APP下载

Klotho、ET-1 在新生血管性青光眼患者中表达及临床意义

2022-03-07郭九春吕静

中国中医眼科杂志 2022年1期
关键词:房水新生视网膜

郭九春,吕静

新生血管性青光眼(neovascular glaucoma,NVG)是房角纤维血管增生引起小梁网阻塞,进而导致虹膜粘连、房角关闭、房水循环障碍和眼内压升高,降眼压药物治疗效果差,往往需要手术治疗[1]。NVG 发病机制尚不清楚,可能与炎性反应、新生血管因子生成、细胞外基质作用、氧化应激等有关[2]。新生血管形成是NVG 发病的主要病理机制之一,探讨与新生血管相关的分子机制有助于早期诊断、指导临床治疗、评估病情进展。Klotho 是一种抗衰老相关蛋白,其表达缺失与动脉粥样硬化、器官萎缩、骨质疏松、认知功能障碍等老年性疾病有关,近年来研究发现Klotho 对维持血管正常功能有重要作用[3]。内皮素-1(endothelin-1,ET-1)是参与炎症反应过程的血管活性物质,具有收缩血管、调节血管内皮细胞生成、分化和迁移作用[4]。Klotho、ET-1 是否参与NVG 发病和疾病进展过程尚不清楚,其机制尚待探讨,本研究检测NVG 患者房水、血清中Klotho、ET-1 水平,分析其与血管内皮生长因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)、炎性因子和疾病进展的关系,旨在为临床治疗、病情评估提供理论依据。

1 对象与方法

1.1 研究对象

选择2016 年8 月—2019 年10 月滨州市第二人民医院眼科住院病房收治的NVG 患者(NVG 组)62 例(62 只眼)。另选择同期眼科收治的年龄相关性白内障患者51 例(51 只眼)为对照组。NVG 组:男34 例,女28 例,年龄48~59 岁,平均(53.26±4.12)岁,左眼25 例,右眼37 例。Teich 分级:Ⅱ级13 例,Ⅲ级25 例,Ⅳ级24 例。原发病分布:视网膜静脉阻塞20 例,糖尿病性视网膜病变15 例,原发性青光眼9 例,视网膜母细胞瘤8 例,眼外伤6 例,其它4 例,其中视网膜静脉阻塞合并高血压病16 例,糖尿病性视网膜病变合并高血压病7 例,原发性青光眼合并高血压病5 例。手术治疗方式:全视网膜光凝手术24 例,青光眼滤过手术29 例,全视网膜光凝手术联合抗VEGF 药物治疗5 例,青光眼滤过手术联合抗VEGF 药物治疗4 例。对照组:男28 例,女23 例,年龄46~60 岁,平均(54.02±4.37)岁,左眼21 例,右眼30 例。2 组年龄、性别、患眼分布比较差异无统计学意义(P>0.05),本研究已获得医院伦理委员会批准(2018-12-045)。

1.2 诊断标准、纳入标准和排除标准

诊断标准:(1)有原发病的病史或体征;(2)眼压>21 mmHg(1 mm Hg=0.133 kPa),多数伴有眼痛、畏光、视力下降等症状;(3)虹膜表面及前房角可见到新生血管,瞳孔散大,瞳孔缘色素外翻[5]。

根据虹膜新生血管Teich 分级标准[6]分为,Ⅰ级:虹膜瞳孔缘新生血管0~1 个象限;Ⅱ级:虹膜瞳孔缘新生血管>2 个象限;Ⅲ级:虹膜瞳孔缘及睫状体存在新生血管和/或葡萄膜外翻1~3 个象限;Ⅳ级:虹膜瞳孔缘及睫状体存在新生血管和/或葡萄膜外翻>3 个象限。

纳入标准:(1)符合NVG 诊断标准;(2)单眼患NVG;(3)对照组经系统检查排除眼底疾病、青光眼、眼内感染、眼内肿瘤等疾病,亦无全身系统性疾病;(4)患者及其家属均知情同意并签署同意书。

排除标准:(1)合并葡萄膜炎、玻璃体炎、眼内肿瘤等眼科疾病;(2)妊娠期NVG 患者;(3)合并急慢性感染、免疫系统疾病、恶性肿瘤者;(4)合并有精神系统疾患或未成年患者。

