半仿生酶法提取艾叶挥发油及微囊化制备工艺
2022-07-18黄宇玫郭建业袁钰锋李梦含蒋柏泉
黄宇玫,郭建业,袁钰锋,李梦含,蒋柏泉,b
(南昌大学a.科学技术学院,江西 共青城 332020;b.化学化工学院,江西 南昌 330031)
艾叶(又名艾草,艾蒿)具有较高的药用价值,是我国南方很普遍的一种中草药,来源广泛,价廉易得。艾叶含多种生物有效活性成分,其中主要的有效活性成分之一是挥发油。艾叶挥发油主要应用于化工医疗、食品安全、保健等各个领域,是食品、香料和生化工业中的一种重要原料[1],目前从艾叶中提取挥发油已经成为重要的研究热点之一。
艾叶挥发油成分主要由脂肪类、萜类和芳香类化合物构成,约100余种,主要为桉油精、侧柏酮、龙脑、α-松油醇、β-松油烯、柠檬醛等,因其药效成分复杂,提取得率较低,挥发油味道浓郁且易变质,难以保存。有关艾叶挥发油的化学成分、药理作用的研究较多[2-3],但其制剂的研究鲜有报道。中药材中植物药占90%,其有效成分大多包裹在细胞壁中,传统的热水、酸、碱、有机溶剂浸提法,因受细胞壁纤维素的阻碍,往往提取效率较低。利用一定量的纤维素酶处理这些中药材,可改变细胞壁的通透性,提高药效成分的提取率。半仿生法是从生物药剂学的角度出发,结合中医所强调的整体观,在传统的分子药物研究法的基础上加入整体药物研究法,对口服药物在胃肠道转运过程的环境加以模拟,用近似胃肠道pH值的酸性或碱性提取液,依次连续提取得到药物中有效成分的提取新技术,这样提取得到的挥发油可以减轻机体消化的负担,更利于人体的吸收[4-5]。艾叶挥发油气味浓郁,易于挥发,微胶囊的作用可以屏蔽味道,改变体积、状态,降低挥发性,起到隔离的作用。
本实验采用酶辅助半仿生法提取艾叶挥发油,确定其最优提取工艺条件,并用复合凝聚法制备艾叶挥发油微胶囊,评价其生物利用率,为后续挥发油产品的开发利用提供一定的理论依据,使艾叶资源具有更广泛的应用前景。
1 材料与方法
1.1 材料与仪器
干艾叶(南阳仙草药业有限公司);盐酸、无水乙醇、氢氧化钙、甲醇、无水硫酸钠、石油醚(60~90 ℃)、乙酸、氯化钙、硫酸、丙酮,均为分析纯;纤维素酶(酶活力为10 000 U·g-1,福州飞净生物科技有限公司);胃蛋白酶(国药集团);明胶、阿拉伯胶(国药集团化学试剂有限公司)。
MH-250型调温型电热套,北京科伟永兴仪器有限公司;PH050A型干燥箱,上海一恒科技有限公司;磁力搅拌器,郑州杜甫仪器厂;BA210型三目显微镜,麦克奥迪有限公司;TDL-50B型离心机,上海一恒科技有限公司
1.2 原料的预处理
将干燥的艾叶用粉碎机粉碎,然后过筛(筛孔尺寸为0.250 mm),得到艾叶粗粉后贮存备用。
1.3 艾叶挥发油的提取
依据半仿生酶法[6-7],称取艾叶粗粉10 g,置于250 mL圆底烧瓶中,然后往圆底烧瓶中加入一定量水,调节溶液的pH为2.0,充分震荡使其形成均一相,置于一定温度的恒温水浴锅中加热一定时间后过滤,取出滤液1。将滤渣重新置于圆底烧瓶中,继续加入水一定量,调节溶液的pH为4.5,然后加入0.05 g纤维素酶,充分震荡均匀后,置于一定温度的恒温水浴锅中加热一定时间后过滤,取出滤液2。将第2次分离出的滤渣置于圆底烧瓶中添加水一定量,调节溶液的pH为7.5,然后置于一定温度的恒温水浴锅中加热一定时间后过滤,取出滤液3。将第3次分离出的滤渣置于圆底烧瓶中并添加水一定量,调节溶液的pH为8.3,置于一定温度的恒温水浴锅中加热一定时间后过滤,取出滤液4。将4次提取出的滤液合并,然后用水蒸气蒸馏装置蒸馏,得到油水混合物,加入石油醚用分液漏斗萃取,静置分层,放出下层水分,将上层的有机层倒出,将分液后的石油醚萃取液用无水硫酸钠除去剩余的水分,减压浓缩即得艾叶挥发油,最后将艾叶挥发油称重,计算最终提取率[8]。
