大花黄牡丹种子的质量评价及初步抗氧化活性研究

秦伟瀚，兰小中，瞿显友，樵星芳，刘 翔，徐元江，邹佳佳，何 丹*

1重庆医科大学药学院，重庆 400016；2重庆市中药研究院，重庆 400065；3西藏农牧学院，林芝 860000

大花黄牡丹(Paeonialudlowii)是我国芍药科芍药属牡丹组(sect.MoutanDC.)中8个品种之一，为西藏特有植物，属丛生落叶灌木，仅见于西藏东南部林芝地区[1,2]。大花黄牡丹花朵硕大，色彩绚丽，是极珍贵的牡丹观赏品种，其根及花瓣均可入药，具有一定食用、药用价值[3]。虽然大花黄牡丹具有较高的育种价值和观赏价值，却由于分布狭窄，种群持续减少，被《中国物种红色名录》列为濒危植物，已处于极危状态[4]。牡丹的化学成分研究主要集中在根部，对其他部位研究很少。自1753年以来，已有共180多个的化合物被分离出来。其化学成分主要包括：单萜类、单萜苷类、三萜类、酚类、鞣酸类、黄酮类等[5,6]。棕榈酸是生产蜡烛、肥皂、润滑脂、软化剂和合成洗涤剂的原料[7]。油酸有得天独厚的抗氧化功能，是目前最安全的健康脂肪酸。油酸能调节血脂水平，降低胆固醇，防止记忆力下降；同时对代谢紊乱、皮肤损伤等都有很好的疗效[8]。亚油酸可以软化心脑血管，降低血压与血脂，加快人体新陈代谢，能有效预防动脉硬化发生，能提高人体免疫力，促进骨骼发育，提高记忆力，也能延缓衰老[9]。亚麻酸是人体必需脂肪酸之一，能够降解血栓，预防心脑血管病、抑制癌症的发生和转移、抑制过敏反应和抗炎作用、抑制衰老、增强智力和保护视力等[10]。

近年来大花黄牡丹的研究主要集中在植物分类、生境群落以及栽培繁殖等领域[11-16]；化学成分及活性评价的相关报道较少，仅Zeng等[17]采用GC-MS法分析大花黄牡丹种子中棕榈酸、硬脂酸、油酸、亚油酸、亚麻酸的含量。Zhang等[18-20]在大花黄牡丹仁油中鉴定出了20种脂肪酸，而采用QAMS定量分析大花黄牡丹种仁中的棕榈酸、油酸、亚油酸、亚麻酸则未见报道。本研究将一测多评与指纹图谱相结合建立大花黄牡丹种子的质量评价方法，并通过DPPH法、Fe3+还原法对大花黄牡丹及油用牡丹种子的抗氧化活性进行对比评价。该实验结果有助于后续大花黄牡丹籽油、种皮的新产品研发，为大花黄牡丹深入综合开发利用提供科学依据，同时也为不同品种牡丹种子的质量评价提供有益思路。

1 材料与方法

1.1 仪器与设备

Agilent 6890N型气相色谱仪(美国，安捷伦科技有限公司)；TSQ 8000 Evo型三重四级杆气质联用仪(美国，赛默飞世尔科技公司)；Infinte M200 Pro型酶标仪(中国，北京五洲东方科技发展有限公司)；BJ-100型超高速中药粉碎机(中国，德清拜杰电器有限公司)；VGT-2013QT型超声清洗机(中国，固特超声公司)；BSA224S-CW型万分之一分析天平(德国，赛多利斯公司)；UV-3600i型紫外分光光度计(日本，岛津公司)；H3-18K型台式高速离心机(中国，湖南可成仪器设备有限公司)；SG60-1型榨油机(中国，通雨机械设备有限公司)；普及型pH计(德国，赛多利斯公司)；BHW-09C型恒温加热器(中国，上海博通化学科技有限公司)；Milli-Q Integral5型纯水仪(美国，Millipoer公司)。

