是采自甘肃省酒泉市瓜州县河东乡的9年生栽培甘草，经中国医学科学院王文全教授鉴定为甘草Glycyrrhiza uralensisFisch.，经自然阴干后，粉碎过40 目筛，备用。甘草地上部分以70%乙醇回流提取，提取温度75 ℃，液料比8∶1，提取时间90 min，提取2 次，浓缩、干燥成粉末。将甘草地上部分醇提物用10 倍量的去离子水溶解后静置12 h，3 500 r/min 离心15 min（离心直径为80 cm）得到上清，将上清溶液部分挥干，收集得到的上清浸膏为甘草地上部分活性部位，即本研究的受试物（出膏率为79.3%，黄酮含量为14.58%），受试物的制备方法依据本课题组前期研究得到的最佳醇提工艺[4]进行微调；水（娃哈哈集团有限公司）；无水乙醇（分析纯，北京化工厂）；羧甲基纤维素钠（CMC-Na，coolaber 公司）；二甲苯（北京化工厂）；中性树胶（上海实验器材厂）；苏木素染液（珠海贝素生物技术公司）；伊红染液（珠海贝素生物技术公司）；S03030 丙氨酸氨基转移酶（ALT）、S03040 天门冬氨酸氨基转移酶（AST）、S03038 碱性磷酸酶、S03043 白蛋白、S03022 总蛋白、S03036 尿素、S03076 肌酐、S03024 肌酸激酶、S03027 三酰甘油、S03042 总胆固醇、S03039 葡萄糖测定试剂盒（深圳市雷杜生命科学股份有限公司）；C120 总胆红素、C108 钠、C013 氯、C068 钾测定试剂盒（长春汇力生物技术有限公司）。
1.3 动物 SPF 级昆明种雄性小鼠20 只，体质量45～50 g（用于急性毒性实验）；SPF 级SD 雄性大鼠40 只，体质量180～200 g（用于长期毒性实验），均购自北京市维通利华实验动物技术有限公司。实验动物常规饲养，保持恒温24 ℃，12 h 光/暗周期下，接受标准饮食和水，自由采食。本研究经中国医学科学院药用植物研究所动物福利伦理委员会批准，符合中国伦理委员会有关动物研究指导原则，急性毒性实验小鼠与长期毒性实验大鼠的伦理审查编号分别为SCXK（京）2016-0006、SLXD（京）-20200902021。
2 方法
2.1 急性毒性实验 选取SPF 级昆明种雄性小鼠20 只，分为2 组，分别为实验组和空白组，每组10 只。实验组剂量为33.2 g/kg（最大给药剂量），灌胃给药，两组均每日给药2 次（间隔5 h），空白组给予等体积0.5%CMC-Na 溶液。给药后连续观察4～6 h，以后每日观察1 次，持续观察14 d。观察小鼠的基本状况（是否腹泻、惊厥、嗜睡，是否出现被毛、皮肤、呼吸系统等异常），第14 天处死所有小鼠，进行解剖观察是否有脏器病变，实验期间的第0、7、11、14 天记录小鼠体质量。
2.2 长期毒性实验 选取SD 雄性大鼠40 只，分为空白组、受试物8.3、16.6、33.2 g/kg 组，每组10 只，每日给药1 次，每周连续给药6 d，停药1 d，共连续给药90 d，空白组给予等体积0.5%CMC-Na 溶液。每日观察动物精神状态、行为活动、毛色、二便等一般体征，每周称取体质量1 次，根据体质量变化及时调整灌胃量，2 d 记录1 次大鼠饮水量与摄食量，计算食物利用率（食物利用率=体质量增加量÷进食量×100%，表示大鼠摄入100 g 饲料增加的体质量）。给药中期（45 d）及末期（90 d）禁食不禁水16 h，麻醉后眼眶取血，制备全血及血清标本，分别进行血液学及血清生化指标检测；实验结束后解剖取出脏器并称取质量，计算脏器指数，对脏器进行组织病理学检查。
2.3 数据统计与处理 采用SPSS 20.0 软件进行统计学分析，计量资料以均数±标准差（±s）表示，对满足正态性分布及方差齐性的数据，组间比较采用单因素方差分析，两两比较采用LSD 法，P＜0.05 为差异有统计学意义。
3 结果
3.1 急性毒性实验
3.1.1 小鼠死亡与生存状况分析 在灌服甘草地上部分活性部位后，各组均未出现小鼠死亡情况，未发现腹泻、嗜睡、惊厥等行为，未发现被毛、皮肤等异常，实验组与空白组小鼠状态无明显差异。
3.1.2 小鼠体质量与大体解剖情况分析 各组小鼠平均体质量呈增长趋势，且实验组与空白组比较，差异无统计学意义（P＞0.05）。第14 天解剖小鼠后，两组均未发现明显脏器病变。见表1。
表1 甘草地上部分活性部位对小鼠体质量的影响（±s）g
