基于工艺优选的冠突曲霉发酵桑寄生茶防治非酒精性脂肪肝病的潜在机制研究

巫文鑫，覃展敏，刘佳莉，陈柳燕，夏玉苹，黄 妤，刘小勇，李永华,

（1.广西中医药大学药学院，广西南宁 530200；2.暨南大学附属第五医院，广东河源 517475；3.梧州鸳江响水桑寄生生物科技有限公司，广西梧州 543200；4.梧州市古树六堡茶厂，广西梧州 543003）

非酒精性脂肪肝病（non-alcoholic fatty liver disease，NAFLD）是非过量酒精摄入影响下形成的一种肝脏脂肪蓄积过度为主要特征的代谢综合征，常伴随肝损伤、肝纤维化、肝硬化、肝细胞癌等演变式的并发症，其致病因素涵盖药物、饮食、环境、肠道菌群等方面，属多重因素相互作用的进行性疾病[1−2]。NAFLD在中国大陆的患病率接近30%[3]，Estes等[4]预测中国NAFLD患病率将在2016～2030年间相对增长22.2%。目前没有特效药物被批准用于NAFLD的治疗，常采取多模式方法，以减少肝脏脂质蓄积、改善胰岛素敏感性、减少肝脏星状细胞激活等改善并发症的途径达到治疗目的[5]。降血糖的代表性药物盐酸二甲双胍常伴随厌食、腹泻等胃肠道反应，且存在乳酸中毒风险，不适用于严重肝功能不全患者，而减肥手术的快速治疗存在皮层周围炎症、肝纤维化等问题[2]。必须进一步探索除具备上述治疗目的外，还伴有抗氧化、护肝、调节肠道微生物生态等效果的治疗方式。对此，中医的多靶点治疗理念对NAFLD的防治具有明显优势[6]。

桑寄生茶是桑寄生Taxillus chinensis（DC.） Danser的叶和叶芽通过茶艺处理而成的一种别样茶（non-Camellia teas），在岭南地区，桑寄生作茶饮用历史悠久，文字记载可追溯至清代《生草药性备要》[7]，“消热，滋补，追风，养血散热。作茶饮，舒筋活络。”现代研究表明，桑寄生还具有降血糖、抑制肝癌细胞、抗炎等药理作用[8]。冠突曲霉Aspergillus cristatus是茯砖茶发酵过程的主要真菌[9]，可作为新型益生菌用于肥胖症的治疗[10]，具有抗氧化、抗衰老、调整肠道菌群、增强宿主免疫等生物活性[11−13]。冠突曲霉发酵桑寄生茶是否能结合两者优势，对NAFLD的防治起到积极的影响并无报道。

斑马鱼为鲤科热带硬骨鱼，原产于南亚地区，自成为模式动物以来，因其体积小，繁殖能力强，实验周期短，基因序列与人类高度相似等特点被广泛运用于药效筛选与毒理学研究[14]。超高效液相色谱串联-四级杆-飞行时间质谱技术（UPLC-Q-TOF-MS/MS）是以超高效液相色谱仪作为分离系统，四级杆与飞行时间质谱为分析器串联而成的一种质谱分析技术，是近年来对于复杂基质进行鉴定分析的有效方法之一[15]。网络药理学是运用高通量组学分析，对系统生物学、基因组学、蛋白组分等多学科理论整体性分析，结合计算机模拟进行可行性分析，用于预测药物作用机制、疾病发生机制的一项技术[16]。UPLC-Q-TOF-MS/MS、网络药理学、斑马鱼模型等实验方法常联合使用用于中药药效预测及功能验证[17]。

基于此，本研究采用正交试验优选冠突曲霉发酵桑寄生茶工艺，模式动物斑马鱼探究冠突曲霉发酵桑寄生茶对NAFLD的防治作用，并采用超高效液相色谱串联-四级杆-飞行时间质谱技术（UPLC-Q-TOFMS/MS）与网络药理学，探究冠突曲霉发酵桑寄生茶防治NAFLD的潜在机制。