1.2 材料与试剂

对照品棕榈酸甲酯(批号：A12A6L17796，含量≥97%)、油酸甲酯(批号：S16M9B61466，含量≥98%)、亚油酸甲酯(批号：K25N10S101770，含量≥98%)、亚麻酸甲酯(批号：S09O11B126531，含量≥98%)、十七烷酸甲酯(批号：S15H18C146523，含量≥98%)均购自上海源叶生物科技有限公司；维生素C(批号：1353736)购自上海泰坦科技股份有限公司。正己烷为农残级，三氟化硼、氢氧化钾、二甲基亚砜、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼、铁氰化钾、三氯乙酸、三氯化铁、磷酸二氢钠、磷酸氢二钠、乙醇、甲醇均为分析级。高纯氮气、氢气、氦气和干燥空气体积分数均为99.999%(重庆高德气体有限公司)。本研究所收集样品经重庆市中药研究院生药研究所刘翔副研究员鉴定为大花黄牡丹(PaeonialudlowiiD.Y.Hong)和油用牡丹(PaeoniasuffruticosaAndr.)的种子，样品信息见表1。

表1 牡丹种子样品信息表Table 1 Information of Peony seed sample

续表1(Continued Tab.1)

1.3 方法

1.3.1 GC-MS质谱条件

色谱柱采用Agilent DB-1701MS柱(0.25 mm×0.25 μm×30 m)；载气为高纯氦气；不分流模式；程序升温：起始温度50 ℃，保持3 min，以10 ℃/min的升温速率升至280 ℃，保持3 min；进样口温度250 ℃；传输线温度280 ℃；离子源为EI源；离子源温度300 ℃；质谱扫描范围40～500 Da；溶剂峰切除时间4 min；进样体积：1 μL。采用上述方法对甲酯化样品进行定性分析，共鉴定出5个色谱峰(见图1)，与其他几个成分相比较，十八烷酸甲酯的峰面积过小，不适合作为一测多评的含量检测指标。

图1 甲酯化样品的气质联用总离子流图Fig.1 GC-MS total ion chromatogram of methyl esterified sample注：1.棕榈酸甲酯；2.十八烷酸甲酯；3.油酸甲酯；4.亚油酸甲酯；5.亚麻酸甲酯。Note:1.Methyl palmitate;2.Methyl stearate;3.Methyl oleate;4.Methyl linoleate;5.Methyl linolenate.

1.3.2 GC色谱条件

色谱柱采用Agilent DB-FATWAX柱(0.25 mm×0.25 μm×30 m)；载气为高纯氮气；分流模式，分流比为10∶1；程序升温：起始温度160 ℃，不保持，以5 ℃/min的升温速率升至250 ℃，保持2 min；进样口温度270 ℃；氢火焰离子化检测器，检测器温度270 ℃；进样体积2 μL。

1.3.3 对照品溶液制备

精密称取棕榈酸甲酯、油酸甲酯、亚油酸甲酯、亚麻酸甲酯标准品适量于10 mL容量瓶中，加入正己烷溶解并定容至10 mL刻度线，混匀，即得质量浓度分别为2.01、1.97、1.99、1.95 mg/mL的混合溶液。再将上述混合对照品溶液以2倍体积逐级稀释至质量浓度为0.13 mg/mL的混合溶液。

1.3.4 供试品溶液制备

1.3.4.1 质量评价用供试品溶液制备方法

甲酯化反应是气相分析时常用的一种衍生化手段，是指在催化剂作用下使含羧基等沸点较高物质转变为气相可检测的甲酯的化学方法。可以使脂肪酸类成分在气相色谱中出峰更加对称尖锐，并且有利于保护气相色谱柱。

精密称取牡丹种仁粉末样品0.40 g于锥形瓶中，精密移入正己烷50 mL，称定重量，超声提取(功率300 W，频率40 kHz)1 h，再次称定重量，用正己烷补足减失重量，摇匀后过滤，取滤液4 mL于15 mL具塞玻璃试管中，精密加入2 mL氢氧化钾甲醇溶液(2 mol/L)，涡旋1 min，再精密加入1 mL三氟化硼溶液，涡旋1 min，静置5 min，取上层溶液，即得。

1.3.4.2 抗氧化活性评价用供试品溶液制备方法

牡丹种皮样品：称取10批次大花黄牡丹种皮各20.0 g，混合后于中药高速粉碎机中粉碎成细末，过80目筛，作为大花黄牡丹抗氧化活性评价用样品。称取不同产地牡丹种皮各200.0 g，于中药高速粉碎机中粉碎成细末，过80目筛，作为牡丹抗氧化活性评价用样品。精密称取上述牡丹种皮粉末0.5 g于具塞锥形瓶中，精密移入70%乙醇20 mL，称定重量，超声提取(功率300 W，频率40 kHz)30 min，再次称定重量，用70%乙醇补足减失重量，摇匀后以8 000 r/min离心5 min，取10 mL上清液于蒸发皿中，水浴挥干，用50%乙醇溶解定容至5 mL容量瓶，0.22 μm滤膜过滤，即得牡丹种皮样品的乙醇溶液。

