香鱼(Plecoglossus altivelis)CC型趋化因子受体3(CCR3)基因的分子鉴定及其对鳗弧菌感染响应的研究*

张玲玲 余 莉 李长红 苗 亮 陈 炯

香鱼()CC型趋化因子受体3(CCR3)基因的分子鉴定及其对鳗弧菌感染响应的研究*

张玲玲1, 2余 莉2李长红1, 2①苗 亮1, 2陈 炯1, 2①

(1. 宁波大学 农产品质量安全危害因子与风险防控国家重点实验室 宁波 315211; 2. 宁波大学海洋学院生物化学与分子生物学实验室 宁波 315832)

CC趋化因子受体3 (CCR3)是CC型趋化因子的受体, 属于G蛋白耦联受体(GPCRs)家族成员, 与过敏等多种炎性疾病密切相关。为探讨香鱼CCR3 (PaCCR3)在响应鳗弧菌感染时的表达变化, 从转录组测序数据中获得了PaCCR3基因全长cDNA序列。序列分析表明, PaCCR3具有7次跨膜结构, 与胡瓜鱼CCR3氨基酸序列同源性最高(84.6%)。系统进化树分析表明, 哺乳类、两栖类和鱼类CCR3单独成簇, 鱼类CCR3形成一个大簇; PaCCR3与胡瓜鱼CCR3进化相关性最高。实时荧光定量PCR结果显示, PaCCR3基因mRNA在单核/巨噬细胞(MO/MФ)中表达量最高; 鳗弧菌感染后肝、脾和头肾中PaCCR3基因mRNA表达量显著上调; 且香鱼MO/MФ经鳗弧菌体外刺激后, PaCCR3基因mRNA的表达量显著上调。Western blot分析表明经鳗弧菌体外刺激后, 香鱼MO/MФ中PaCCR3蛋白的表达量也显著增加。综上, PaCCR3基因mRNA及其编码蛋白响应于病原体感染而被诱导表达。研究结果首次揭示了香鱼CCR3基因mRNA及蛋白的表达响应于鳗弧菌侵染, 它可能通过介导MO/MФ的功能活性参与免疫应答, 可为深入探究鱼类CCR3的功能及作用机制提供新的切入点。

香鱼(); CCR3; 单核/巨噬细胞; 鳗弧菌; 表达分析

CC型趋化因子受体3 (CC chemokine receptor 3, CCR3)是CC型趋化因子的受体, 属于G蛋白耦联受体(G protein-coupled receptor, GPCR)家族成员。最早研究发现, CCR3选择性地在人嗜酸性粒细胞上表达, 并且嗜酸细胞活化趋化因子(eotaxin)是CCR3高特异性的拮抗剂(Kitaura, 1996)。随着研究的深入, CCR3被发现在嗜碱性粒细胞上也高表达(Uguccioni, 1997), 而且树突状细胞(dentric cells, DC) (Rubbert, 1998)、小角质细胞(microglia) (He, 1997; Ghorpade, 1998)、单核细胞(monocytes, MO) (Ghorpade, 1998; Rubbert, 1998)、巨噬细胞(macrophages, MФ) (Rubbert, 1998)和CD4+T细胞(Rubbert, 1998)上也有表达。CCR3有许多CC型趋化因子配体, 包括CCL5 (C-C motif chemokine 5)、CCL7 (C-C motif chemokine 7)、CCL8 (C-C motif chemokine 8)、CCL11/eotaxin-1 (C-C motif chemokine 11)、CCL13 (C-C motif chemokine 13)、CCL15 (C-C motif chemokine 15)、CCL24/eotaxin-2 (C-C motif chemokine 24)和CCL26/eotaxin-3 (C-C motif chemokine 26) (Forssmann, 1997; Kitaura, 1999; Wang, 2013; Palomino, 2015)。其中, CCR3是CCL11的唯一受体。CCR3通过与这些配体结合, 在过敏性疾病中发挥重要作用(Wang, 2013; Zhu, 2017)。在过敏性炎症反应中, 特征效应细胞嗜酸性和嗜碱性粒细胞主要依赖于其上的CCR3向不同的趋化因子迁移进入到炎症组织中(Uguccioni, 1997)。因此, 研究者认为采用抑制剂或者CCR3抗体直接抑制CCR3可能作为一种新的途径来抑制过敏性炎症中效应细胞嗜酸性和嗜碱性粒细胞聚集(Uguccioni, 1997; Zhu, 2017; Grozdanovic, 2019)。在获得性免疫缺陷综合征(acquired immunodeficiency syndrome, AIDS)研究中, 研究者发现, 脑部小角质细胞上的CCR3能与CCR5协同作用作为促进HIV-1感染中枢神经系统(He, 1997), 并且单核细胞来源的树突状细胞(monocyte-derived DC, MDDC)上的CCR3也可能作为协同受体与CCR5和CCR2b等促进HIV-1进入MDDC (Rubbert, 1998)。