1 材料与方法

1.1 材料与仪器

桑寄生茶原料 为桑寄生叶和叶芽，采摘于广西梧州岑溪市桑寄生人工种植基地，寄主植物为桑树，采摘时间2020年9月，桑寄生茶原料经广西中医药大学李永华研究员鉴定为桑寄生科植物桑寄生Taxillus chinensis（DC.） Danser的叶和叶芽；野生型（AB系）斑马鱼 购自国家斑马鱼资源中心（China Zebrafish Resource Center）。斑马鱼于本实验循环养殖系统饲养，水温20～28 ℃，环境28～30 ℃，光照/黑暗周期12 h/12 h，每天饲食丰年虾2次；总蛋白（TP）、总胆固醇（TC）、甘油三酯（TG）、低密度脂蛋白胆固醇（LDL-C）、谷草转氨酶（AST）、谷丙转氨酶（ALT）测试试剂盒 南京建成生物工程研究所；冠突曲霉（菌株编号：CICC2016.97） 中国工业微生物菌种保藏管理中心；芦丁（批号：RP210601，质量分数≥98%）、没食子酸（批号：RP191126，质量分数≥98%）、L-谷氨酸（批号：RP200602，质量分数≥98%） 成都麦德生科技有限公司；原花青素（批号：201219，质量分数≥98%） 信阳市中检计量生物有限公司；D-无水葡萄糖（批号：110833-201908，质量分数≥98%）中国食品药品检定研究院；牛血清白蛋白（批号：NO.617C022，质量分数≥98%） 北京索莱宝科技有限公司；阿托伐他汀（批号：79961，质量分数≥98%）MedChemExpress公司。

ACQUITY UPLC I-Class超高液相色谱仪 美国沃特世公司；Xevo G2-XS Tof飞行时间质谱仪美国沃特世公司；EnVision2105高通量酶标仪筛选系 珀金埃尔默股份有限公司；UV-1780紫外可见分光光度计 岛津仪器（苏州）有限公司；Z-A-D4水生物实验养殖设备 上海海圣水族设备厂。

1.2 实验方法

1.2.1 冠突曲霉发酵桑寄生茶工艺的正交试验优化

1.2.1.1 主要化学成分权重系数的确定 层次分析法（Analytic Hierarchy Process，AHP）[18]是根据评价指标进行成对比较的优先判断矩阵方法。根据样品主要化学成分的含量，对各个评价指标进行量化，确定为9个层级，判断矩阵评分表见表1。计算各化学成分的权重系数，并进行方法学一致性检验。

表1 判断矩阵评分Table 1 Judgment matrix scoring table

1.2.1.2 正交试验的设计 通过前期单因素实验结果选出含水量（A）、渥堆时间（B）、菌液浓度（C）、发酵时间（D）等4因素的三水平构建L9（34）正交试验，因素水平设置如表2所示。按“常压气蒸A→渥堆B→调整含水量→常压气蒸→接种菌液C→发花D→干燥”工序进行样品制备。工序中步骤的上标字母代表该步骤考察的相关因素。

表2 正交试验各因素水平设置Table 2 Factors of orthogonal test

1.2.1.3 主要化学成分的测定及AHP化学成分评分对总黄酮[19]、茶多酚[20]、原花青素[21]、可溶性糖[22]、游离氨基酸[23]、可溶性蛋白[24]、水浸出物[25]进行含量测定，并以此作为考察指标进行AHP化学成分评分。

1.2.1.4 感官审评 参照GB/T 23776-2018《茶叶感官审评方法》[26]进行感官审评。感官审评得分=外形×0.2+汤色×0.15+香气×0.25+滋味×0.3+叶底×0.1。评分大致等级划分如表3所示。

表3 各指标评分标准Table 3 Scoring criteria of each index

1.2.1.5 样品总分的计算 参考张馨宇[24]多指标综合评价方法，样品总分=100×（AHP化学成分得分/AHP化学成分得分max×0.5+感官审评得分/感官审评得分max×0.5）。

1.2.2 斑马鱼幼鱼NAFLD模型建模和桑寄生茶活性测定

1.2.2.1 样品给药浓度的确定 取健康野生型（AB系）斑马鱼以雌:雄＝1:2比例于交配盒中，次日交配1.5 h后收取鱼卵，用斑马鱼胚胎水换洗5次，于恒温箱中28 ℃培养至受精后5 d（5 Day post fertilization，简称5 dpf），显微镜下挑取健康斑马鱼幼鱼用于实验研究。

分别精密称取正交试验最佳发酵样及原料样各3.000 g于250 mL锥形瓶中，加入沸水100 mL，于室温浸提45 min，过滤后用于实验。取5 dpf健康斑马鱼幼鱼于6孔板中，10条/孔，设置样品浓度为0.030、0.040、0.050、0.075、0.100、0.200、0.300、0.400、0.500、0.700 mg/mL，给药后每12 h更换一次药液，培养72 h后统计斑马鱼死亡情况，计算其72 h死亡率，确定样品给药浓度。

