细胞周期相关因子3在乳腺癌组织中的表达及对乳腺癌细胞增殖的影响
2022-11-07吴元肇郑克思陈艳梅
吴元肇,曾 勇,郑克思,陈艳梅
(温州市人民医院 1.肿瘤外科;2.病理科,浙江 温州 325000)
乳腺癌作为国内外常见的女性恶性肿瘤,是导致女性死亡的主要原因之一。根据2022年美国癌症协会(ACS)统计,预计在2022年,中国发病率前5位的癌症为肺癌、肠癌、胃癌、肝癌与乳腺癌。临床常通过局部手术联合化疗、内分泌治疗以及靶向药物等综合手段治疗乳腺癌,患者往往能得到较好救治。然而,对于特殊类型三阴性乳腺癌(triple negative breast cancer,TNBC),临床暂无有效内分泌治疗方法及靶向策略。另外,临床观察发现,对于内分泌治疗和靶向药物有效的患者,在经过一线及二线治疗后,常产生耐药性,极大限制了其治疗效果。因此,对乳腺癌的发生发展机制进行深入研究,对寻找新的治疗靶点、开发新型治疗方法具有极大临床意义。
细胞周期相关因子3(cell division cycle associated protein 3,CDCA3),作为F Box蛋白,是细胞有丝分裂过程中必需的胞质蛋白,对细胞周期、DNA复制等多种生物过程具有重要的调节作用。研究表明,CDCA3在多种恶性肿瘤发生发展过程中均呈高表达水平,抑制CDCA3蛋白表达,可降低肿瘤细胞活性,抑制肿瘤细胞增殖。然而,CDCA3在乳腺癌中的表达和功能研究较少。因此,本课题组收集临床不同分期乳腺癌组织,利用生化实验结合生物信息学方法分析CDCA3蛋白水平与乳腺癌预后的相关性;同时构建稳定敲低CDCA3基因的乳腺癌细胞株,进一步研究CDCA3在乳腺癌致病机制中的作用,以期为乳腺癌的靶向治疗提供临床实验基础。
1 材料与方法
1.1 免疫组化检测CDCA3在乳腺癌组织标本中的表达 收集我院2020年1月—10月乳腺癌标本库中乳腺癌组织(不同组织型或者不同分期如早期中期晚期)41例,癌旁组织标本40例。本研究通过温州市人民医院伦理委员会审核并备案。采用免疫组化法检测乳腺癌组织和癌旁组织中CDCA3的表达水平,严格按照试剂盒说明书进行操作(CDCA3抗体:Amresco),试剂盒购自卡迈舒(上海)生物科技有限公司。倒置显微镜下,根据细胞染色的强弱直观评分:-阴性(无染色),+弱阳性(淡黄色),++阳性(棕黄色),+++强阳性(棕色)。
1.2 GEPIA平台分析CDCA3在乳腺癌组织中的表达情况 通过GEPIA平台(http://gepia.cancer-pku.cn/)分析相对于正常乳腺组织,乳腺癌中CDCA3基因表达的差异,基因名称选择“CDCA3”,Dataset(Cancer name)选择“BRCA”。
1.3 Kaplan-Meier Plotter数据平台分析CDCA3与乳腺癌预后的关系 登录Kaplan-Meier Plotter数据平台(http://kmplot.com/analysis/),检索CDCA3基因,获得CDCA3基因表达差异患者的生存曲线(对肿瘤病理类型及临床分期、分级等不做限制)。
1.4 细胞株构建与CDCA3检测 利用shRNA构建稳定干扰CDCA3表达的乳腺癌MCF7细胞株(Sh1,Sh2)及对照组细胞(NC)。培养MCF7乳腺癌细胞株(培养基:DMEM+10%FBS,细胞培养条件为5% CO,37 ℃),DMEM购自美国Sigma公司,胎牛血清购自美国Gibco公司;胰酶和DMSO购自美国Amresco公司。通过慢病毒包装系统构建稳定干扰CDCA3基因表达的乳腺癌细胞株(PLKO.1-CDCA3shRNA)及对照组细胞(汉恒生物,siRNA: Invitrogen,美国)。