艾叶挥发油提取率的计算:
y=m1/m×100%
式中:y为挥发油提取率,%;m1为艾叶挥发油质量,g;m为艾叶粗粉质量,g。
1.4 艾叶挥发油提取工艺的优化
1.4.1 提取温度的选择
取10 g艾叶粗粉,根据上述半仿生酶法的步骤,固定提取时间和料液比,设置水浴温度分别为40,50,60,70,80 ℃,考察不同温度对艾叶挥发油提取率的影响,并确定较适宜的提取温度[9]。
1.4.2 提取时间的选择
取10 g艾叶粗粉,利用上述半仿生酶法的步骤,固定提取温度(1.4.1确定的较适宜提取温度)和料液比,设置提取时间分别为1.0,1.5,2.0,2.5,3.0 h,考察不同提取时间对艾叶挥发油提取率的影响,并确定较适宜的提取时间。
1.4.3 料液比的选择
取10 g艾叶粗粉,利用上述半仿生酶法的步骤,固定提取温度(1.4.1确定的较适宜提取温度)和提取时间(1.4.2确定的较适宜提取时间),设置料液比分别为1:6,1:8,1:10,1:12和1:14,考察不同料液比对艾叶挥发油提取率的影响,并确定较适宜的料液比。
取单因素实验初步确定的较适宜的提取温度,提取时间和料液比作为考察因素,每个因素各选取3个水平,以挥发油提取率为考察目标,采用L9(34)正交实验设计进行实验,确定最佳工艺参数[9]。
1.5 微胶囊的制备与稳定性测试
采用复合凝聚法[10]。该方法是一种将芯材分散在两种带相反电荷的混合壁材溶液中,通过改变体系的pH值、温度等因素,使混合壁材溶液相互作用形成复合物,随后降低溶解度,使其凝聚,析出,形成微胶囊的方法。
1.5.1 明胶-阿拉伯胶混合溶液的制备
称取5 g明胶,加入100 mL蒸馏水,浸泡一段时间使明胶溶胀后于60 ℃下加热溶解,50 ℃下保存备用。称取5 g阿拉伯胶,加入100 mL蒸馏水,40 ℃下加热溶解,45 ℃下保存备用。
45 ℃下两者混合水浴加热。
1.5.2 微胶囊的制备
将4 mL艾叶挥发油滴加到混合溶胶中,45 ℃下水浴加热,滴加6%乙酸溶液,调节pH至4左右,2 500 r·min-1分散3 min。将400 mL 30 ℃左右的温水加入到混合溶液中,1 500 r·min-1下搅拌30 min后,放置于冰浴中降温至10 ℃。随后加入2 mL的37%甲醛溶液搅拌15 min进行固化。加入4%NaOH溶液调节pH值为8,一直搅拌,直至有沉降物析出,静置[11-12]。
待沉降完全后,用滴管吸取上清液,在3 500 r·min-1下离心15 min,最后将得到的微囊用蒸馏水洗至无甲醛味,放入干燥箱中于30 ℃下干燥即得。用吸管取一滴微胶囊悬浮液,滴在载玻片上,显微镜下拍照观察。
1.5.3 稳定性测试方法
模拟胃液的配制:精密量取23.4 mL浓盐酸倒入100 mL容量瓶,加水稀释定容,制成10%稀盐酸溶液。
取稀盐酸1.64 mL于烧杯,加适量水稀释将稀盐酸pH调节为2,加入胃蛋白酶1 g摇匀,溶液转移至100 mL容量瓶,加水稀释定容即得。
模拟胃液耐受性考察:100 mL烧杯中加入1 g微胶囊,加入配置好的模拟胃液10 mL,摇匀,于恒温油浴锅中37 ℃、160 r·min-1,搅拌溶解,每隔半小时调节pH。释放特性:根据以下公式计算微胶囊的释放率。