1.2.2.2 斑马鱼实验的构建及药效指标的确定 取5 dpf健康斑马鱼200条/缸于培养缸中培养，模型组以添加“0.1%蛋黄粉+5 mmol·mL−1硫代乙酰胺”的水溶液培养，桑寄生茶以发酵前后样品均为LC0的最大浓度给药，空白组投喂草履虫0.5 mL·500 mL−1，以120 μg·500 mL−1阿托伐他汀水溶液作阳性对照。

5 dpf斑马鱼幼鱼连续饲养72 h，空腹12 h后收样。每组随机挑取幼鱼40条于离心管中，加生理盐水100 μL，组织匀浆仪搅拌至均匀，2500 r/min离心10 min，取上清液用于TP、TC、TG、LDL-C、AST、ALT等生化指标的测定。

1.2.3 UPLC-Q-TOF-MS/MS色谱条件及差异代谢物筛选

1.2.3.1 溶液的制备 分别取发酵前后桑寄生茶干燥样品50 mg于50 mL 70%甲醇常温超声20 min，3000 r/min离心10 min，倒出上清液，样品加50 mL 70%甲醇重复提取一次，离心，合并上清液，定容至100 mL，过0.22 μm微孔滤膜，即得。

1.2.3.2 色谱与质谱条件 色谱柱：Thermo scientific Accucore C18柱（100×2.1 mm，2.6 μmol/L）；流动相：乙腈（A）-0.1%甲酸水溶液（B），梯度洗脱：5%～95%20 min，95% 3 min A；体积流速：0.4 mL/min；进样量：3 μL。

质谱条件：电喷雾电离源（ESI），正离子及负离子模式；一级质谱扫描范围m/z：100～1500，二级质谱扫描范围m/z：50～1500；锥孔电压：35 V；毛细管电压：2000 V；加热毛细管温度：350 ℃。

1.2.3.3 差异代谢物筛选 筛选条件：通过实验室自建数据库及公共数据库比对代谢物信息，并通过SIMCA 14.1对数据进行正交偏最小二乘判别分析（orthogonal projection to latent structure discrimination analysis，OPLS-DA）。通过OPLS-DA的VIP>1.0；结合单因素方差分析、差异倍数（Fold change，FC）≥2.0或FC≤0.5等条件筛选差异代谢物。

1.2.4 潜在机制

1.2.4.1 活性成分靶点与疾病靶点的收集 通过drugbank（https://go.drugbank.com/）、BindingDB（https://www.bindingdb.org/bind/index.jsp）、STITCH（http://stitch.embl.de/）数据库进行差异代谢物的靶点查找，个别无法查找的化合物通过SwissTraget-Prediction（http://www.swisstargetprediction.ch/）预测潜在靶点。通过UniProt（http://www.uniprot.org/）规范处理差异代谢物的靶点数据。以“nonalcoholic fatty liver disease”为关键词，通过genecard（https://www.genecards.org/）查找相关疾病靶点，筛选相关性得分大于10的基因。使用Venny 2.1.0（https://bioinfogp.cnb.csic.es/tools/venny/）将化合物靶点与疾病靶点进行交集处理并制作韦恩图。

1.2.4.2 PPI构建及核心靶点筛选 交集靶点上传String（https://stringdb.org），物种限定为“Homo sapiens”，获取蛋白质相互作用信息。筛选可信度（≥0.4）的网络关系，剔除游离靶点后将结果导入Cytoscape 3.6.0，根据度（degree，DE）、接近中心度（Closeness Centrality，CC）、度介中心度（Betweenness Centrality，BC）筛选核心靶点。

1.2.4.3 GO生物过程和KEGG信号通路富集分析通过DAVID（https://david.ncifcrf.gov/tools.jsp）对共同靶点进行GO及KEGG富集分析，阈值为差异的显著性（P-value，P）<0.05，整理分析数据，选择适量数据进行Origin 2021的气泡图及Cytoscape 3.6.0的网络可视化分析。

1.2.4.4 核心靶点与关键成分的分子对接 通过Auto Dock Tools 1.5.7处理PDB数据库（https://www.rcsb.org/）下载的关键蛋白3D结构与Chem Office制作的关键成分3D结构，去水加氢后转换为pdbqt格式文件，AntoDock Vina进行分子对接，pymol进行可视化处理。根据文献[27]报道，分子对接结果的结合能<-5.0 kcal·mol−1即有较好结合活性。