香鱼(,ayu), 又名鲇鱼、油香鱼、仙胎鱼、年鱼, 是包括中国和日本等国在内的东亚地区特有的小型经济名贵鱼类。由于它体形优美、肉质鲜美, 有清香味, 经济价值颇高, 在我国的规模化人工养殖日益扩大。然而, 随着池塘养殖密度及饲料投饲频率增加等原因导致池塘水体污染严重, 使得香鱼养殖病害频发, 给养殖户带来极大的经济损失(李长红等, 2009)。香鱼以生态健康养殖出名, 养殖中抗生素等传统治疗方法易产生药残和耐药而受到诸多限制。近年来, 对硬骨鱼类免疫机制进行研究, 已成为水产经济动物研究的热点之一, 可为有效防治各类病害及选育抗病品种奠定理论基础。鉴于CCR3在动物免疫应答中的重要作用, 本研究从单核/巨噬细胞(monocytes/macrophages, MO/MФ)转录组中获得香鱼CCR3 (PaCCR3)基因cDNA序列, 拟分析其分子特征、进化关系及组织分布, 解析其在鳗弧菌感染后的香鱼重要免疫组织及在鳗弧菌体外刺激的MO/MФ中mRNA的表达变化; 化学合成PaCCR3胞外多肽并免疫新西兰大白兔制备抗血清, 分析香鱼MO/MФ经鳗弧菌感染后PaCCR3蛋白的表达变化。研究结果不仅丰富了鱼类免疫学知识, 也为深入探讨鱼类趋化因子受体在防御病原感染时发挥的功能提供了基础。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

体重约20—30 g的健康香鱼, 购自浙江省宁海县凫溪陈家香鱼养殖场。新西兰大白兔购自宁波大学医学院实验动物中心。鳗弧菌ayu-H080701 (李长红等, 2009)和大肠杆菌() TOP10菌株由本实验室保存。RNAiso试剂、AMV逆转录酶、Ex Taq DNA聚合酶、Mighty TA-cloning Kit和TB GreenTMTM(Tli RNaseH Plus)等购自大连TaKaRa公司。RIPA裂解液、BCA蛋白浓度测定试剂盒、超敏ECL化学发光试剂盒、显影定影试剂盒、兔源甘油醛-3-磷酸脱氢酶单克隆抗体(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase rabbit monoclonal antibody, anti-GAPDH)和辣根过氧化物酶标记山羊抗兔IgG(H+L) [(HRP-labeled goat anti-rabbit IgG (H+L), HRP-IgG)等购自上海碧云天生物技术有限公司。Ficoll-PaqueTMPREMIUM购瑞典GE Healthcare公司, RPMI 1640购自美国Life Technology公司, 胎牛血清(fetal bovine serum, FBS)购自阿根廷Natocor-Industria Biológica公司。预染蛋白质分子量标准品购自美国Thermo Fisher公司。引物合成及序列测序工作由生工生物工程(上海)股份有限公司完成。多肽由合肥国肽生物科技有限公司合成。

1.2 PaCCR3基因cDNA序列获得及序列分析

从香鱼MO/MФ转录组测序结果中(Lu, 2013)获得PaCCR3基因cDNA序列, 进行PCR扩增、TA克隆后送公司测序验证。PaCCR3基因ORF预测采用DNAstar 5.0软件进行, 氨基酸序列跨膜区预测运用TMHMM Server v. 2.0和SMART在线软件, 多重序列比对运用ClustalW在线软件, 二硫键预测运用ScanProsite软件预测, 系统进化树构建采用MEGA 6.0软件(Tamura, 2013)。本研究用到的CCR3序列信息列于表1中。