表1 甘草地上部分活性部位对小鼠体质量的影响（±s）g
组别 动物数第0 天第7 天第11 天第14 天空白组1046.40±2.42 50.80±1.60 51.00±1.48 54.40±1.96实验组1048.60±1.11 51.60±1.56 52.50±1.75 53.20±1.89
3.2 长期毒性实验
3.2.1 大鼠死亡与生存状况分析 实验过程中，各组大鼠身体状况良好，饮水与进食正常，体质量呈增长趋势，大小便正常，全程未见实验动物死亡情况。
3.2.1.1 甘草地上部分活性部位对大鼠体质量的影响 各实验组与空白组大鼠体质量均呈增长趋势，第1 周增长较快，各剂量组及空白组动物体质量均未发现异常变化。见表2。
表2 甘草地上部分活性部位对大鼠体质量的影响（±s）g
表2 甘草地上部分活性部位对大鼠体质量的影响（±s）g
组别动物数第1 周第2 周第3 周第4 周第5 周第6 周空白组10314.23±10.73361.34±21.09406.15±24.99443.88±27.77461.38±25.18484.55±22.34 8.3 g/kg 组10317.39±15.63362.67±21.71412.00±30.25452.47±37.02460.79±47.06480.51±51.58 16.6 g/kg 组10310.31±14.05351.36±24.64390.09±24.45430.01±30.70447.27±34.19469.67±35.36 33.2 g/kg 组10308.50±16.19351.36±23.11388.03±28.38426.30±33.70445.71±37.78466.34±43.98组别动物数第7 周第8 周第9 周第10 周第11 周第12 周空白组10510.58±26.94535.22±26.92554.93±25.49575.75±25.65592.00±25.07601.25±31.04 8.3 g/kg 组10508.61±59.03527.45±67.67565.17±53.38587.62±58.22583.93±54.3638.00±64.22 16.6 g/kg 组10486.67±47.41513.35±37.92542.13±39.48565.31±38.21587.01±36.28598.14±36.12 33.2 g/kg 组10492.63±47.35518.81±44.92546.59±50.09566.01±53.56590.04±57.98606.80±59.78
3.2.1.2 甘草地上部分活性部位对大鼠食物利用率的影响 各组大鼠在90 d 实验周期内的食物利用率趋势一致，均呈现降低的趋势，在同一时间节点，各实验组与对照组大鼠食物利用率比较，差异无统计学意义（P＞0.05），认为甘草地上部分经口给药90 d 对大鼠的正常进食无不良影响。各组大鼠的食物利用率随时间变化情况见表3。
表3 甘草地上部分活性部位对大鼠食物利用率的影响（±s）%
表3 甘草地上部分活性部位对大鼠食物利用率的影响（±s）%
组别动物数 第1 周 第2 周 第3 周 第4 周 第5 周 第6 周 第7 周 第8 周 第9 周 第10 周 第11 周 第12 周空白组1031±230±416±614±213±212±216±315±312±312±48±1.01±0.3 8.3 g/kg 组1039±521±428±523±38±110±314±515±314±411±17±1.53±0.8 16.6 g/kg 组1043±425±329±623±216±221±49±217±218±112±29±1.71±0.2 33.2 g/kg 组1043±526±630±422±212±312±214±119±620±110±111±2.01±0.2
3.2.1.3 甘草地上部分活性部位对大鼠饮水量的影响 空白组与各实验组在90 d 实验周期内的饮水量变化趋势基本一致，第10 周时均出现下降趋势，在第11 周恢复，可能是由于第10 周时受环境因素影响，动物房温度升高或者环境出现异常所致。但各给药组与空白组趋势一致，所以认为甘草地上部分活性部位经口给药90 d 对大鼠的正常饮水无不良影响。各组大鼠的饮水量随时间变化情况见表4。
表4 甘草地上部分活性部位对大鼠饮水量的影响（±s）g