1.3 数据处理

除感官审评（n=6），斑马鱼NAFLD模型试验（n=5）外，所有试验重复3次。含量及生化指标结果以平均值正负标准差（mean±SD）表示，样品评分以平均值表示。采用IBM SPSS Statistics 25.0、Graph-Pad Prism 9.0和Origin 2021进行数据处理，单因素方差分析统计学意义，P<0.05表示差异显著。

2 结果与分析

2.1 正交试验结果

2.1.1 AHP构建权重系数的结果 经AHP层次研究，确定各化学成分的权重系数为总黄酮0.2121、茶多酚0.1220、原花青素0.1001、可溶性糖0.0680、游离氨基酸0.0563、可溶性蛋白0.0522、水浸出物0.3892。一致性比例因子CR=0.0081<0.10，即两两比较矩阵具有一致性，权重设置合理。AHP化学成分得分=100×[（样品总黄酮含量/总黄酮最大值）×0.2121+（样品茶多酚含量/茶多酚最大值）×0.1220+（样品原花青素含量/原花青素最大值）×0.1001+（样品可溶性糖含量/可溶性糖最大值）×0.0680+（样品游离氨基酸含量/游离氨基酸最大值）×0.0563+（样品可溶性蛋白含量/可溶性蛋白最大值）×0.0522+（样品水浸出物含量/水浸出物最大值）×0.3892]。

2.1.2 正交试验样品主要化学成分的含量测定结果通过单因素实验和正交试验制备冠突曲霉发酵桑寄生茶样品，以化学成分百分含量作为评价指标，AHP评分，结果如表4所示。对9个样品的AHP评分进行方差分析，含水量、渥堆时间、菌液浓度、发酵时间等四因素的F值均大于F0.01（2,2）=99.00，即四因素对样品得分均有极显著差异（P<0.01），详见表5。

表4 正交试验样品主要化学成分百分含量及AHP评分Table 4 Percentage content of main chemical components and AHP scores of orthogonal test samples

表5 方差分析Table 5 Anova analysis

2.1.3 正交试验样品主要成分的线性回归方程 正交试验样品总黄酮、茶多酚、原花青素、可溶性糖、游离氨基酸、可溶性蛋白等主要成分的线性回归方程如表6所示。

表6 主要考察指标线性回归方程Table 6 Linear regression equation of main indexes

2.1.4 感官评价结果 就外形、汤色、香气、滋味、叶底等方面对正交试验样品进行感官评价，结果如表7所示。

表7 正交试验样品感官评定结果（n=6）Table 7 Sensory evaluation results on samples of orthogonal test (n=6)

2.1.5 多指标综合评价样品总分结果 结合主要化学成分AHP得分及感官审评得分计算正交试验样品的总分，样品总分详见表8。结合表4可知最佳工艺为A1B3C2D1或A2B3C2D1，但在实际生产中发现，含水量较低时桑寄生叶及叶芽软化、浸润程度差异较大，且“金花”较少，为确保冠突曲霉发酵效果的稳定性与均一度，选择A3B3C2D1为最佳工艺，即含水量35%、渥堆时间3 h、接种量1×106CFU·mL−1和发酵时间7 d。

2.2 药效学研究结果

2.2.1 斑马鱼急性毒性结果 桑寄生茶发酵样的毒性较原料样明显降低。如图1所示，发酵组样品在浓度为0.200 mg·mL−1时达到LC0，而原料组LC0最大浓度为0.050 mg·mL−1，明显低于发酵组。选取两组样品均为LC0的最大浓度0.05 mg·mL−1作为给药浓度。

图1 发酵前后桑寄生茶水提物对斑马鱼的量-毒曲线Fig.1 Quantity-toxicity curves of zebrafish treated with water extract of Taxilli Herba tea before and after fermentation

2.2.2 发酵前后桑寄生茶对NAFLD模型斑马鱼的保护作用 “0.1%蛋黄粉+5 mmol·mL−1硫代乙酰胺”模型较空白组，TC、TG、LDL-C、AST、ALT等各生化指标均有显著性差异（P<0.05），即模型组达到NAFLD模型标准。与模型组相比，阿托伐他汀组与发酵组各生化指标均有显著性差异（P<0.05），即有明显的降血脂及抑制肝脏损伤功效。原料组中TC、TG与模型组无显著性差异（P>0.05），而在LDL-C、AST、ALT等生化指标中出现显著性差异（P<0.01），其结果符合传统认知中桑寄生“补肝肾”的功效特点，但其“补肝肾”功效与脂质代谢之间关系不显著。各组生化指标结果见表9。