取对数期细胞,PBS冲洗3遍,蛋白提取试剂盒提取总蛋白(Pierce,美国),加入5×上样缓冲液,100 ℃ 水浴锅煮沸5 min后冷却待用。SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳分离蛋白,移至PVDF膜,于脱脂牛奶中室温封闭1 h,PBST洗膜10 min×3次,一抗稀释液4 ℃ 孵育过夜,次日PBST洗膜10 min×3次,加入辣根过氧化物酶标记的二抗稀释液室温反应2 h,PBST洗膜10 min×3次,ECL显影并分析条带灰度。
1.5 细胞增殖检测 分别收集对数生长期的稳定干扰CDCA3基因表达的MCF7细胞和对照组细胞,血球计数板计数后加入四块96孔板中,5 000个细胞/孔,每个孔加入100 μL培养基,设置3复孔。待细胞贴壁后取出一块96孔板,每孔中加入10 μL CCK8溶液作为起始对照样本,37 ℃、5% CO细胞培养箱内继续孵育0.5 h,于分光光度计450 nm波长处测定吸光值,保存数值。另三块96孔板按药物浓度依次加入含药培养基,终体积100 μL,37 ℃、5% CO条件下分别培养24 h、48 h、72 h。取出加药的96孔板,每孔加入10 μL CCK8溶液,37 ℃、5% CO细胞培养箱内继续孵育0.5 h,450 nm测定吸光值,保存数值并分析。
1.6 乳腺癌细胞周期变化检测 收集转染48 h后的细胞,清洗离心后用固定液配置细胞悬液(1×10个/mL),加入10 μL试剂B(70-APCC101,联科生物,中国),室温避光孵育30 min。利用流式细胞仪(Becton-Dickinson,美国)、软件FACS express version 3,分析细胞周期变化情况。
1.7 基因集富集分析(gene set enrichment analysis, GSEA) 通过GEO数据库下载5套亚洲人乳腺癌基因芯片数据集(GSE6367、GSE9309、GSE15852、GSE33447和GSE45255),共获得318例乳腺癌和60例正常乳腺组织的基因表达谱数据。根据CDCA3基因表达水平高低分为两组,利用GSEA(GSEA3.0版本)分析CDCA3的表达水平对各种生物通路基因集的影响。按默认加权富集统计方法,以从GSEA网站MsigDB数据库中获得的基因集作为参照基因集,置换次数为1 000次。
1.8 统计方法 采用Graghpad Prism 8.0软件进行数据分析,计量资料组间比较应用Anova联合检验。<0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 CDCA3在乳腺癌组织中的表达水平 本院标本的免疫组化分析结果显示,乳腺癌组织中CDCA3蛋白表达量(1.83±0.72)显著高于癌旁组织(1.02±0.51),差异有统计学意义(<0.001)。GEPIA数据平台中,共收集正常乳腺组织112例、乳腺癌组织1 085例,分析结果显示,CDCA3在乳腺癌中的表达水平显著高于正常乳腺组织,差异有显著统计学意义(<0.05),见图1。
图1 CDCA3在乳腺癌组织及癌旁组织(正常组织)中表达量的比较
2.2 CDCA3表达与乳腺癌患者预后的关系 Kaplan-Meier Plotter数据库分析结果显示,高表达CDCA3的乳腺癌患者50个月总体生存率(57.21%)低于CDCA3低表达者(70.22%),差异具有统计学意义(<0.05),见图2。
图2 CDCA3表达水平与乳腺癌患者预后的相关性
2.3 各组乳腺癌MCF7细胞增殖情况 Western blot检测结果显示,与对照组相比,Sh1组和Sh2组的CDCA3蛋白表达量明显降低,可稳定敲低CDCA3表达(图3A)。CCK8检测结果显示,与对照组相比,Sh1组和Sh2组在48 h和72 h的细胞增殖出现显著抑制,差异具有统计学意义(<0.05),见图3B。
A.各组细胞中CDCA3蛋白表达量;B.各组细胞的增殖情况;与对照组(NC)比较,*P<0.05。
2.4 下调CDCA3后肿瘤细胞周期变化 流式细胞仪检测结果显示:与对照组(NC)细胞相比,敲低CDCA3后的MCF7细胞株(Sh1,Sh2)G1期显著延长,差异具有统计学意义(< 0.05),细胞周期的S、G2期差异无统计学意义(> 0.05),见图4。