牡丹籽油样品：称取10批次大花黄牡丹种仁各100.0 g，混合后作为大花黄牡丹抗氧化活性评价用样品。称取不同产地牡丹种仁各1 000.0 g，作为牡丹抗氧化活性评价用样品。将上述牡丹种仁匀速倒入榨油机中，在榨膛温度为240 ℃条件下进行冷榨。将榨得的牡丹籽油在高速离心机中以8 000 r/min离心10 min。精密称取上述牡丹籽油0.50 g，加入5 mL的二甲基亚砜(DMSO)溶液，混匀，即得牡丹籽油样品的DMSO溶液。

1.3.5 抗氧化活性评价方法

1.3.5.1 DPPH自由基清除能力测定方法

精密吸取“1.3.4.2”项下供试品溶液(0.05 g/mL)60 μL和3.94 mL DPPH溶液(0.1 mmol/L)于10 mL的EP管中混匀，室温避光孵育30 min后，取200 μL混合液于96孔板中，在517 nm处检测其吸光值(A样品)。以未加样品的溶剂作为空白对照，同法操作，检测空白对照的吸光值(A空白)，并取50 μL的维生素C(VC，0.60 g/mL)作参比，每组样品重复试验3次。牡丹籽样品对DPPH自由基清除率的计算公式：清除率=[(A空白-A样品)/A空白]×100%(A空白：空白对照组吸光度；A样品：试验组吸光度)。

1.3.5.2 Fe3+还原能力的测定方法

精密吸取“1.3.4.2”项下供试品溶液(0.10 g/mL)5 μL与2 mL 0.20 mol/L的磷酸盐缓冲溶液(pH=6.6)于10 mL的EP管中混匀，再加入2 mL 0.03 mol/L K3Fe(CN)6溶液，混匀。在50 ℃下孵育20 min后，加入200 μL 0.60 mol/L的C2HCl3O2溶液，混匀，1 000 r/mim离心10 min。取35 μL上清液、115 μL超纯水于96孔板中，混匀，再加100 mL 0.006 mol/L的FeCl3溶液，混匀后，在700 nm处检测吸光度(A样品)，以未加样品的溶剂作为空白对照，同法操作，检测空白对照的吸光值(A空白)，并取1 mL的丁基羟基茴香醚(BHA 600 μg/mL)作参比，每组样品重复检测3次。牡丹籽样品对Fe3+还原能力的计算公式：Fe3+还原能力=A样品-A空白(A样品：试验组吸光度，A空白：空白对照组吸光度)。

2 结果与分析

2.1 QAMS法测定牡丹种子中4种成分含量

2.1.1 外标法方法学考察

外标法方法学分别考察了线性、精密度、稳定性、重复性、回收率、检测限和定量限，结果显示(见表2)四个甲酯类成分在0.12～2.00 mg/mL浓度范围内线性关系良好；连续进样6次，所测成分RSD均小于1.5%，表明仪器精密度良好；样品制备后分别于0、2、4、8、12、24 h进样，所测成分RSD均小于2.0%，表明样品在24 h内稳定；重复性和回收率的RSD均小于2.0%，表明样品制备方法准确可靠。

表2 检测成分的方法学考察结果Table 2 Methodological investigation results of detected components

2.1.2 相对校正因子确定

精密吸取“1.3.3”项下不同质量浓度的混合对照品溶液2 μL，采用“1.3.2”项下色谱条件进样，记录不同质量浓度对照品的峰面积，按公式fk/x=AkCx/(AxCk) 计算各成分的相对校正因子，其中Ak、Ck分别为内参物峰面积和浓度，Ax、Cx分别为待测成分对照品的峰面积和浓度。相较于其他几个检测物，油酸甲酯峰面积最大、分离度高且理论塔板数高，因此选择以油酸甲酯为内参物，分别计算棕榈酸甲酯、亚油酸甲酯、亚麻酸甲酯的相对校正因子，结果见表3。