表9 发酵前后桑寄生茶对NAFLD模型斑马鱼生化指标的影响（n=5）Table 9 Influence of Taxilli Herba tea before and after fermentation on biochemical parameters of zebrafish NAFLD model

2.3 UPLC-Q-TOF-MS/MS差异代谢物分析

通过UPLC-Q-TOF-MS/MS检测冠突曲霉发酵前后桑寄生茶样品，共得到32种化学成分，将32种化合物及其峰面积信息代入SIMCA 14.1进行OPLSDA分析。交叉验证R2Y和Q2均大于0.9，且R2YQ2<0.3，即样品间差异非常显著，如图2所示。通过SIMCA中Permutation进行200次随机改变分类变量Y的排列顺序进行置换检验，如图3所示，R2Y<0.4，且Q2Y<0.05，可排除背景相关，该模型稳健性好，无过拟合现象。

图2 发酵前后桑寄生茶OPLS-DA得分图Fig.2 OPLS-DA score diagram of Taxilli Herba tea before and after fermentation

图3 发酵前后桑寄生茶置换检验图Fig.3 Displacement test diagram of Taxilli Herba tea before and after fermentation

依据OPLS-DA模型得到的VIP值、单因素方差分析结果、FC等筛选条件，共筛选出14种差异代谢物，包含酚酸类6种，黄酮类3种，生物碱3种，鞣质1种，糖类1种，详见表10。其中海胆灵（Echinulin）和新海胆灵A（Neoechinulin A）为发酵后样品的特征性代谢产物，无法计算FC值。

表10 差异代谢物Table 10 Differential metabolites

2.4 基于差异代谢物的网络药理学分析

2.4.1 活性成分与疾病靶点筛选 对Drugbank、BindingDB、STITCH、SwissTraget-Prediction平台所查找基因去重后得到279个活性成分靶点。通过genecard收集NAFLD的相关靶点351个。对疾病靶点及成分靶点作靶点映射，筛选出潜在活性靶点32个，如图4所示。

图4 差异代谢物-非酒精性脂肪肝病靶点Fig.4 Targets of differential metabolites- nonalcoholic fatty liver disease

2.4.2 交集靶点PPI网络构建及核心靶点筛选 将32个交集靶点导入String构建蛋白相互作用（PPI）网络，剔除1个无相关作用靶点GCKR，得到由31个节点，144条边所组成的PPI网络，导入Cytoscape 3.9.0进行可视化分析，如图5所示。根据DE、BC、CC等3个拓扑参数进行核心靶点筛选，拓扑参数筛选阈值为均值（DE>9、BC>0.026、CC>0.582），得到7个核心靶点，核心靶点相关信息见表11。

表11 核心蛋白拓扑参数信息Table 11 Topological parameter information of core protein

图5 蛋白相互作用（PPI）网络图Fig.5 Network of protein-protein interaction

2.4.3 GO分析及KEGG通路富集分析 将交集靶点导入DAVID数据库进行GO及KEGG富集分析，P<0.05为条件，筛选得到GO条目124个，其中生物过程（BP）条目94个，细胞组分（CC）条目9个，分子功能（MF）条目21个。分别对生物过程、细胞组分、分子功能组成P值前10的条目进行可视化分析，结果如图6所示。生物过程方面，主要参与细胞的增殖与凋亡，对胆固醇、脂多糖、类固醇激素的调控等；细胞组分方面，与胞外空间、核体、内质网等细胞各个部分均联系密切；分子功能方面，与酶、药物、蛋白质、离子结合，及酶、蛋白质、激酶活性调节等功能有关。结果表明差异代谢物可通过生物学途径防治NAFLD。

图6 GO分析排名前10条目富集分析Fig.6 Enrichment analysis of top 10 items in GO analysis

根据筛选条件P<0.05得到KEGG信号通路46条，选取前20条目通路进行可视化分析，如图7所示。其中，HIF-1、癌症、胰岛素抵抗、肿瘤坏死因子信号通路被显著富集，为关键信号通路。此外，肝炎、脂肪细胞因子信号、NAFLD等肝脏功能相关信号通路也被富集，表明差异代谢物能通过多种信号通路发挥对NAFLD的防治作用。