表4 甘草地上部分活性部位对大鼠饮水量的影响（±s）g
组别动物数 第1 周第2 周第3 周第4 周第5 周第6 周第7 周第8 周第9 周第10 周第11 周第12 周空白组1056.00±3.64 54.17±6.24 65.63±9.51 52.29±5.36 52.32±4.69 51.46±5.46 38.75±5.41 42.93±4.16 46.25±6.54 27.37±6.28 37.96±4.82 36.25±7.46 8.3 g/kg 组1056.17±5.84 64.00±6.91 54.11±6.24 68.10±8.91 62.86±6.39 61.67±5.91 58.57±9.81 72.53±9.82 70.83±10.19 39.77±4.82 50.78±5.49 53.72±4.10 16.6 g/kg 组1051.20±3.26 67.02±5.91 50.71±3.56 55.83±8.51 50.92±5.96 50.00±6.81 51.29±3.61 56.02±4.92 46.50±4.92 36.35±5.61 38.24±4.19 37.90±4.79 33.2 g/kg 组1045.43±4.39 51.55±8.64 44.38±5.26 48.10±4.69 44.80±4.62 42.74±4.92 42.14±7.91 53.79±5.08 51.57±8.19 37.71±4.00 35.65±2.79 37.81±8.21
3.2.2 大鼠脏器及组织病理学分析
3.2.2.1 大体解剖观察 与空白组比较，各实验组大鼠大体解剖和脏器与体质量比例结果未见明显变化，差异无统计学意义（P＞0.05）。主要指标见表5。
表5 甘草地上部分经口给予90 d 对大鼠脏器指数的影响（±s）%
表5 甘草地上部分经口给予90 d 对大鼠脏器指数的影响（±s）%
组别空白组8.3 g/kg 组16.6 g/kg 组33.2 g/kg 组动物数10 10 10 10胸腺指数心脏指数 肺脏指数 脾脏指数 肾上腺指数 肾脏指数 附睾指数 睾丸指数前列腺指数肝脏指数 脑指数0.000 66±0.000 17 0.23±0.004 0.30±0.02 0.17±0.009 0.011±0.001 0.64±0.06 0.22±0.06 0.72±0.04 0.13±0.03 2.90±0.25 0.39±0.01 0.000 65±0.000 19 0.24±0.050 0.26±0.07 0.17±0.040 0.009±0.002 0.67±0.15 0.25±0.04 0.64±0.09 0.12±0.04 3.20±0.82 0.36±0.07 0.000 57±0.000 21 0.23±0.030 0.27±0.03 0.16±0.030 0.023±0.037 0.59±0.09 0.27±0.04 0.68±0.08 0.12±0.03 2.72±0.50 0.35±0.04 0.000 52±0.000 15 0.25±0.040 0.31±0.04 0.18±0.030 0.012±0.003 0.66±0.08 0.23±0.04 0.63±0.09 0.12±0.04 3.01±0.43 0.35±0.05
3.2.2.2 组织病理学检查 各实验组大鼠的心脏、肝脏、脾脏、肺脏、肾脏、胸腺、肾上腺、附睾、睾丸、前列腺、脑组织结构清晰，形态完整，未见明显病理改变。苏木精-伊红（HE）染色结果见图1。
图1 大鼠组织病理学HE 染色结果（×400）
心肌细胞排列正常，形态结构无紊乱；肝脏组织病理切片可见肝小叶结构完整，肝细胞及血窦清晰无异常，肝窦未见充血，肝汇管内无明显炎性细胞浸润；脾脏组织切片中红髓区和白髓区界限清晰，小梁结构无异常；肺泡组织形态、结构清晰，肺泡无塌陷及破裂，肺泡充盈适度，肺泡囊管壁结构完整；肾小体结构完整，肾小球位于小体中央且结构完整；胸腺皮髓界限清楚，小叶明显，皮质部成熟淋巴细胞较多，髓质部可见明显的胸腺小体；肾上腺皮质与髓质分界明显；皮质部网状带、球状带、束状带的细胞结构正常；附睾细胞排列紧密，界限清晰，附睾管内含有大量成熟精子；睾丸曲细小管内各级生精细胞发育良好；前列腺体未见萎缩，间质无水肿，无炎症细胞浸润，腺泡上皮排列整齐无增生现象；脑组织结构正常，皮质结构清晰，神经细胞结构完整，无炎性细胞浸润，白质部神经纤维染色均匀，为淡粉色，排列整齐，纹理清晰。
