禽源奇异变形杆菌质粒介导AmpC酶基因型检测与质粒分析

2021-09-18赵世玉焦嘉杰董宁宁潘圆月崔孟梅潘玉善

中国农业科学 2021年17期

赵世玉，焦嘉杰，董宁宁，潘圆月，崔孟梅，潘玉善

赵世玉1，焦嘉杰1，董宁宁1，潘圆月2，崔孟梅1，潘玉善1

1河南农业大学牧医工程学院，郑州 450002；2河南农业大学生命科学学院，郑州 450002

【】研究禽源奇异变形杆菌携带ampC基因的分型和CMY-2阳性接合质粒pC12的序列结构，为防控多重耐药禽源奇异变形杆菌的传播提供理论基础。利用头孢西丁三维试验和PCR方法对21株奇异变形杆菌进行AmpC酶的检测和基因分型研究；对CMY-2阳性菌株进行脉冲场凝胶电泳（PFGE）分型和接合试验；利用高通量测序技术获得pC12的核苷酸序列并进行比较分析。头孢西丁三维试验表明21株禽源奇异变形杆菌中有6株产AmpC酶。6株产AmpC酶奇异变形杆菌对氨苄西林、头孢西丁、多西环素、氟苯尼考、粘菌素全部耐药，而对头孢他啶、阿米卡星全部敏感。耐药基因PCR扩增和测序结果表明，6株菌均携带CMY-2，检出率为28.6%。接合试验表明，1株奇异变形杆菌C12接合成功并获得接合子，其余5株接合不成功。PFGE分型结果表明，酶切图谱分为3个型别，CMY-2在禽源变形杆菌中存在垂直和水平传播。测序结果表明菌株C12含有一个1b型IncC质粒，其全长161 319 bp，GC含量为52.45%，预测有161个开放阅读框，提交NCBI并获得序列号MT320534。该质粒包含3个耐药区：第一个抗生素耐药区（antibiotic resistance islands，ARI-B）携带、(A)、、和；第二个耐药区是一个典型的IS-CMY-2--结构，其中的IS被一个插入的IS截断；第三个耐药区（ARI-A）是一个杂合的Tn-pDU转座子，包含一个1类整合子基因盒（|||）和汞抗性基因簇，其插入到质粒骨架产生两个重复序列TTGTA，该耐药区也是1型IncC耐药区变化最大的区域。6株产AmpC酶禽源奇异变形杆菌均携带CMY-2，其酶切图谱分为3个PFGE型别，其中一株菌携带了一个流行的CMY-2阳性1型IncC可接合质粒。广宿主的IncC质粒是CMY-2、(A)、等多个耐药基因及整合子的重要载体之一，该质粒在动物源奇异变形杆菌的传播扩散进一步增加了治疗该菌感染的难度，应引起足够的重视。