式中:F为微胶囊释放率,%;mt为时间t内释放的挥发油的质量,g;m0为初始微胶囊中挥发油的质量,g。
贮藏稳定性考察:分别取1 g微胶囊在20,40,60 ℃恒温箱中放置10 h后测微胶囊释放率。
2 结果与讨论
2.1 单因素实验
2.1.1 提取温度的影响
艾叶挥发油提取率随提取温度的变化见图1。
θ/℃图1 提取温度对挥发油提取率的影响Fig.1 Effet of extraction temperature on yield of volatile oil
由图1可知,当提取温度从40 ℃升到60 ℃时,艾叶挥发油提取率随温度升高而提高,且在60 ℃时达最高值,但是当温度从60 ℃升温到80 ℃时,艾叶挥发油提取率呈下降趋势。由此可知,温度升高有利于艾叶挥发油提取率的提高,但温度过高反而会使提取率下降,由于温度过高使酶活性下降,导致分解艾叶细胞壁效果降低。参考同类实验[13],本实验取60 ℃为较适宜的提取温度。
2.1.2 提取时间的影响
艾叶挥发油提取率随提取时间的变化见图2。
由图2可知,当提取时间从1.0 h增加到2.0 h时,艾叶挥发油的提取率有显著的提高,但当提取时间继续延长至3.0 h后,发现艾叶挥发油提取率变化不大,说明在本实验条件下,当提取时间达到2.0 h时,艾叶挥发油提取率已接近最大值,再增加提取时间意义不大,且增加能源损耗,因此本实验取2 h为较适宜的提取时间。
t/h图2 提取时间对挥发油提取率的影响Fig.2 Effet of extraction time on yield of volatile oil
2.1.3 料液比的影响
艾叶挥发油提取率随料液比ρ的变化见图3。
ρ/(g·mL-1)图3 料液比对挥发油提取率的影响Fig.3 Effet of power/liquid ratio on yield of volatile oil
由图3可知,当料液比ρ在(1:6)~(1:12)范围内,艾叶挥发油的提取率呈上升趋势,且在料液比为1:12时达到最高。由此可知,当料液比高时,艾叶粗粉不能充分与水接触,挥发油浸出量低;随着料液比减小,加入的水量增大,挥发油与水之间两相的接触面积增大,有利于挥发油的自由扩散和溶解析出,使得提取率得以升高。但当料液比小于1:12后,提取率不升反降,且增加能耗。因此本实验取1:12为较适宜的料液比。
2.2 正交实验
在单因素实验的基础上,分别选取提取温度θ=60 ℃、提取时间t=2.0 h和料液比ρ=1:12为中心水平,以提取率为考察目标,进行三因素三水平正交实验设计并开展实验L9(34),确定艾叶挥发油提取的最佳工艺参数。
正交实验因素与水平见表1。
表1 实验因素与水平Tab.1 Factors and levels of experiment
正交实验结果见表2。
表2 半仿生酶法优化正交实验结果Tab.2 Semi bionic enzyme orthogonal test results
由表2可知,3个因素的极差分别为:提取温度(RA)1.02,提取时间(RB)0.88,料液比(RC)0.57,它们之间的大小关系为RA>RB>RC,由此可得出3种因素对艾叶挥发油提取率的影响大小为:A(提取温度)>B(提取时间)>C(料液比)。表中第5组实验(A2B2C3)所获得的提取率为9组实验中最大(2.20%),但小于单因素实验较适宜组合(A2B2C2)时的提取率(2.23%)。又根据KA2>KA3>KA1,KB3>KB2>KB1,KC2>KC3>KC1,可得另一可能的最优组合为A2B3C2,但该组合实验未在表2中出现,按此条件做3次平行实验,得平均提取率为2.24%,略高于因素水平组合A2B2C2的提取率。