1.3 健康香鱼及鳗弧菌感染香鱼的组织样品采集

从健康香鱼尾静脉抽取血液后, 取肝、脾、体肾、脑、心、鳃、肌肉、肠、皮肤和头肾10个组织, 立即液氮速冻后转至–70 °C超低温冰箱保存。鳗弧菌腹腔注射香鱼的操作步骤参考杨智景等(2015)的方法, 将健康香鱼分为感染组和对照组, 感染组每尾香鱼腹腔注射100 μL (1.0×105CFU)的鳗弧菌悬液, 对照组每尾香鱼按照同样方式注射100 μL的无菌PBS。注射后两组香鱼分别于4、8、12和24 h时取肝、脾和头肾等组织, 取样及保存方法同健康香鱼。

表1 本研究用到的CCR3序列信息

Tab.1 The CCR3 sequences used in this study

注: CCR3l代表CCR3 like

1.4 香鱼头肾来源的MO/MФ分离及体外培养

用75%乙醇消毒香鱼体表, 在无菌条件下迅速取头肾, 放于装有RPMI1640培养基的培养皿中, 然后转到筛网中, 边研磨边加入RPMI1640培养基以获得单细胞悬液, 将细胞悬液轻加于Ficoll-Paque液上方后离心(2 000 r/min, 25 min), 吸取含MO/MФ的白膜层, 用含2% FBS的RPMI1640培养基离心洗涤2次, 最后将细胞沉淀重悬于含2% FBS的RPMI1640培养基中。取适量细胞悬液用血球计数板计数后, 制备成107cells/mL细胞悬液, 均匀铺在直径为35 mm的培养皿中, 过夜培养(24 °C, 5% CO2)后, 吸走非贴壁细胞后加入新鲜培养基(含10% FBS)后继续培养。取适量细胞用瑞氏-吉姆萨染色液染色后光镜下观察, 确定95%以上的细胞是MO/MФ后再进行后续实验。

1.5 鳗弧菌感染的香鱼MO/MФ样品制备

鳗弧菌过夜培养后用无菌PBS洗涤数次后制备成细菌悬液, 按照感染复数(multiplicity of infection, MOI)=10的比例感染香鱼MO/MФ, 于4、8、12和24 h时, 用PBS洗涤3次, 吸净PBS, 加入适量RIPA裂解液(PMSF 1 mmol/L), 用枪吹打数下, 待细胞充分裂解后, 13 000离心3 min, 取上清保存于–70 °C超低温冰箱备用。

1.6 qRT-PCR检测

组织及MO/MФ总RNA的抽提、第一链cDNA的合成及qRT-PCR检测参考以往的方法进行(Ren, 2019)。根据PaCCR3基因cDNA序列设计检测引物, PaCCR3test (-): 5′-ACGATTGT TCCGAAGCTTT GG-3′和PaCCR3 test (+): 5′-GCGTTTGGACATCAGC TTGA -3′, 预期扩增大小140 bp; 选择香鱼18S rRNA (Pa18S rRNA)基因作为内参, 根据其cDNA序列(FN646593)设计引物Pa18S rRNA (+): 5′-GAATGTCTGCCCTATCAACT-3′和Pa18S rRNA (-): 5′-GATGTGGTAGCCGTTTCT-3′, 预期扩增大小为103 bp。qRT-PCR扩增反应在ABI StepOne荧光定量PCR仪(美国ABI公司)上进行, 每个样品重复3次。采用仪器自带程序读取每个样品目的基因和内参基因的循环阈值(cycle threshold, Ct)。根据2–ΔΔCt法计算PaCCR3基因mRNA的相对表达量(Livak, 2001)。

1.7 PaCCR3 N端胞外段多克隆抗体制备及检测

将PaCCR3 N端胞外段43个氨基酸(MDTDEDYDLFLELFNESSNDSTYVTNELVTLCVKADVNKFGAT)合成多肽, 并偶联钥孔血蓝蛋白(keyhole limpet hemocyanin, KLH), 用于免疫新西兰大白兔。经过3次加强免疫后收集兔抗血清, Western blot检测特异性。

1.8 Western blot检测

采用BCA蛋白浓度测定试剂盒对香鱼MO/MФ裂解液进行蛋白定量, 采用Western blot检测鳗弧菌感染下香鱼MO/MФ中PaCCR3的表达变化。香鱼MO/MФ总蛋白经SDS-PAGE分离后, 湿转至PVDF膜上。5%脱脂奶粉在37 °C封闭2 h, 加入兔源PaCCR3抗血清(1:500), 37 °C孵育2 h, PBS-T洗涤数次后加入HRP-IgG (1:5000)在37 °C孵育1 h, PBS-T洗涤数次。香鱼MO/MФ中PaGAPDH的表达检测用兔源anti-GAPDH为一抗, 稀释倍数为1:2000。采用超敏ECL化学发光试剂盒进行显色, 暗室内进行压片、显影和定影。胶片扫描后采用Gel-Pro analyzer 4凝胶定量分析软件进行灰度值分析。