奇异变形杆菌；IncC质粒；AmpC β-内酰胺酶；CMY-2；Tn转座子

0 引言

【研究意义】奇异变形杆菌（）是一种条件性致病菌，是引起人尿路、伤口、血液等感染的重要病原之一[1-2]。兽医临床中，奇异变形杆菌可以感染鸡、猕猴、狐狸、水貂、大熊猫、断奶仔猪等多种动物[3]。近几年，动物感染奇异变形杆菌的病例屡见报道，但有关奇异变形杆菌的流行调查比较少。近几年，杨睿等[4]对腹泻仔猪、王道宁等[5]对腹泻犬、路佳琦等[6]对某鸽场、袁东芳[7]对健康肉鸡进行了奇异变形杆菌的流行性调查，分离率在10%—30%。β-内酰胺酶是肠杆菌科细菌对β-内酰胺类抗生素耐药的主要机制，AmpC酶属于β-内酰胺酶的一个重要分支。目前，人源奇异变形杆菌对β-内酰胺类抗生素耐药率明显升高[8-9]，但有关产AmpC酶动物源奇异变形杆菌的研究比较少。因此，本试验对禽源奇异变形杆菌进行AmpC酶检测与质粒分析，对掌握AmpC酶基因在该菌中的传播规律具有重要意义。【前人研究进展】根据Bush-Jacoby-Medeiros的分类方法，AmpC β-内酰胺酶属第一组，是一类不被克拉维酸和乙二胺四乙酸抑制的头孢菌素酶，按分子结构类型属于C类，也称为AmpC酶[10]。按的来源分为染色体编码的AmpC酶和质粒介导的AmpC酶。对于染色体介导AmpC酶来说，是该酶的结构基因，另外是几个不连锁的调节基因、、、等，可被β-内酰胺类抗生素诱导，主要见于阴沟肠杆菌、弗劳地枸橼酸杆菌、鲍曼不动杆菌、粘质沙雷菌及铜绿假单胞菌[11-12]。奇异变形杆菌染色体虽也能编码AmpC酶，但主要是位于整合接合元件（integrating conjugative elements，ICEs）上，能进一步在大肠杆菌、肺炎克雷伯菌、沙门菌中转移[2,13]。质粒介导的AmpC酶主要出现在肺炎克雷伯菌、大肠杆菌、沙门菌及奇异变形杆菌，这些菌株无论有无β-内酰胺类抗生素存在均能持续高水平产AmpC酶。携带的质粒可以通过接合方式在同种属和不同种属菌之间传播，这是快速传播的一个重要途径[11]。质粒介导的AmpC酶已在世界范围内流行，CMY-2是其最流行的酶型[12]。【本研究切入点】奇异变形杆菌是一种常见的条件性致病菌。目前，有关禽源奇异变形杆菌产AmpC酶的研究比较少。前期研究中，对临床分离的21株禽源奇异变形杆菌已完成了超广谱β-内酰胺酶的检测和CTX-M基因的上下游环境研究[3]，但有关AmpC酶的检测、基因亚型、质粒特征还未深入研究。【拟解决的关键问题】对临床分离的21株禽源奇异变形杆菌进行AmpC β-内酰胺酶和耐药基因检测，利用接合试验和脉冲场凝胶电泳（pulsed-field gel electrophoresis，PFGE）技术研究CMY-2在奇异变形杆菌中垂直和水平传播规律，利用高通量测序技术获得接合质粒的全序列，解析携带CMY-2质粒的分子特征，为防控多重耐药禽源奇异变形杆菌的传播提供理论基础。

1 材料与方法

本研究于2017至2020年在河南农业大学牧医工程学院完成。

1.1 菌株材料

1.1.1 菌株 2009年5—10月，从河北、山东、河南、四川、江西、浙江等8省12个地区收集的43例病死肉鸡、蛋鸡、鹌鹑肝脏中分离，并经实验室VITEK-32全自动微生物鉴定系统鉴定的21株奇异变形杆菌，其中10株产超广谱β-内酰胺酶（extended- spectrum β-lactamases，ESBLs），检出率为47.6%[3]。沙门菌H9812用于PFGE的DNA分子量标准，为实验室保存菌株。耐利福平大肠杆菌C600作为接合试验的受体菌，由河南省人民医院惠赠。大肠埃希菌（ATCC 25922），购自中国普通微生物菌种保存中心。

1.1.2 主要试剂麦康凯琼脂、MH琼脂、MH肉汤、营养肉汤均购自北京陆桥技术有限责任公司；质粒中量提取试剂盒购自德国QIAGEN公司；Marker 2000、Premix EX Taq购自宝生物工程（大连）有限公司。

1.1.3 药品氨苄西林、头孢他啶、头孢噻肟、头孢西丁、环丙沙星、恩诺沙星、卡那霉素、阿米卡星、庆大霉素、氟苯尼考、多西环素、黏菌素，均为国产原料药，使用时均在有效期内。

1.2 试验方法

1.2.1 头孢西丁三维试验通过三维试验检测21株奇异变形杆菌分离菌是否产生AmpC酶[14]。具体步骤如下：将0.5麦氏单位浊度的大肠杆菌ATCC 25922 按临床实验室标准化协会（CLSI）的K-B 法均匀涂布在M-H 平板上，在平板的中央贴一张头孢西丁（30 mg/片）纸片，从距离纸片5 mm处用无菌刀片在平板琼脂上向外缘方向切一裂隙，在裂隙中加入25 μL 的一种待检菌株的β-内酰胺酶粗提物，35℃培养24 h，观察裂隙的内侧端（头孢西丁纸片的抑菌环内）周围有无细菌生长。结果判断：头孢西丁纸片的抑菌环有缺失者为阳性，提示待检菌株产AmpC酶。