3.2.3 甘草地上部分活性部位对大鼠血液学指标的影响
3.2.3.1 实验45 d 血液学检测结果 实验45 d 时，与空白组比较，部分实验组的检测指标出现变化，差异有统计学意义（P＜0.05），其中8.3 g/kg 组的白细胞计数、单核细胞数目、中性粒细胞数、血小板计数以及16.6 g/kg 组的血小板计数降低。实验45 d时各组大鼠的血液学指标见表6。
表6 甘草地上部分活性部位经口给予45 d 对大鼠血液学指标的影响（±s）
表6 甘草地上部分活性部位经口给予45 d 对大鼠血液学指标的影响（±s）
注：与空白组比较，*P＜0.05。
白细胞检测红细胞检测组别动物数白细胞计数（×109/L）淋巴细胞数（×109/L）单核细胞数（×109/L）中性粒细胞数（×109/L）淋巴细胞百分比（%）单核细胞百分比（%）中性粒细胞百分比（%）红细胞计数（×1012/L）血红蛋白（g/L）空白组8.3 g/kg 组16.6 g/kg 组33.2 g/kg 组10 10 10 10 13.85±1.6311.68±1.460.30±0.001.88±0.3384.23±2.032.23±0.2913.55±1.807.21±0.14 138.75± 3.70 10.07±0.61*8.87±0.530.15±0.05*1.05±0.22*87.97±2.011.83±0.2710.20±1.936.79±0.92 135.67± 9.64 11.63±2.6710.08±2.140.22±0.091.33±0.5486.95±2.722.00±0.2911.05±2.476.62±1.30 135.67±13.56 10.50±2.759.10±2.400.23±0.091.17±0.3486.80±1.062.15±0.8711.05±0.626.60±1.81 127.00± 8.49红细胞检测血小板检测组别动物数平均红细胞体积（fL）红细胞压积（%）43.20±0.83 40.68±4.48 41.37±7.10 39.94±9.07平均红细胞血红蛋白量（pg）平均红细胞血红蛋白浓度（g/L）红细胞分布宽度（%）血小板计数（×109/L）平均血小板体积（fL）血小板分布宽度（%）血小板压积（%）空白组8.3 g/kg 组16.6 g/kg 组33.2 g/kg 组10 10 10 10 60.03±1.0819.23±0.28 60.32±3.4220.20±2.15 62.98±3.3220.95±2.74 62.45±5.3618.88±1.05 245.50±30.49 335.00±23.76 282.67±21.36 367.60±99.29 15.25±0.54 16.03±0.37 15.83±0.46 16.08±0.43 1 184.25±827.00 741.80± 96.65*691.33±168.01*849.60±119.19 6.15±0.32 6.83±0.63 6.57±0.37 6.38±0.63 16.78±0.77 18.47±1.04 18.25±0.79 17.88±1.31 0.66±0.04 0.46±0.16 0.45±0.11 0.49±0.15
3.2.3.2 实验90 d 血液学检测结果 实验90 d 时，与空白组比较，各实验组指标未见明显变化，差异无统计学意义（P＞0.05）。实验90 d 时各组大鼠血液学指标见表7。
表7 甘草地上部分活性部位经口给予90 d 对大鼠血液学指标的影响（±s）
表7 甘草地上部分活性部位经口给予90 d 对大鼠血液学指标的影响（±s）