2 结果

2.1 PaCCR3基因cDNA序列分析

PaCCR3基因cDNA全长1 624 bp (GenBank登录号: MZ028605), 包括一个长度为1 071 bp的完整开放阅读框, 编码356个氨基酸, 预测蛋白分子量大小为41.28 kDa, 等电点为8.37。

SMART和TMHMM软件分析结果表明, PaCCR3为7次跨膜受体(TM1-TM7), 由位于细胞膜外的N末端(N-terminus)和3个膜外环以及位于胞内的C末端(C-terminus)和3个膜内环组成(图1)。ScanProsite软件预测结果表明, PaCCR3具有G蛋白耦联受体(G-protein coupled receptors, GPCRs)家族1的特征基序——SSILFLTLMTFDRYLAV, 并且膜外环上包含有2个高度保守的半胱氨酸残基, 可通过形成一个二硫键(Cys113-Cys191)稳定受体的空间结构(图1)。因此, PaCCR3属于GPCRs家族成员。

2.2 PaCCR3基因的系统进化分析

多序列分析显示, PaCCR3与其他鱼类CCR3氨基酸序列同源性为34.5%—84.6%, 与胡瓜鱼() CCR3有最高的同源性。根据哺乳类、两栖类和鱼类CCR3的氨基酸全序列构建了系统进化树, 结果显示, 哺乳类、两栖类和鱼类CCR3各自成簇, 鱼类CCR3形成一个大簇, 香鱼与胡瓜鱼的CCR3独立成簇, 且与胡瓜鱼CCR3的进化相关性最高(图2)。

2.3 PaCCR3基因mRNA在鳗弧菌感染前后的表达变化

采用qRT-PCR检测健康香鱼的肝、体肾、头肾、脾、脑、心、鳃、肠、肌肉、皮肤及MO/MФ中PaCCR3基因mRNA的表达分布, 结果表明, 其在MO/MФ中的表达丰度最高, 其次是体肾(图3a)。香鱼进行实验处理后, 对照组香鱼无明显异常, 处理组香鱼出现典型的弧菌病发病特征, 并能从腹腔液及主要脏器中分离培养出鳗弧菌。鳗弧菌感染后, 与对照组相比, 肝、脾和头肾中PaCCR3基因mRNA的表达量显著增加, 分别为对照组的6.74、30.81和14.30倍(<0.05); 此后, 3个组织中PaCCR3基因mRNA的表达量均开始下降, 头肾中PaCCR3基因mRNA表达量直到24 h时仍显著高于对照组(<0.05), 脾中PaCCR3基因mRNA表达量在12 h时与对照组无明显差异, 肝中PaCCR3基因mRNA表达量在8 h时已与对照组无明显差异(图3b, 3c, 3d)。

图1 香鱼与部分鱼类CCR3氨基酸序列的多重比对

注: TM1—TM7: 7个跨膜结构域, “▼”: 胞外环上2个保守的半胱氨酸残基。相似度>60%, 灰色阴影: 部分相同的氨基酸, 黑色阴影: 完全相同的氨基酸。Pa: 香鱼(); Om: 胡瓜鱼(); Oy: 虹鳟(); Ss: 大西洋鲑(); Lc: 大黄鱼(); Mm: 鮸鱼()

2.4 PaCCR3抗血清制备及检测

Western blot分析显示, 所制备的PaCCR3抗血清能与香鱼MO/MФ上的PaCCR3杂交, 目的条带大小约为42 kDa与预测的PaCCR3蛋白分子量大小(41.28 kDa)基本一致, 且特异性较好(图4)。因此, 该抗体可用于后续检测在鳗弧菌感染下香鱼MO/MФ上PaCCR3的表达变化。

图2 基于香鱼和其他动物CCR3全长氨基酸序列构建的系统进化树(邻接法)