1.3 方法

1.3.1 标本采集方法 入院后第2 d 清晨采集空腹静脉血标本5 ml,经离心(4℃,3,000 r/min,离心时间15 min,离心半径10 cm),取血清保存于-80℃超低温冰箱(Thermo Fisher 公司)待检。房水采集方法:开睑,常规消毒结膜囊,生理盐水冲洗后无菌纱布拭干,于眼球切口前采用1 ml 无菌注射器抽取约0.15 ml房水,注入无菌试管中-80℃保存待检。

1.3.2 Klotho、ET-1、炎性细胞因子指标检测 ALISEI 全自动酶标仪(意大利SEAC 公司)采用酶联免疫吸附试验检测血清、房水中Klotho、ET-1、VEGF、白细胞介素6(interleukin-6,IL-6)、白细胞介素8(interleukin-8,IL-8)、肿瘤坏死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)水平,试剂为美国Epitope Diagnostics 公司。

1.4 统计学方法

采用SPSS 25.0 进行数据的处理和分析,计量资料采用均数±标准差()进行描述,Student t 检验或One-Way 方差分析组间差异。计数资料以率(%)表示,采用χ2检验。采用Pearson 相关系数(r)描述Klotho、ET-1 与炎性因子、VEGF 之间相关性,采用Spearman 秩相关系数(r)描述Klotho、ET-1 与Teich 分级之间相关性,所有统计均采用双侧检验,检验水准α=0.05,以P<0.05 表示差异有统计学意义。

2 结果

2.1 血清、房水中Klotho、ET-1 水平比较

NVG 组房水、血清中Klotho 水平低于对照组,t房水=14.486,t血清=10.000,均P=0.000。ET-1 水平高于对照组,t房水=42.086,t血清=30.066,均P=0.000,均有统计学意义(P<0.05)(表1)。

表1 2 组血清、房水中Klotho、ET-1 水平差异()

表1 2 组血清、房水中Klotho、ET-1 水平差异()

注:* 与对照组同亚组比较,P<0.05。ET-1 内皮素-1;NVG 新生血管性青光眼

2.2 患者血清、房水中VEGF 及炎性细胞因子比较

VEGF:NVG 组房水、血清中VEGF 水平高于对照组,t房水=78.161,t血清=34.949,均P=0.000,均有统计学意义(P<0.05)(表2)。

IL-6:NVG 组房水、血清中IL-6 水平高于对照组,t房水=56.977,t血清=18.686,均P=0.000,均有统计学意义(表2)。

IL-8:NVG 组房水、血清中IL-8 水平高于对照组,t房水=44.505,t血清=23.069,均P=0.000,均有统计学意义(表2)。

TNF-α:NVG 组房水、血清中TNF-α 水平高于对照组,t房水=15.659,t血清=11.096,均P=0.000,均有统计学意义(表2)。

表2 2 组血清、房水中VEGF、IL-6、IL-8、TNF-α 水平差异()

表2 2 组血清、房水中VEGF、IL-6、IL-8、TNF-α 水平差异()

注:* 与对照组同亚组比较,P<0.05。NVG 新生血管性青光眼;VEGF 血管内皮生长因子;IL-6 白细胞介素6;IL-8 白细胞介素8;TNF-α 肿瘤坏死因子α

2.3 不同Teich 分级患者血清、房水Klotho、ET-1水平比较

NVG 患者血清、房水Klotho 水平随着Teich 分级的增加而降低(F房水=16.352,F血清=8.569,均P=0.000),ET-1 水平随着Teich 分级的增加而升高(F房水=23.651,F血清=12.351,均P=0.000),各亚组间差异均具有统计学意义(P<0.05)(表3)。

表3 不同Teich 分级患者血清、房水中Klotho、ET-1水平差异()

表3 不同Teich 分级患者血清、房水中Klotho、ET-1水平差异()

注:a 与Ⅱ级组同亚组比较,P<0.05;b 与Ⅲ级组同亚组比较,P<0.05。ET-1 内皮素-1

2.4 不同Teich 分级血清、房水VEGF 及炎性细胞因子比较

VEGF:NVG 组房水、血清中VEGF 水平随着Teich 分级的增加而升高,F房水=23.165,F血清=19.354,均P=0.000,均有统计学意义(表4)。