白细胞检测红细胞检测组别动物数白细胞计数（×109/L）淋巴细胞数（×109/L）单核细胞数（×109/L）中性粒细胞数（×109/L）淋巴细胞百分比（%）单核细胞百分比（%）中性粒细胞百分比（%）红细胞计数（×1012/L）血红蛋白（g/L）空白组8.3 g/kg 组16.6 g/kg 组33.2 g/kg 组10 10 10 10 13.15±2.1511.20±2.060.30±0.071.65±0.2384.80±2.812.30±0.3212.90±2.508.46±0.30 152.25±3.96 9.72±4.408.85±2.740.15±0.051.30±1.1384.83±4.842.15±0.7413.02±1.147.27±1.55 128.67±2.67 12.70±2.0810.38±1.750.32±0.072.00±0.3081.80±1.092.58±0.2115.62±1.048.30±0.45 153.83±5.58 11.80±1.079.85±1.010.28±0.041.67±0.2783.53±2.232.25±0.3714.22±1.968.28±0.31 151.83±2.61红细胞检测血小板检测组别动物数平均红细胞体积（fL）平均红细胞血红蛋白量（pg）平均红细胞血红蛋白浓度（g/L）红细胞分布宽度（%）红细胞压积（%）47.90±1.00 39.40±8.70 46.38±1.88 45.57±1.35血小板计数（×109/L）平均血小板体积（fL）血小板分布宽度（%）血小板压积（%）空白组8.3 g/kg 组16.6 g/kg 组33.2 g/kg 组10 10 10 10 56.80±2.0317.98±0.55 54.17±1.8617.65±0.54 55.98±1.8518.52±0.62 55.15±1.4418.32±0.52 317.25±6.22 327.17±8.17 331.17±3.34 332.83±5.58 14.40±0.83 13.73±0.85 13.95±1.06 13.95±0.50 967.70±139.65 914.00±292.94 800.17±118.28 782.67±195.10 6.35±0.15 6.28±0.42 6.47±0.44 6.37±0.24 16.50±0.07 17.13±0.41 16.65±0.28 16.60±0.32 0.57±0.06 0.51±0.14 0.51±0.07 0.49±0.11
实验45 d 时，8.3g/kg 组的白细胞计数、单核细胞数、中性粒细胞数、血小板计数及16.6 g/kg 组的血小板计数与空白组比较显著降低，而实验90 d 时检测却未见显著性差异，考虑为采集时间、方法与个体差异所致。由于实验45 d 时采用大鼠眼眶后静脉丛采血的方式采集血液，而实验90 d 时采用腹主动脉采血方式，所以推测眼眶后静脉丛采血会造成动物产生兴奋与排尿、排便等现象，从而影响部分血液学、生化指标改变[5]，且由于实验45 d 与90 d采血时间相差45 d，有研究表明不同年龄大鼠的血液学指标会有所不同[6]。
上述结果中有较多的血液学检测指标异常，但根据毒理学实验的评价标准可知，血液学检测指标均存在正常范围，即使各实验组的实际检测值与空白组比较有统计学差异，但若这个数值在正常范围之内，则这个数值依然为正常值。或者部分指标只有异常升高时才具有临床意义，异常降低则不作为诊断标准，此时也不认为是发生毒性反应。按照此原则[7]对数据进行分析后，排除了无意义的异常值，最终提示甘草地上部分活性部位给药后实验45 d与实验90 d 对大鼠血液学检测指标并无异常影响。
3.2.4 甘草地上部分活性部位对大鼠血清生化指标的影响
3.2.4.1 实验45 d 大鼠血清生化检测结果 实验45 d 时，与空白组比较，8.3 g/kg 组白蛋白异常降低，16.6 g/kg 组白蛋白、钠离子异常降低，葡萄糖异常升高，差异有统计学意义（P＜0.05）。实验45 d 时各组大鼠血清生化指标见表8。
表8 甘草地上部分活性部位经口给予45 d 对大鼠血清生化指标的影响（±s）
表8 甘草地上部分活性部位经口给予45 d 对大鼠血清生化指标的影响（±s）
注：与空白组比较，*P＜0.05。