1.2.2 MIC值的测定采用肉汤微量稀释法，测定受试菌株的最小抑菌浓度（MIC），相同过程重复3次，其结果根据临床实验室标准化协会（CLSI）的标准进行耐药和敏感的判断[15]。

1.2.3 耐药基因检测依据文献[16]，由上海生工生物工程公司合成6对通用引物。利用水煮法制备细菌DNA模板，对ampC基因进行PCR扩增。PCR扩增产物经1.0%琼脂糖凝胶电泳，最后由凝胶成像系统摄像。将PCR扩增阳性产物送上海生工生物工程公司测序，测序结果用NCBI数据库BLAST（https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi）比对，对疑似CMY-2利用CMY-2-F/R进行扩增、测序，确定其基因亚型（表1）。

1.2.4 接合试验以耐头孢西丁奇异变形杆菌为供体菌，耐利福平大肠杆菌C600为受体菌进行接合试验。先把供体菌、受体菌分别接种到5 mL的LB肉汤中，于37℃振荡培养过夜。然后取供体菌0.1 mL、受体菌1 mL接种到5 mL LB肉汤中混匀，37℃低速振荡培养4 h。将混合培养后的菌液涂布在含药的麦康凯琼脂平板（利福平500 µg·mL-1，头孢西丁20 µg·mL-1），于37℃培养18 h，筛选阳性接合子。通过PCR和药物敏感性试验测定接合子的耐药基因和最小抑菌浓度（MIC）。

1.2.5 PFGE分型利用PFGE技术对耐头孢西丁的奇异变形杆菌进行分型[17]。先将耐头孢西丁奇异变形杆菌和沙门菌H9812复苏、单菌落37℃过夜培养，然后制备含菌胶块、利用蛋白酶K进行菌体裂解、胶块洗涤、再利用I酶切奇异变形杆菌、用I酶切沙门菌H9812，最后凝胶电泳、成像。CHEF Mapper脉冲场凝胶电泳系统的电泳参数设置为：片段大小为10—1 000 kb，电压6 V，角度120°，脉冲时间2.2—64 s，电泳时间18 h。

1.2.6 质粒测序与序列分析利用Qiagen质粒中提试剂盒对获得的阳性接合子进行DNA提取，然后送天津生物芯片技术有限公司进行高通量测序。用NovaSeq 6000系统进行二代测序，测序结果用SOAP denovo v2.04 软件组装，然后用二代组装结果校正PacBio RSII三代测序结果，矫正后的三代测序结果用SMRT v2.3.0软件进行组装，最终获得质粒的完整序列[18]。质粒的全序列先用RAST v2.0服务器（http:// rast.nmpdr.org）进行注释，然后利用BLASTn和BLASTp（http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/blast/）比对矫正，利用CGE服务器（https://cge.cbs.dtu.dk/services/）对质粒的复制子类型和耐药基因进行鉴定，利用ISFINDER服务器（https://isfinder.biotoul.fr/）对转座子和插入序列元件进行鉴定，最后利用Easyfig软件对质粒进行比较分析和绘图。

2 结果

2.1 AmpC酶与基因亚型检测

三维试验结果显示，6株奇异变形杆菌的头孢西丁纸片的抑菌环有缺失，即这些菌株产AmpC酶。PCR扩增和测序表明，6株耐头孢西丁的奇异变形杆菌均携带CMY-2耐药基因，阳性率为28.6%（6/21）。

2.2 接合试验

6株CMY-2阳性奇异变形杆菌中，只有菌株C12携带的CMY-2发生了接合转移，获得的相应接合子命名为TC12，其余5株接合不成功。药敏试验和PCR扩增结果表明，接合子TC12携带CMY-2，具有头孢西丁耐药表型（MIC=32 μg·mL-1），说明CMY-2位于一个可接合型质粒上，该质粒可从奇异变形杆菌转移到大肠杆菌。

2.3 药敏试验

6株CMY-2阳性禽源奇异变形杆菌及接合子TC12对12种受试药物敏感性检测结果见表2。由表2可以看出，6株奇异变形杆菌对氨苄西林、头孢西丁、多西环素、氟苯尼考、粘菌素全部耐药；对头孢他啶、阿米卡星全部敏感；但有两株对头孢噻肟耐药，3株中介，1株敏感；有5株对环丙沙星、卡那霉素耐药，1株敏感。接合子TC12与原菌C12一样呈现出对氨苄西林、头孢西丁、多西环素、氟苯尼考、卡那霉素、庆大霉素耐药。

2.4 PFGE分型

对上述检测到的6株CMY-2阳性奇异变形杆菌进行PFGE分型，根据菌株同源性判别标准，可将其分为3种PFGE型别，记为A—C，其中CY12、CY32和C12属于A型，S31和S52属于B型，WS2属于C型。CY12和CY32，S31和S52分别是分离自同一个养殖场的奇异变形杆菌菌株，这说明在一个养殖场里存在同一克隆菌株，耐药基因CMY-2存在垂直传播，如图1。