IL-6:NVG 组房水、血清中IL-6 水平随着Teich分级的增加而升高,F房水=18.241,F血清=21.054,均P=0.000,均有统计学意义(表4)。

IL-8:NVG 组房水、血清中IL-8 水平随着Teich分级的增加而升高,F房水=13.264,F血清=16.342,均P=0.000,均有统计学意义(表4)。

TNF-α:NVG 组房水、血清中TNF-α 水平随着Teich 分级的增加而升高,F房水=14.243,F血清=16.351,均P=0.000,均有统计学意义(表4)。

表4 不同Teich 分级患者血清、房水中VEGF、IL-6、IL-8、TNF-α 水平差异()

表4 不同Teich 分级患者血清、房水中VEGF、IL-6、IL-8、TNF-α 水平差异()

注:a 与Ⅱ级组同亚组比较,P<0.05;b 与Ⅲ级组同亚组比较,P<0.05。VEGF 血管内皮生长因子;IL-6 白细胞介素6;IL-8 白细胞介素8;TNF-α 肿瘤坏死因子α

2.5 NVG 患者Klotho、ET-1 水平与炎性细胞因子、VEGF、Teich 分级相关性

NVG 患 者Klotho 水 平 与VEGF、IL-6、IL-8、TNF-α、Teich 分级均呈负相关(P<0.05),ET-1 与VEGF、IL-6、IL-8、TNF-α、Teich分级均呈正相关(P<0.05)(表5)。

表5 NVG 患者Klotho、ET-1 水平与炎性细胞因子、VEGF、Teich 分级相关系数

3 讨论

NVG 是以虹膜、角膜新生血管形成引起的眼压升高为特征的眼内疾病,该病主要发病机制是视网膜毛细血管网闭塞造成的视网膜缺血缺氧,进而诱导新生血管生长相关细胞因子释放,导致视网膜新生血管[7]。VEGF 是作用较强的促内皮细胞增殖和血管生成的细胞因子,正常人视网膜色素上皮细胞低度表达VEGF,发挥维持视网膜血管系统稳定性和正常功能作用[8]。VEGF 通过与其受体结合激活磷脂酰胆碱特异性磷脂酶C 和蛋白酶C,促使内皮细胞增生、迁移,血管通透性增加,促使新生血管形成[9]。本研究NVG 组房水、血清VEGF 水平均高于对照组,这与多数研究结果一致[10-11],提示VEGF 过表达可能是导致NVG 发病和病情进展的主要机制之一。VEGF 合成、表达受多种炎性细胞因子、表皮生长因子、胰岛素样生长因子等细胞因子调节,上述因子共同作用下促使了NVG 新生血管形成[12]。探讨与VEGF 密切相关的生物学指标有助于明确NVG 发病机制,为临床治疗提供参考。

Klotho 是由5 个外显子和4 个内含子组成的膜结合或可溶性抗衰老基因,在肾、脑、血管、上皮组织、视网膜、神经组织等有广泛的分布,具有调节钙磷代谢、保护心血管系统、抗炎、抗氧化、抗细胞凋亡等作用[13]。Klotho 缺乏可导致血管钙化、内皮功能损害,血管正常功能异常[14]。Klotho 是否参与NVG 新生血管形成尚不清楚,本研究发现NVG 患者房水、血清中Klotho 水平均低于对照组,Klotho 水平随着虹膜新生血管分级的增加而降低,Klotho 水平与Teich 分级呈负相关,说明Klotho 缺失可能是NVG发病和病情进展的主要因素,检测血清Klotho 水平可为临床NVG 病情严重程度判断提供参考。推测Klotho 参与NVG 的发病和病情进展的可能机制为:Klotho 基因表达缺失状态下,血管内皮细胞凋亡增加,血管完整性受损,收缩功能障碍[15],导致视网膜血流灌注不足,局部组织在缺血缺氧刺激下进一步诱导VEGF 表达,进而促使新生血管形成。Klotho 合成越少,新生血管生成越多,NVG 患者Teich 分级越高,Klotho 可作为NVG 病情评估的辅助生物学指标。本研究相关性分析显示Klotho 水平与VEGF 呈负相关,说明Klotho 在NVG 新生血管形成中可能与VEGF 存在相互调节、抑制作用,Klotho 缺失,VEGF 过表达可能促使了新生血管形成,加重病情进展。