组别动物数空白组8.3 g/kg 组16.6 g/kg 组33.2 g/kg 组10 10 10 10肝功能肾功能白蛋白（g/L）碱性磷酸酶（U/L） 总胆红素（μmol/L）总蛋白（g/L）尿素（mmol/L）肌酐（μmol/L）37.72±1.55136.36±30.309.76±1.3456.26±3.7715.05±0.8932.02±2.30 35.77±0.88*172.64±24.938.46±3.0554.36±1.7213.51±1.9830.27±0.98 35.29±0.34*130.97±25.278.90±2.0053.76±1.8414.14±1.0432.04±3.94 36.51±0.80152.05±22.058.38±2.5154.74±1.7113.06±2.5631.51±2.42组别动物数血糖葡萄糖（mmol/L）心肌酶肌酸激酶（U/L）空白组8.3 g/kg 组16.6 g/kg 组33.2 g/kg 组10 10 10 10血脂离子三酰甘油（mmol/L）总胆固醇（mmol/L）氯（mmol/L） 钾（mmol/L） 钠（mmol/L）1.19±0.221.92±0.276.75±0.43779.80± 61.33101.15±1.852.89±0.04158.68±0.85 1.03±0.301.79±0.217.47±1.02859.74± 86.97110.19±6.142.93±0.14159.71±2.91 1.30±0.311.64±0.157.78±1.64*947.54±180.39117.97±3.702.87±0.16148.54±6.53*0.99±0.341.91±0.219.37±1.11992.15±142.00101.40±2.042.82±0.12159.43±1.24
3.2.4.2 实验90 d 大鼠血清生化检测结果 实验90 d 时，与空白组比较，各实验组大鼠的总胆红素均显著降低；8.3、16.6 g/kg 组三酰甘油均显著降低，差异有统计学意义（P＜0.05）。实验90 d 时各组大鼠的血清生化指标见表9。
表9 甘草地上部分活性部位经口给予90 d 对大鼠血清生化的影响（±s）
表9 甘草地上部分活性部位经口给予90 d 对大鼠血清生化的影响（±s）
注：与空白组比较，*P＜0.05。
组别空白组8.3 g/kg 组16.6 g/kg 组33.2 g/kg 组动物数10 10 10 10肝功能肾功能白蛋白（g/L）碱性磷酸酶（U/L）总胆红素（μmol/L）总蛋白（g/L）尿素（mmol/L）肌酐（μmol/L）43.11±1.07215.11±42.2926.60±4.4873.65±4.5515.37±0.6434.61±2.80 42.07±0.55204.18±18.8719.62±3.36*70.77±1.4916.39±1.5538.37±2.74 41.84±0.99217.98±32.8714.99±3.57*70.86±2.7515.26±1.0836.14±2.52 42.76±0.43195.53± 8.4918.82±3.88*72.21±1.2214.61±0.6833.06±2.43组别动物数血糖葡萄糖（mmol/L）心肌酶肌酸激酶（U/L）空白组8.3 g/kg 组16.6 g/kg 组33.2 g/kg 组10 10 10 10血脂离子三酰甘油（mmol/L） 总胆固醇（mmol/L）氯（mmol/L） 钾（mmol/L） 钠（mmol/L）2.88±0.572.42±0.309.11±1.41888.52±233.28 117.95±1.453.70±0.19159.85±1.77 1.85±0.87*2.16±0.3410.51±2.11736.79±229.82 114.94±3.283.63±0.36161.37±4.02 1.98±0.51*2.20±0.298.87±1.941 089.58±441.53 113.49±2.003.52±0.10160.34±2.75 2.21±0.612.36±0.318.31±0.691 316.98±441.43 114.44±1.943.68±0.20158.88±2.29
实验45 d 时，与空白组比较，8.3 g/kg 组大鼠白蛋白异常降低，16.6 g/kg 组大鼠白蛋白、钠离子异常降低，葡萄糖异常升高。实验90 d 时，与空白组比较，各给药组的总胆红素均显著降低；8.3、16.6 g/kg 组三酰甘油均显著降低。这些指标仅45 d 或90 d 时有统计学差异，但均在正常范围之内，所以认为其属于无意义的异常值。推测这些值的波动与取样时间有关，且在90 d 取材前1 d 将大鼠转移至另一房间，禁食1 个晚上，可能由于环境的变化导致大鼠的某些生化指标产生波动。
血清生化指标同血液学指标一样，与空白组比较出现统计学差异不完全代表毒性作用，与血液学指标的分析结果相同。以此原则[8-9]对本次实验的结果进行分析，排除了无意义的异常值，最终提示甘草地上部分活性部位给药对大鼠血清生化指标无异常影响。
