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胰高血糖素样肽-1 受体激动剂融合蛋白纯度反相高效液相色谱检测方法的建立及验证

2022-05-19高雪峰王婉如郑伟峰杨军张艳丽马亚茹陈勇

中国生物制品学杂志 2022年4期
关键词:耐用性激动剂纯度

高雪峰,王婉如,郑伟峰,杨军,张艳丽,马亚茹,陈勇

兰州生物制品研究所有限责任公司第四研究室 甘肃省疫苗工程技术研究中心,甘肃 兰州 730046

糖尿病是血葡萄糖水平缓慢升高的慢性代谢性疾病,可导致多种并发症,严重时可危及生命。糖尿病分为1 型和2 型,主要是由遗传和环境因素引起的代谢紊乱,导致胰岛素不敏感、胰岛素缺乏和生物学功能受损。不健康饮食、运动减少、超重、肥胖及衰老等因素,均有可能提高糖尿病发病率[1]。2019 年,全球约有4.63 亿20 ~ 79 岁的糖尿病患者,预计至2030 年,患者将达5.78 亿,2050 年将超过7 亿[2]。

胰高血糖素样肽-1(glucagon-like peptide-1,GLP-1)是一种肠促胰岛素,通过与GLP-1 受体结合发挥降血糖作用,但GLP-1 易被二肽基肽酶-4(dipeptidyl peptidase-4,DPP-4)分解,从而造成药物疗效降低[3]。如礼来公司(Eli Lilly and Company)的艾塞那肽需每天注射2 次才能有效控制血糖[4-7],后续该公司基于Fc 片段连接2 个GLP-1 分子研发出的长效GLP-1 受体激动剂(杜拉鲁肽)已成功上市,具有注射间隔长、降糖效果好、低血糖风险低和心血管获益的优点[8-13]。兰州生物制品研究所有限责任公司研发的GLP-1 受体激动剂融合蛋白是将2 个GLP-1 受体激动剂与Fc片段相连,通过优化基因结构,极大延长了药物在体内半衰期[14-16],减少了注射频次,提高了患者的依从性。反相高效液相色谱(reverse phase high-performance liquid chromatography,RP-HPLC)是由非极性固定相和极性流动相组成的液相色谱体系,是目前液相色谱中最主要的分离模式,几乎可用于所有能溶于极性或弱极性溶剂中的蛋白质。RP-HPLC 通过蛋白质的保留性质及选择性进行非极性、极性或离子型物质分离,分析待测样品的纯度。本实验参考《中国药典》三部(2015 版)蛋白质类药物纯度的检测方法[17],建立用于GLP-1 受体激动剂融合蛋白纯度检测的RP-HPLC 法,并进行验证,以期用于药物的质量控制和评价。

1 材料与方法

1.1 样品及参比品 GLP-1 受体激动剂融合蛋白(批号:H-20181109、H-20181211、H-20190301、H-2019-0603、H-20190704、H-20190805,宿主细胞残余DNA、HCP、Protein A 等杂质含量均合格)及其参比品(SECHPLC 纯度:99.57%,批号:20180505,浓度:6.9 mg/mL)均由兰州生物制品研究所有限责任公司第四研究室提供。

1.2 主要试剂及仪器 三氟乙酸购自美国TEDIA公司;乙腈购自美国Fisher 公司;抗凝血酶-Ⅲ(antithrombin-Ⅲ,AT-Ⅲ)及睫状神经营养因子(ciliary neurotrophic factor,CNTF)均由兰州生物制品研究所有限责任公司第四研究室自制;1200 Infinity Series 高效液相色谱系统、Agilent ZORBAX 300Extend-C18(4.6 mm × 150 mm)分析柱和ZORBAX 300Extend-C18(4.6 mm × 12.5 mm)保护柱均购自美国Agilent公司;脱气滤膜和针头滤器购自美国Millipore 公司。

1.3 方法的建立 取GLP-1 受体激动剂融合蛋白待检样品100 μL,用纯水稀释至0.25 mg / mL,经针头滤器过滤。采用Agilent ZORBAX 300Extend-C18(4.6 mm × 150 mm)分析柱和ZORBAX 300Extend-C18(4.6 mm × 12.5 mm)保护柱。色谱条件:流动相A 液:0.1%三氟乙酸水溶液;流动相B 液:0.1%三氟乙酸的乙腈溶液;上样体积:100 μL;抽取速度:200 μL / min,排出速度:200 μL / min;工作流速:0.50 mL / min;A 相溶液平衡系统至基线平稳,开始进样;0~5 min:0~50%B;5~15 min:50%~60%B;15 ~ 20 min:60% ~ 100% B;20 ~ 30 min:100% B;8 min:100%A;检测波长:280 nm;柱温箱温度:40 ℃。

1.4 方法的验证

1.4.1 系统适用性 将GLP-1 受体激动剂融合蛋白参比品稀释至0.25 mg / mL,按1.3 项方法进行上样,记录色谱图,计算塔板数和对称因子,理论塔板数应>10 000,峰对称性应>0.5。

1.4.2 专属性 将空白对照(稀释剂)、GLP-1 受体激动剂融合蛋白参比品(稀释为0.25 mg / mL)、阴性对照(AT-Ⅲ和CNTF)按1.3 项方法进行上样,记录色谱图,稀释剂、AT-Ⅲ和CNTF 色谱图应无干扰峰,GLP-1 受体激动剂融合蛋白与AT-Ⅲ和CNTF 分离度应>1.5。