考虑节省时间和能耗,最终确定酶辅助半仿生法提取艾叶挥发油的最优参数为A2B2C2,即提取温度60 ℃,提取时间2.0 h,料液比1:12,在此条件下可获得较高的挥发油提取率。
2.3 微胶囊性能测试
2.3.1显微镜观察
按1.5.2制备的艾叶挥发油的微胶囊。图4为100倍显微镜下的微胶囊图。
图4 100倍显微镜下艾叶挥发油微胶囊图Fig.4 Microcapsules of Artemisia vulgaris volatile oil at 100x magnification
在显微镜下观察可见,微胶囊呈双层结构,可以清晰地观察到内部包裹着油状液体,包被完整。
2.3.2 载药量
载药量L的计算公式如下:
式中:m3为微囊内药量,g;m2为微囊总质量,g;L为载药量,%。
表3 3次实验的测量结果Tab.3 Result of three experiments
2.3.3 包埋率
包埋率E的计算公式如下:
式中:m5为微囊表面油含量,g;m4为加入总油量,g。
2.3.4 稳定性测定结果
2.3.4.1 对模拟胃液的耐受性
微胶囊在模拟胃液中随时间的变化见表4。
2.3.4.2 在模拟消化液中的释放特性
在模拟消化液中时间与释放率之间的关系见图5。
t/h图5 时间与释放率之间的关系Fig.5 Relationship between time and release rate
不同食物在胃液中停留时间各不相同,水仅停留几分钟,油脂类最长可达5 h,艾叶挥发油微胶囊在模拟消化液中的释放曲线如图5所示,在模拟胃环境中壁材逐渐破裂,在前3 h内由于内外浓度差大,释放速度较快,而后由于胃酸不能完全水解壁材,浓度差降低,挥发油的释放速度明显降低,4 h过后释放量率达到60%后几乎不变,说明在胃液环境中已完成主要成分的释放。
2.3.4.2 稳定性
温度与释放率之间的关系见图6。
θ/℃图6 温度与释放率之间的关系Fig.6 Relationship between temperature and release rate
由于复合壁材在高温情况下遭到破坏,出现缝隙,因此芯材会以一定速度释放,由图6可以观察分析出温度升高到40 ℃之后,阿拉伯胶开始溶解,胶囊壁开始出现裂痕,释放少量芯材,60 ℃后到达明胶熔点后,胶囊壁完全裂解,芯材释放率增加,超过60%,由此可以看出胶囊稳定性很好,常温下因为壁材的保护不易挥发,可以提高挥发油常温的保存率,同时提高了挥发油的热稳定性。
3 结论
以艾叶为原料,通过半仿生酶法提取艾叶挥发油,在设计单因素实验的基础上进一步采用正交实验优化工艺参数。在酶辅助半仿生法提取艾叶挥发油的条件下,发现提取温度对提取率影响最大,其次是提取时间和料液比。确定的最佳提取工艺参数分别是提取温度为60 ℃,提取时间为2 h,料液比为1:12,提取率为2.23%。将提取的艾叶挥发油利用复合凝聚法制备微胶囊,最优的壁材配比为阿拉伯胶与明胶1:1,加入少量吐温,乳化效果更好,用壁材量20%的甲醛进行交联,搅拌转速2 500 r·min-1,包埋率可达到83.5%,效果最佳。经过模拟胃液测试证明制备的微胶囊可以稳定释放,且常温下能够稳定保存,极大地提高了艾叶挥发油的保存率和热稳定性。