4 讨论与结论
相关研究表明，在关注中药疗效的同时也应重视对其安全性的检测[10]。本课题组前期研究发现甘草地上部分水提物、醇提物具有潜在毒性[11]，为保证临床用药的安全性，本研究按照《中药新药研究指南》[12]和《中药、天然药物长期毒性研究技术指导原则》[13]的要求对甘草地上部分活性部位的毒性进行评价，为新药研发提供安全性依据。
本实验中急性毒性与长期毒性研究均只使用雄性鼠，是由于本课题组研究发现甘草地上部分对前列腺炎治疗效果显著[2]，将此药用于男性患者，故该研究未对雌性鼠展开实验。
甘草地上部分活性部位的小鼠急性毒性实验中，在14 d 的观察期内，无小鼠死亡，各组小鼠被毛、皮肤、运动、身体健康状况无异常，无明显中毒症状。实验期间，小鼠体质量正常增长，甘草地上部分活性部位的最大耐受剂量＞33.2 g/kg，属于无毒级，提示甘草地上部分活性部位无急性毒性。
长期毒性实验期间，各组实验动物正常进食进水，食物利用率及饮水量均未见异常；各组大鼠脏器指数均无明显差异，认为受试物对脏器指数没有影响。组织病理学方面，受试物对大鼠组织病理学切片无异常影响，且甘草地上部分对大鼠血液学及血清生化指标无异常影响。因此，甘草地上部分活性部位对大鼠一般生理状态及肝脏、肾脏功能与脏器组织学均无长期毒性反应。
综上所述，甘草地上部分活性部位无急性毒性和长期毒性反应，药物的最大耐受量≥33.2 g/kg，即有效剂量[14]的30 倍；基本安全剂量≥33.2 g/kg，即临床剂量的30 倍，在治疗剂量范围内用药安全性高。
血液生理生化指标不仅可以反映动物的生理状态和健康状态，还可以评价其生长性能和生产性能，对评价动物的代谢状况、生理状态和饲养管理具有重要意义。在实验中出现了个别指标的波动情况，但均在正常范围之内，推测其与大鼠的年龄、饲养条件及取样方法有关。杨林等[15]研究表明不同生理阶段的同性小鼠血液生理指标差异显著；詹纯列等[16]研究表明环境因素对小鼠血常规的指标有显著影响；李罡等[17]经研究发现，由于在研究中所收集的SD 大鼠血液学指标和血清生化指标资料包括了3 个不同实验室和4 个季节的实验数据，实验所用动物的年龄、初始体质量、营养及喂养环境等条件有所差异，血样的采集、运送和检测条件等亦不完全一致，使血红蛋白等10 项指标的测定值在不同批次间差异具有统计学意义（P＜0.05）。
针对受试物的化学成分，本课题组通过网络药理学和大鼠体内的入血及代谢成分，得到甘草地上部分醇提物的主要药效成分为葛根素、山奈酚、木犀草素和乔松素4 种黄酮类成分，并且通过药代动力学实验探究了4 种成分在血浆、尿液、粪便及前列腺中的浓度变化，得出这4 种成分在血浆及前列腺中均有分布，之后可以考虑将这4 种成分作为甘草地上部分活性部位的质控成分[3]。
受试物的主要成分为黄酮类成分，他们除了具有相应药效外，研究还表明其具有脏器保护作用，能够降低毒性。Yang 等[18]发现甲基化黄酮的表观渗透系数是非甲基黄酮的4～7 倍，吸收较好。硫酸酯化代谢会增加药物的水溶性，使其更容易随尿液排出，降低毒性[19]。侯筱婷[20]研究表明葛根素可以预防大鼠急性酒精性肝损伤，对肝脏具有保护作用。预先给予葛根素可以明显减轻急性肺损伤大鼠肺组织炎症反应及肺水肿程度[21]，可有效拮抗庆大霉素所致的大鼠肾损害[22]。香叶木素在肝、肺、肾脏中均有分布，香叶木素可通过降低核苷酸结合寡聚化结构域样受体热蛋白结构域相关蛋白3（NLRP3）炎性小体活性缓解四氯化碳（CCl4）诱导的肝损伤大鼠肝纤维化[23]，对胎粪诱导的新生大鼠急性肺损伤具有治疗作用[24]，可以通过核因子E2 相关因子2（Nrf2）抗氧化信号通路缓解顺铂诱导的急性肾损伤[25]。
除了保护作用，黄酮类化合物会影响人体内药物的代谢，甚至导致不良反应。如其在体内会和细胞色素P450 作用，从而影响体内药物的浓度，导致药效减弱或者增强，甚至产生毒性[19]；黄酮类化合物也可能影响亲和素蛋白的活性，导致亲和素-致癌物的活性增加[26]。研究发现，黄酮类化合物还可以激活CYP1A1 和CYP1A2，从而诱导致癌物质的活化，如高良姜素、槲皮素、香叶木素可以增加CYP1A1 基因的表达[27-28]，在之后的研究中可以对其中特定的黄酮类毒性成分予以关注。