2.1.3 校正因子重现性考察

精密吸取“1.3.3”项下不同质量浓度的混合对照品溶液2 μL，进样分析；在2个实验室分别考察了Agilent 6890N、Shimadzu GC2010两种气相色谱仪，分流比5∶1、20∶1，柱流速0.80、1.20 mL/min，对相对校正因子的影响，结果RSD均<2%，表明一测多评方法具有良好的重现性，结果见表4。

表3 相对校正因子计算结果Table 3 Results of relative correction factor

表4 校正因子重现性考察结果Table 4 Results of reproducibility investigation of correction factors

2.1.4 色谱峰定位

分别考察在“1.3.2”项中各色谱条件下，以油酸甲酯为内参物，分别计算棕榈酸甲酯、亚油酸甲酯、亚麻酸甲酯组分相对保留时间的重现性，结果表明相对保留时间的RSD均<1%，可用于待测成分色谱峰的定位，结果见表5。

表5 相对保留时间考察结果Table 5 Results of relative retention time investigation

2.1.5 QAMS法与外标法结果比较

将产于西藏、山东、安徽、江苏、河南的牡丹种子样品，按照“1.3.4.1”项下方法制备供试品，按照“1.3.2”项下色谱条件采集峰面积，分别采用外标法和QAMS计算4种成分含量，结果见表6。将10个产地大花黄牡丹含测结果进行平均后，棕榈酸、油酸、亚油酸、亚麻酸的含量分别为2.40%、13.65%、8.62%、8.10%；将4个主产区牡丹含测结果平均后，棕榈酸、油酸、亚油酸、亚麻酸的含量分别为1.13%、10.85%、16.70%、18.96%。棕榈酸为饱和脂肪酸，在大花黄牡丹种子中棕榈酸的含量要超过牡丹约2倍，含量最高的是S2批，为2.61%，含量最低的是江苏产牡丹，为1.01%。油酸为单不饱和脂肪酸，大花黄牡丹种子中油酸的含量要略高于牡丹，而其中S9批(米林县丹娘乡)含量为所有批次样品中最低，达10.43%；牡丹中油酸含量最高的是河南产牡丹，为11.26%。亚油酸和亚麻酸同为多不饱和脂肪酸，牡丹含量约为大花黄牡丹含量的2倍，亚油酸含量最高的是山东产牡丹，为17.68%，最低的是S9批，为6.81%；而亚麻酸含量最高的是山东产牡丹，为19.37%，最低是S9批，为6.92%。

为确定QAMS的准确性，将两种方法计算结果进行t检验(Microsoft Excel软件；选择T.TEST函数，在Array中选中一组数据，Tails选双尾检验，Type选双样本等方差假设)，两组结果的P值均>0.05，表明两种方法计算的质量分数结果差异无统计学意义，可见QAMS法以亚油酸甲酯作为参比来准确测定牡丹种仁中其它3种成分含量是可行的。

表6 QAMS法与外标法的含量比较结果Table 6 Content comparison results of QAMS method and external standard

续表6(Continued Tab.6)

2.2 大花黄牡丹指纹图谱研究

2.2.1 参照峰选择

牡丹种仁样品经过甲酯化后有5个共有峰，其中油酸甲酯色谱峰不仅分离度好，且峰面积较大，故选择3号峰(油酸甲酯)作为内参峰，用以计算各共有峰的相对保留时间和相对峰面积。

2.2.2 精密度试验

精密称取牡丹种仁样品(S1批)0.40 g，采用“1.3.4.1”项下方法制备供试品溶液，采用“1.3.2”项下色谱条件连续进样6次，记录色谱图，分别计算相对峰面积与相对保留时间的RSD值。运用中药色谱指纹图谱相似度评价系统软件(2004年A版)，计算不同产地样品GC谱图的相似度。结果各共有峰相对保留时间的RSD均<0.11%，相对峰面积的RSD均<0.27%，指纹图谱的相似度均>0.99。表明仪器精密度良好。

2.2.3 稳定性试验

精密称取牡丹种仁样品(S1批)0.40 g，采用“1.3.4.1”项下方法制备供试品溶液，采用“1.3.2”项下色谱条件分别于0、2、4、8、12、24 h进样，记录色谱图，分别计算相对峰面积与相对保留时间的RSD值。结果各共有峰相对保留时间的RSD均<0.14%，相对峰面积的RSD均<1.17%，指纹图谱的相似度均>0.99。表明该方法稳定性良好。