图7 KEGG排名前20条目富集分析Fig.7 Enrichment analysis of top 20 items in KEGG

2.4.4 “差异代谢物-靶点-通路-疾病”调控网络的构建 选取14个差异代谢物、32个共同靶点及前20条KEGG信号通路导入Cytoscape 3.9.0构建“差异代谢物-靶点-通路-疾病”网络。该网络共有67个节点，184条相互作用直线。使用Analyze Network网络节点拓扑参数进行关键成分筛选，参数阈值为DE>5，BC>0.023，CC>0.380，得到2个关键成分，海胆灵和新海胆灵A，2个成分均为发酵后的特征性成分。其中，海胆灵作用于3个核心靶点LDLR、JUN、NR1H4，新海胆灵A作用于2个核心靶点EGFR、STAT3，即冠突曲霉发酵工艺能够产生多种成分并通过多种生物途径协同防治NAFLD。如图8。

图8 “差异代谢物-靶点-通路-非酒精性脂肪肝”网络Fig.8 Network of differential metabolite-targets-pathways-NAFLD

2.4.5 关键成分和核心靶点的分子对接验证PPI网络筛选的7个核心靶点与调控网络中2个关键成分按默认参数进行分子对接，结果见表12。除新海胆灵A与JUN基因结合能为-5 kcal·mol−1外，2种关键成分与核心靶点间结合能均<-5 kcal·mol−1，即2种关键成分与7个核心靶点的结合活性较好。

表12 关键成分与核心靶点的分子对接Table 12 Molecular docking of key compounds and core targets

3 讨论与结论

胰岛素抵抗、糖尿病、肝损伤、代谢功能异常等是NAFLD发病的独立危险因素及常见伴随表现[28]，因此，对于NAFLD的防治需兼顾多类型疾病靶点的调控。

发酵前桑寄生茶相关的核心靶点IL6、PTGS2均与肿瘤坏死因子的调节有关。IL6、PTGS2可通过系统介导肝细胞的凋亡，影响肝炎、急性肝衰竭的发病[29−31]。靶点IL6还参与胰岛素抵抗信号通路的调节，影响肥胖、2型糖尿病、非酒精性脂肪肝等[32−33]的发病。罗泽萍等[34]研究发现桑寄生醇提液具有改善2型糖尿病模型小鼠高血糖水平及肝肾并发症、保护肝肾功能的作用。即桑寄生茶在防治NAFLD方面具有影响糖脂代谢及炎症发生的优势。

冠突曲霉发酵桑寄生茶的关键成分海胆灵、新海胆灵A可作用于NR1H4、LDLR、JUN、EGFR、STAT3等靶点发挥对NAFLD的防治作用。EGFR靶点作用于糖酵解和葡萄糖的转运，且影响葡萄糖耐量[35]。EGFR还与JUN共同参与ErbB信号通路的调节，进而调节生物反应[36]。STAT3是蛋白酪氨酸激酶（JAk）/信号转导子转录激活子（STAT）的代表性信号传递子，JAk表达低的人群，其肥胖程度较严重[37]。STAT3还与IL6共同参与FoxO信号通路的调节，进而影响葡萄糖代谢、抗氧化应激等细胞生理活动[38]。此外，NR1H4可调控胆汁酸合成[39]、参与脂质代谢；LDLR可调控LDL-C的胞吞作用[40]，从而在NAFLD中发挥防治作用。冠突曲霉发酵桑寄生茶结合了桑寄生茶降血糖、抗炎，以及冠突曲霉代谢产物降血脂、降血糖的优势，为NAFLD的防治提供新的方案。

本研究优选了冠突曲霉发酵桑寄生茶的加工工艺：含水量35%、渥堆时间3 h、接种量1×106CFU·mL−1和发酵时间7 d。此条件下的冠突曲霉发酵桑寄生茶对NAFLD有显著的防治作用，网络药理学推测出关键成分海胆灵、新海胆灵A作用于NR1H4、LDLR、JUN、EGFR、STAT3等核心靶点，在此过程发挥重要作用，为深入研究冠突曲霉发酵桑寄生茶的药效物质基础和作用机制提供了理论基础，也为冠突曲霉发酵桑寄生茶开发成防治NAFLD的药膳、膳食补充剂等提供参考。