与对照组(NC)比较,*P<0.05。
2.5 各组细胞NF-кB信号转导通路相关蛋白表达情况 免疫印迹实验结果显示,下调CDCA3表达后,与对照组相比,Sh1组和Sh2组的NF-кB1(p50)、RelA(p65)蛋白表达减少,差异具有统计学意义(< 0.05),见图5。
A.各组细胞免疫印迹实验结果;B.各组细胞NF-кB1(p50)蛋白表达;C.各组细胞RelA(p65)蛋白表达;与对照组(NC)比较,*P<0.05。
2.6 CDCA3高表达样本的富集基因集 利用GSEA分析平台对CDCA3高表达的乳腺癌细胞样本富集基因进行分析,结果如表1所示:CDCA3高表达的乳腺癌细胞存在与NF-кB信号通路、E2F信号通路、mTOR信号通路、有丝分裂纺锤体、PI3K-AKT-mTOR信号通路、G1S 检查点、糖酵解、未折叠蛋白反应、胆固醇平衡等相关的基因集。
表1 CDCA3高表达的乳腺癌样本的GSEA
3 讨论
乳腺癌被认为是危害女性健康的“头号杀手”,并以每年3.1%的速度增长。现有靶向治疗方法(如HER-2抗体或内分泌治疗)虽有较好的疗效,但无法适用于所有乳腺癌患者,且常会不可避免地产生耐药等问题。因此,探索乳腺癌发生发展高敏感性生物学指标,找寻新的生物治疗靶点具有重大临床意义。
已报道CDCA3是胃癌的潜在诊断标志物,可以促进胃癌细胞的生长。结直肠癌中,上调的CDCA3表达与结直肠癌的浆膜浸润、TNM分期呈正相关。在非小细胞肺癌中,CDCA3能够通过降解细胞周期抑制分子,进一步促进肿瘤细胞增殖,已被作为非小细胞肺癌的诊断标志物和治疗靶点。已有实验证实,前列腺癌中Homeobox B3可通过绑定到CDCA3启动子区,活化CDCA3蛋白,促进前列腺癌的发展进程。然而,乳腺癌中CDCA3的具体机制仍未完全清晰。
本研究结果显示,在收集的乳腺癌患者样本中,乳腺癌组织CDCA3的表达量显著高于癌旁组织,TCGA数据库分析亦显示CDCA3基因在乳腺癌中的表达水平显著高于正常乳腺组织。同时,通过Kaplan-Meier Plotter数据库分析显示,CDCA3表达与乳腺癌患者的预后呈负相关,提示CDCA3低表达的患者具有更好的生存时间和预后转归。进一步利用慢病毒包装系统,成功构建稳定敲低CDCA3的乳腺癌细胞株,CCK8细胞增殖检测结果显示CDCA3基因干扰能够显著抑制乳腺癌细胞MCF7的增殖活性,提示CDCA3在乳腺癌的发生发展中发挥重要作用。
CDCA3为细胞周期分裂相关蛋白家族成员,是S期激酶相关蛋白1(SKP1)/淘汰素(Cullin1)/F-box(SCF)E3泛素连接酶复合物的一部分,可通过调节有丝分裂抑制激酶weel的降解过程,介导细胞周期的进展,被称为进入有丝分裂的“触发因子”。前期研究报道证实,结肠癌细胞SW480中敲减CDCA3后,在体内和体外均可观察到细胞增殖出现显著抑制,其可能机制为细胞周期G1到S期的转换停滞。而本实验中我们同样观察到,CDCA3下调后细胞周期的G1期显著延长,且可能与调节增殖相关NF-кB通路蛋白相关。另一方面,GSEA分析结果显示,CDCA3亦可能通过多种与细胞周期相关的生物学过程(如G1S检查点、未折叠蛋白反应、有丝分裂纺锤体等)、多种与肿瘤增殖相关的信号通路(E2F信号通路、NF-кB信号通路、mTORC1以及PI3K-AKT-mTOR信号通路)以及多种代谢相关的生物学过程(糖酵解和脂肪平衡)调节乳腺细胞增殖,促进癌细胞生长。
综上所述,CDCA3在乳腺癌组织中表达显著增加,且CDCA3的表达水平与乳腺癌患者的预后呈显著负相关,在乳腺癌细胞中干扰CDCA3表达可显著抑制乳腺癌细胞增殖。同时,结合生物信息学分析提示CDCA3可能是乳腺癌进展的关键分子,是预防和治疗乳腺癌的潜在生物标志物和治疗靶点。但是,本研究尚未对CDCA3促进乳腺癌的发生发展的机制进行研究,将在今后研究中进一步探索。