2.2.4 重复性试验

精密称取牡丹种仁样品(S1批)0.40 g，采用“1.3.4.1”项下方法平行制备六份供试品溶液，采用“1.3.2”项下色谱条件进样，记录色谱图，分别计算相对峰面积与相对保留时间的RSD值。结果各共有峰相对保留时间的RSD均<0.08%，相对峰面积的RSD均<0.51%，指纹图谱的相似度均>0.99。表明该方法重复性良好。

2.2.5 指纹图谱建立

将10批不同产地的大花黄牡丹样品按照 “1.3.4.1”项下方法制备供试品溶液，按照“1.3.2”项下色谱条件进行测定，将样品图谱中各共有峰积分后生成AIA格式文件，并导入《中药色谱指纹图谱相似度评价系统》(2004年A版)，通过设参照谱、多点校正、自动匹配、生成对照等功能进行自动拟合，生成大花黄牡丹种子的指纹图谱(见图2)。

图2 大花黄牡丹种仁的GC指纹图谱Fig.2 GC fingerprints of seed kernel of P.ludlowii

共有峰相对保留时间的RSD均<0.14%，相对峰面积的RSD均<1.28%。以标准指纹图谱R为对照对样品图谱进行相似度评价，相似度结果见表7。相似度范围为0.999～1，表明不同产地大花黄牡丹种子相似度良好。

表7 相似度计算结果Table 7 Resultsof similarity calculation

2.2.6 共有峰归属指认

将油酸甲酯、亚油酸甲酯、十八烷酸甲酯等标准品采用“1.3.3”项下方法制备标准品溶液。精密称取S1批样品0.40 g，采用“1.3.4.1”项下方法制备供试品溶液。采用“1.3.2”项下色谱条件进样，记录色谱图，通过比较样品与标准品各色谱峰的保留时间，对共有峰进行成分归属，结果见图3。

图3 指纹图谱共有峰Fig.3 Fingerprint chromatogram of common peak注：1.棕榈酸甲酯；2.十八烷酸甲酯；3.油酸甲酯；4.亚油酸甲酯；5.亚麻酸甲酯。Note:1.Methyl palmitate;2.Methyl stearate;3.Methyl oleate;4.Methyl linoleate;5.Methyl linolenate.

2.2.7 主成分分析(PCA)

将牡丹样品的气相色谱数据导入SIMCA-P软件(版本号：14.1)，通过Score Scatter Plot分析(见图4)发现，大花黄牡丹样品(II类)与牡丹样品(I类)分别聚类，表明西藏的大花黄牡丹种仁中主要成分含量与牡丹有较大差异，这与定量分析结果一致。大花黄牡丹第九批(S9)样品的数据点远离聚类中心，可能与该批样品采自米林县丹娘乡有关；这也表明，大花黄牡丹虽然产自西藏林芝地区，但海拔、土壤、气候等地理环境的变化仍然可以较大影响其种子中化学成分。

2.3 牡丹种子抗氧化活性评价

2.3.1 DPPH自由基清除能力测定

DP是一种早期合成的有机自由基，常用来评估抗氧化物的供氢能力，它在有机溶剂中非常稳定，呈紫色，而且在处有一个特征吸收峰，当遇到自由基清除剂时，DPPH的孤对电子被配对而使其退色，也就是在最大吸收波长处的吸光值变小。因此，可通过测定吸光值的变化来评价样品对DPPH自由基的清除效果。

按照“1.3.5.1”项下方法进行实验，DPPH实验结果见表8。由结果可知，籽油清除率最高的是江苏产牡丹，为37.56%，大花黄牡丹籽油清除率(30.14%)虽然要低于江苏产牡丹，但要高于河南产牡丹(27.33%)、山东产牡丹(17.27%)和安徽产牡丹(18.27%)。而大花黄牡丹种皮的清除率最高，为63.62%，要明显高于牡丹样品。表明大花黄牡丹种皮有较强的自由基清除能力，即抗氧化活性强。

图4 主成分分析结果Fig.4 Results of PCA

表8 大花黄牡丹与牡丹样品的DPPH自由基清除率Table 8 DPPH radical scavenging rate of P.ludlowii and

2.3.2 Fe3+还原能力的测定

还原力的测定是检验样品是否是良好的电子供体的方法，还原力强的样品应该是良好的电子供应者，它供应的电子不仅能使Fe3+还原为Fe2+，也可以与自由基反应。还原力的测定是用来评价抗氧化剂活性的常用方法。