注: 分枝上的数值表示用bootstrap (1000次)做置信检测得到的置信度百分比, 低于60%的数值不显示; 标尺长度表示每个位点发生0.1次置换

图3 鳗弧菌感染后香鱼免疫组织中PaCCR3基因mRNA的表达变化

注: a. PaCCR3基因mRNA在健康香鱼不同组织中的表达; b—d. PaCCR3基因mRNA在鳗弧菌感染香鱼免疫组织中的表达。以Pa18S rRNA基因作为内参, *: 处理组PaCCR3基因的表达与对照组相比差异显著(<0.05) (=4)

图4 Western blot检测PaCCR3抗血清的特异性

注: 1. 空白对照; 2. 香鱼MO/MФ总蛋白

2.5 鳗弧菌处理前后香鱼MO/MФ PaCCR3基因mRNA表达的变化

qRT-PCR结果表明, 香鱼MO/MФ经鳗弧菌体外处理后, PaCCR3基因mRNA的表达量在4 h时开始增加, 在12 h和24 h时增加显著, 分别为对照组的2.01倍和2.42倍(<0.05) (图5)。

图5 鳗弧菌处理前后香鱼MO/MФ中PaCCR3基因mRNA的表达变化

注: 以Pa18S rRNA基因作为内参, *: 处理组PaCCR3基因的表达与对照组比较差异显著(<0.05) (=4)

2.6 鳗弧菌感染前后香鱼MO/MФ上PaCCR3蛋白的表达变化

在确认制备的兔源PaCCR3抗血清特异性后, 采用Western blot检测了香鱼MO/MФ中PaCCR3蛋白在鳗弧菌刺激下的表达变化。结果显示, 香鱼MO/MФ中PaCCR3的表达在鳗弧菌刺激下被诱导, 与其mRNA表达的变化趋势相似, 在4 h时略微增加, 在12 h和24 h时增加显著, 分别为对照组的2.15和2.09倍(<0.05) (图6)。

图6 鳗弧菌刺激前后香鱼MO/MФ上PaCCR3蛋白的表达变化

注: a. 不同感染时间香鱼MO/MФ上PaCCR3和PaGAPDH的蛋白条带; b. PaCCR3蛋白的相对表达表达量。*: 与对照组相比差异显著(<0.05) (=3)

3 讨论

CCR3是CC型趋化因子的受体, 属于GPCRs家族成员, 与过敏等多种炎性疾病密切相关。本文从香鱼MO/MФ转录组测序数据中获得PaCCR3基因cDNA序列。序列分析揭示, PaCCR3氨基酸序列与其他鱼类CCR3具有GPCR的典型特征, 均具有7次跨膜结构。PaCCR3与胡瓜鱼CCR3氨基酸序列同源性最高, 为84.6%。系统进化树分析表明, 鱼类CCR3独立成簇, 香鱼与胡瓜鱼CCR3进化相关性最高。

表达特征分析表明, PaCCR3基因在健康香鱼被检组织中广泛表达, 且在体肾、脾和头肾的表达量较为丰富, 这与已报道的斑马鱼CCR3-1和CCR3-2基因及大菱鲆CCR3基因mRNA表达较为一致(Liu, 2009; 孟艳青等, 2013), 但与斑马鱼CCR3-3及鮸鱼CCR3基因的表达分布有较大差异。鮸鱼CCR3基因在鳃和心中表达量较为丰富(Zhu, 2013), 斑马鱼CCR3-3基因在脾、脑、体肾、肝、鳃和肠组织中均未检测到(Liu, 2009)。由于Liu等在测定斑马鱼CCR3-1、CCR3-2和CCR3-3基因在脾、脑、肾、肝、鳃和肠6个组织中的表达时采用了半定量RT-PCR技术, 我们推测可能由于该技术检测灵敏度有限, 导致未能在斑马鱼上述6个组织中检测到CCR3-3基因的表达。CCR3基因在硬骨鱼类中呈现不同的表达谱, 揭示其可能在不同组织中参与不同的生物学过程。

尽管CCR3选择性地在人嗜酸性粒细胞上表达, 但它在包括MO和MФ在内的其他免疫细胞上也有分布(Kitaura, 1996; Ghorpade, 1998; Rubbert, 1998)。头肾是硬骨鱼类特有的、重要的造血组织和免疫器官, 其中含有丰富的MO和MФ, 在鱼类的天然免疫中发挥着重要作用(Geven, 2017)。因此, 我们从香鱼头肾中分离了MO/MФ, 首先测定了PaCCR3基因mRNA在未刺激的MO/MФ上的分布情况, 结果发现, 该基因在MO/MФ上表达量非常丰富, 高于它在体肾、脾和头肾3个组织中的表达。进一步分析发现, 鳗弧菌刺激不仅诱导了PaCCR3基因mRNA的表达, 也诱导了其蛋白的表达, 二者变化趋势相似。我们的研究揭示, CCR3在鱼类MO/MФ上表达丰富, 可能参与调控MO/MФ的趋化及其他功能活性。