ET-1 是具有强烈收缩血管和促血管平滑肌细胞增殖作用的血管活性物质,由内皮素前体在内皮素转化酶作用下转化而成,在血管内皮细胞、平滑肌细胞、虹膜、睫状体非色素上皮细胞、视网膜色素上皮细胞均有广泛的表达。ET-1 具有多种生物学活性,参与炎性疾病、高血压病、动脉粥样硬化发生和发展[16]。近年来研究[17]发现ET-1 具有诱导血管生成、分化作用,高水平ET-1 可能诱导眼球后血流动力学异常,导致视网膜血管血流灌注减少,与青光眼发病密切相关。本研究结果显示NVG 患者房水、血清中ET-1 水平高于对照组,ET-1 水平与Teich 分级呈正相关,提示ET-1 高表达可能促使了NVG 的发病和进展。ET-1 参与NVG 发病和病情进展的可能机制为:首先,ET-1 高表达可直接提高内皮细胞增殖、迁移、侵袭能力,诱导血管新生[17]。其次,ET-1过度表达可导致小梁细胞氧化损伤,引起血流灌注不足和组织缺血缺氧[18],并刺激中性粒细胞过氧化物产生介导氧化应激反应[19],促使新生血管形成。本研究中ET-1 水平与VEGF 呈高度正相关,提示ET-1 与VEGF 相互作用参与NVG 新生血管形成过程,ET-1 作为一种促血管生成因子参与了NVG 新生血管形成的各个阶段。相关报道[20]指出瘢痕组织中ET-1 呈高度表达,ET-1 与VEGF 发挥协同作用机制共同促使新生血管形成。因此,ET-1 水平能反映NVG 患者病情严重程度,可为临床病情评估提供参考。

IL-6 是前炎性细胞因子,通过诱导T 细胞、B 细胞增殖、刺激免疫球蛋白分泌参与免疫调节过程[21]。IL-8 是促炎细胞因子,其表达升高可破坏视网膜血管屏障,导致视网膜毛细血管损伤过程[22]。TNF-α 可诱导视网膜色素上皮细胞和血管内皮细胞连接,破坏血-视网膜屏障,促使视网膜从非增殖状态向新生血管转变[23]。本研究发现房水、血清中Klotho 水平均与IL-6、IL-8、TNF-α 呈负相关,ET-1 与IL-6、IL-8、TNF-α 呈正相关,提示Klotho、ET-1 可能通过参与调控炎症反应参与NVG 发病和病情进展。Klotho可调节组织炎症反应,抑制NLRP3 炎症小体,降低TNF-α、IL-1β、IL-18 等炎性细胞因子水平[24]。ET-1是重要的促炎性介质,能促使TNF-α、IL-6 等炎性细胞因子释放,细胞黏附分子表达[25],因此Klotho 低表达,ET-1 高表达可能导致NVG 局部炎症反应扩大,进而诱导VEGF 表达,促使新生血管形成。

综上,NVG 患者房水、血清中Klotho 水平降低,ET-1 水平增高,Klotho 缺失、ET-1 过度表达可能诱导VEGF 表达,进而刺激房角、虹膜等局部组织新生血管形成。Klotho、ET-1 可能通过调节局部炎性反应参与NVG 新生血管形成过程。Klotho、ET-1 可为NVG 发生和病情进展评估提供有效信息。

猜你喜欢

房水新生视网膜
深度学习在糖尿病视网膜病变诊疗中的应用
重获新生 庇佑
家族性渗出性玻璃体视网膜病变合并孔源性视网膜脱离1例
高度近视视网膜微循环改变研究进展
坚守,让百年非遗焕新生
复明片治疗糖尿病视网膜病变视网膜光凝术后临床观察
氧化应激指标在白内障患者体液中的改变及与年龄的关系
Analysis of spectrum and drug sensitivity of bacteria in the aqueous humor or vitreous of patients at an early stage of penetrating ocular trauma
不同切口青光眼白内障联合术后泪液NO浓度与前房炎症反应的变化
新生娃萌萌哒