按照“1.3.5.2”项下方法进行实验，Fe3+还原能力实验结果见表9。由结果可知，相较于牡丹样品，大花黄牡丹籽油和种皮的Fe3+还原能力均为最高，分别为0.24 Abs和1.01 Abs，但种皮的Fe3+还原能力是BHA对照的两倍，而籽油则仅为BHA对照的一半，表明大花黄牡丹种皮的抗氧化能力更为明显。

表9 大花黄牡丹与牡丹样品的Fe3+还原能力Table 9 Fe3+ reduction ability of P.ludlowii and

续表9(Continued Tab.9)

3 讨论与结论

经课题组实地考察和查阅文献可知，大花黄牡丹仅分布于西藏的林芝市。由指纹图谱结果可以看出，10个批次大花黄牡丹样品的相似度均高于0.99，说明林芝地区所产的大花黄牡丹相似度较高。结合相似度结果表明大花黄牡丹分布集中且变异较小；通过PCA分析结果可以看出，大花黄牡丹与其他几个产地的牡丹样品区分明显。QAMS法计算结果和外标法计算结果基本一致，说明QAMS法可以用于牡丹种仁中多成分的定量分析，同时也为全国其他品种牡丹籽的质量控制提供了一种新的可靠方法。由含量结果可以看出，山东、河南、安徽、江苏产牡丹种仁样品中4种成分含量接近，而大花黄牡丹与四个产地牡丹种仁中4种成分含量差异较大；大花黄牡丹样品中棕榈酸和油酸含量为四产区牡丹样品的2倍，而亚油酸、亚麻酸含量仅为牡丹样品的一半。亚油酸、亚麻酸属于不饱和脂肪酸，是评价成品油质量的重要影响因素，大花黄牡丹样品中不饱和脂肪酸含量较低，是否说明其籽油的质量低于牡丹品种，还有待进一步考证。

经DPPH自由基清除率测定和Fe3+还原能力测定，大花黄牡丹种皮的抗氧化活性要明显高于其他几个产地牡丹样品。大花黄牡丹生长在高海拔地区，其紫外线较内地要强，是否在种皮中产生了大量能够抵御强紫外线的活性成分，如黄酮类、花青素类、芪类等，这些成分所具有的抗氧化作用或许是造成大花黄牡丹种皮抗氧化活性高的原因。大花黄牡丹籽油的自由基清除率为30.14%，河南产牡丹与之接近为27.33%，山东产牡丹和安徽产牡丹的清除率不足20.00%，仅江苏产牡丹的清除率(37.56%)高于大花黄牡丹；而Fe3+还原能力测定结果表明，大花黄牡丹籽油的还原能力虽然最高，为0.24 Abs，但与其他几个产地牡丹样品测定结果相差不大，由此可见大花黄牡丹籽油的抗氧化活性与牡丹相较并不明显。

牡丹籽油无急性毒性、遗传性毒性和亚急性毒性，食用安全性高。因此，牡丹籽油被营养学家称为“世界上最好的油”。亚麻酸是人体所需的重要营养物质，牡丹籽油富含亚麻酸，有广阔的发展前景。牡丹籽油中维生素E和角鲨烯具有较强抗氧化作用，而功能性脂肪酸和甾醇等活性物质也具有清除自由基作用，以上成分或是牡丹籽油抗氧化活性的来源[21]。研究发现，牡丹籽油极易被皮肤吸收，可广泛应用于食品化妆品领域，具有抗衰老、防紫外线、消炎等功能[22]；牡丹籽油的生产过程中还会产生大量副产品，如蛋白质和药用成分含量较高的牡丹籽饼。目前，已将其深加工为牡丹蛋白质粉、牡丹营养棒和牡丹休闲食品等。而籽饼中所含亚麻酸、亚油酸、牡丹酚和牡丹皂甙等药用成分，经过纯化后可作为医药原料。牡丹种皮具有较好的抗氧化功效，其制品已应用于药品、保健品和化妆品领域[23]。由此可见，将大花黄牡丹种子进一步加工成有长期经济效益的高附加值产品，必将产生良好的经济效益和社会效益。