4 结论

本研究鉴定了香鱼CCR3基因cDNA序列, 序列分析揭示其氨基酸序列与胡瓜鱼CCR3最相似。健康香鱼中, PaCCR3基因mRNA在MO/MФ中表达量最高, 高于体肾、脾和头肾等组织; 鳗弧菌感染香鱼后, 其在肝、脾和头肾中的表达被诱导。头肾来源的MO/MФ经鳗弧菌体外刺激后PaCCR3基因mRNA及蛋白表达量均显著增加。研究结果首次揭示了香鱼CCR3基因mRNA及蛋白的表达响应于鳗弧菌侵染, 它可能通过介导MO/MФ的功能活性参与免疫应答, 为深入探究鱼类CCR3的功能及作用机制提供了新的切入点。

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MOLECULAR IDENTIFICATION OF CC MOTIF CHEMOKINE RECEPTOR 3 (CCR3) GENE AND ITS RESPONSE TOINFECTION IN AYU

ZHANG Ling-Ling1, 2, YU Li2, LI Chang-Hong1, 2, MIAO Liang1, 2, CHEN Jiong1, 2

(1. State Key Laboratory for Managing Biotic and Chemical Threats to the Quality and Safety of Agroproducts, Ningbo University, Ningbo 315211, China; 2. Laboratory of Biochemistry and Molecular Biology, School of Marine Science, Ningbo University, Ningbo 315832, China)

The CC chemokine receptor 3 (CCR3), a kind of CC motif chemokine receptor, belongs to the family of G protein-coupled receptors (GPCRs). CCR3 is closely associated with various inflammatory diseases such as allergies. In order to explore the expression changes of ayu () CCR3 (PaCCR3) in response toinfection, the full-length cDNA sequence of PaCCR3 gene was obtained from ayu monocytes/macrophages (MO/MФ) transcriptome sequencing data. Sequence analysis showed that PaCCR3 had a seven-pass transmembrane domain, and had the highest amino acid sequence homology with the CCR3 of rainbow smelt () (84.6%). Phylogenetic tree analysis showed that mammals, amphibians and fish CCR3 clustered separately, and fish CCR3 formed a large cluster. PaCCR3 had the highest evolutionary correlation with that of rainbow smelt. Real-time quantitative PCR (qRT-PCR) analysis showed that the highest mRNA expression of PaCCR3 gene was observed in the MO/MФ from healthy ayu. The expression in liver, spleen and head kidney significantly up-regulated afterinfection. Moreover, the mRNA expression of PaCCR3 was significantly up-regulated in ayu MO/MФ stimulated by. The N-terminal extracellular peptide fragment of PaCCR3 was chemically synthesized, and its antiserum was obtained by immunizing New Zealand white rabbits. The Western blot analysis showed that the protein expression of PaCCR3 in ayu MO/MФ also increased significantly afterinfection. Therefore, the mRNA and protein expression of PaCCR3 gene could be induced in response to pathogen infection. This study revealed for the first time that the mRNA and protein expression of PaCCR3 in response toinfection, and PaCCR3 may participate in the immune response by mediating the functional activity of MO/MФ, which can provide a new entry point for in-depth exploration of the function and mechanism of fish CCR3.Key words; CCR3; monocyte/macrophage (MO/MФ);; expression analysis

* 国家自然科学基金项目, 31972821号; 浙江省自然科学基金项目, LY21C190003号; 宁波大学研究生科研创新基金项目, IF2020138号; 农产品质量安全危害因子与风险防控国家重点实验室自主设计课题, 2010DS700124-ZZ2008号。张玲玲, 硕士研究生, E-mail: linglingzhangwork@163.com

李长红, 硕士生导师, 副教授, E-mail: lichanghong0716@163.com; 陈 炯, 博士生导师, 研究员, E-mail: jchen1975@163.com

2021-05-17,

2021-06-20

Q786; S917

10.11693/hyhz20210500118