1.4.3 灵敏度 将GLP-1 受体激动剂融合蛋白参比品稀释至10 μg / mL,与空白对照(稀释剂)按1.3 项方法进行上样,计算信噪比(S / N),以S / N 为1 ∶3时的浓度为灵敏度。

1.4.4 精密性

1.4.4.1 重复性 将GLP-1 受体激动剂融合蛋白参比品稀释为0.25 mg / mL,按1.3 项方法连续进样6 次,计算进样峰面积百分比和保留时间的相对标准偏差(relative standard deviation,RSD),峰面积百分比RSD 及保留时间RSD 均应≤2%。

1.4.4.2 中间精密度 将GLP-1 受体激动剂融合蛋白参比品稀释为0.25 mg / mL,由2 名实验人员(A 和B)按1.3 项方法进样,每人各3 份,连续检测3 d,每天进样1 针。计算6 次进样峰面积百分比和保留时间的RSD,峰面积百分比RSD 及保留时间RSD 应≤2%。

1.4.5 耐用性 高效液相色谱系统柱温分别调整为35、40、45 ℃。将GLP-1 受体激动剂融合蛋白参比品稀释为0.25 mg / mL,按1.3 项方法进样,每个温度进样2 次,计算6 次进样峰面积百分比和保留时间的RSD,峰面积百分比RSD 及保留时间RSD应≤5%。

1.5 方法的初步应用 采用建立的RP-HPLC 法对6 批GLP-1 受体激动剂融合蛋白的纯度进行检测。

2 结 果

2.1 方法的验证

2.1.1 系统适用性 GLP-1 受体激动剂融合蛋白参比品保留时间为9.4 min,对称因子为0.64,理论塔板数为26 891,见图1。表明系统具有良好的适用性。

图1 系统适用性验证色谱图Fig.1 Chromatogram of verification for system suitability

2.1.2 专属性 GLP-1 受体激动剂融合蛋白参考品、AT-Ⅲ及CNTF 的保留时间为9.4、9.9、13.8 min,空白对照及阴性对照色谱图无干扰峰,GLP-1 受体激动剂融合蛋白与阴性对照分离度均>1.5,见图2。表明该方法具有良好的专属性。

图2 专属性验证色谱图Fig.2 Chromatogram of verification for specificity

2.1.3 灵敏度 建立的RP-HPLC 法检测GLP-1 受体激动剂融合蛋白的灵敏度为4.8 μg / mL。

2.1.4 精密性

2.1.4.1 重复性 连续6 次进样的峰面积分别为2 843.72、2 858.67、2 860.93、2 856.70、2 871.85、2 869.14 μV·s,均值为2 860.17 μV·s,RSD 为0.35%;保留时间分别为9.418、9.417、9.411、9.414、9.414、9.400 min,均值为9.412 min,RSD 为0.07%。两者RSD 均≤2.0%,表明该方法具有良好的重复性。

2.1.4.2 中间精密度 实验员A 连续3 d 检测的保留时间分别为9.444、9.424、9.428 min,峰面积分别为2 893.01、2 951.43、2 774.55 μV·s;实验员B 连续3 d 检测的保留时间分别为9.445、9.441、9.447 min,峰面积分别为2 939.07、2 663.07、2 901.55 μV·s。6 次检测峰面积的RSD 为0.75%,保留时间RSD 为0.07%,均≤2.0%,表明该方法具有良好的中间精密性。

2.1.5 耐用性 3 种温度下,每个温度进样2 次,共6 次进样的峰面积的RSD 为3.93%,保留时间RSD 为0.10%,均≤5.0%,见表1。表明该方法具有良好的耐用性。

表1 耐用性验证结果Tab.1 Verification for durability

2.2 方法的初步应用 批号为H-20181109、H-20181211、H-20190301、H-20190603、H-20190704、H-20190805的GLP-1 受体激动剂融合蛋白的纯度分别为98.9%、98.6%、99.2%、99.2%、99.4%、100.0%,均>95.0%。

3 讨 论

一般需结合两种不同原理的方法对重组蛋白原液的纯度进行检测,如SDS-PAGE 法结合HPLC 法。HPLC 法具有准确、快速、微量等检测优点,在生物制品研发及生产中,能够较好地完成蛋白原液纯度检测[18-24]。

蛋白质纯度是重组蛋白制备工艺中一项重要检测指标,不仅能评价分离工艺的有效性,还对制品的质量属性起到重要的监测作用,建立一种快速、准确的检测方法是监测产品质量的基础环节。参照《中国药典》四部(2015 版)0512 外标面积归一化法和ICH 指导原则、9101 药品质量标准分析方法验证指导原则[25-26],本研究采用Agilent ZORBAX 300Extend-C18 分析柱及保护柱建立了GLP-1 受体激动剂融合蛋白纯度的RP-HPLC 检测法,并进行了验证。结果显示,该方法与阴性对照分离度均>1.5;中间精密度峰面积及保留时间RSD均<2.0%;重复性峰面积及保留时间RSD 均<2.0%;耐用性峰面积和保留时间RSD 均<5.0%;该方法的灵敏度为4.8 μg / mL。

综上所述,本研究建立的RP-HPLC 法具有良好的灵敏度、适用性、重复性、耐用性、且简单快捷,适用于GLP-1 受体激动剂融合蛋白纯度的检测,为产品工艺进一步开发提供了可靠的监测手段。

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