2.5 质粒的分子特征

为进一步研究接合菌TC21携带的CMY-2阳性质粒的分子特征，利用全基因组测序技术对提取的质粒进行全序列测定。序列分析表明该接合菌含有一个广宿主的1b型IncC质粒，命名为pC12，其全长161 319 bp，GC含量为52.45%，预测有161个开放阅读框，提交NCBI并获得序列号MT320534。进一步序列分析表明，该质粒包含了基本的骨架区和3个耐药区。骨架区包含负责质粒复制、接合和稳定的功能基因。3个耐药区分散在质粒骨架区中：第一个耐药区ARI-B（antibiotic resistance islands，ARI-B）携带、(A)、、、；第二个耐药区是一个典型的IS-CMY-2--结构，其中的IS被插入的IS截断；第三个耐药区ARI-A包含一个1类整合子基因盒（|||）和汞抗性基因簇，其插入到质粒骨架区产生两个重复序列TTGTA（图2）。ARI-A是一个Tn-pDU杂合型转座子，与Tn的（序列号，U12338）序列相似性达100%，汞抗性基因簇与质粒pDU1358的汞抗性基因簇相似度达99.6%。ARI-A两端的38 bp末端反向重复序列（IR和IR）分别由IS和IS插入而被截断，如图2。

3 讨论

3.1 奇异变形杆菌的流行特征

奇异变形杆菌是动物源常见细菌之一。2019年杨睿等[4]从107份腹泻仔猪肛门拭子样本中分离出15株奇异变形杆菌，分离率为14.02%。2020年王道宁等[5]从62份犬腹泻粪便中分离得到12株奇异变形杆菌，分离率为19.35%。同年，路佳琦等[6]从某鸽场采集72份样品，分离获得22株奇异变形杆菌，分离率为30.6%；袁东芳[7]从肉鸡场采集健康鸡泄殖腔肛拭子516份，鉴定出61株奇异变形杆菌，分离率为11.8%。本研究从临床43份病死鸡中分离获得21株禽源奇异变形杆菌，分离率达48.84%。这些研究表明动物源奇异变形杆菌已成为养殖中常见的条件性致病菌，特别是在疾病状态下分离率更高。目前，人源奇异变形杆菌对β-内酰胺类抗生素耐药率明显升高[8-9]。在一项连续10年（2001—2010年）监测人源奇异变形杆菌耐药性变迁的研究中，2008、2009、2010年产超广谱β-内酰胺酶菌株分别占45.63%、56.98%、37.2%[9]。另一项人源奇异变形杆菌β-内酰胺酶检测及耐药性分析研究显示，302株分离菌中有60株只产ESBLs，检出率为19.87%；40株只产AmpC，检出率为13.25%；36株同时产ESBLs及AmpC，检出率为11.92%[8]。2015年冯福英等[19]从20株人源奇异变形杆菌中检测到10株携带CMY-2，阳性率达50%。2016年中国学者LEI等[13]在125株动物源奇异变形杆菌中检测到16株携带CMY-2，阳性率为12.8%。2019年杨睿等[4]在分离的15株猪源奇异变形杆菌中检测到12株携带CMY-2，阳性率高达80%。在本课题组的前期研究[3]中，从21株禽源奇异变形杆菌中检测到10株携带CTX-M，检出率为47.6%，其中6株携带CTX-M-14，4株携带CTX-M-65。本试验进一步从21株菌中检测到6株单产AmpC酶，均携带CMY-2，阳性率为28.6%（6/21）。虽然本试验分离的禽源奇异变形杆菌数量有限，但一定程度上也反映出该菌对β-内酰胺类抗生素耐药率比较高。接合试验显示，6株耐头孢西丁奇异变形杆菌中只有1株接合成功，并获得了一株携带CMY-2阳性IncC型质粒的接合子，另外5株接合失败。CMY-2阳性菌株的酶切图谱分为3个PFGE型别。本次试验结果表明，CMY-2在禽源奇异变形杆菌中检出率比较高，CMY-2在该菌中存在垂直和水平传播。

奇异变形杆菌质粒pC12 （MT320534），大肠杆菌质粒pAR060302 （FJ621588）和pUMNK88 （HQ023862），沙门氏菌质粒pSN254 （CP000604），pCVM22425 （CP009560）和pSD_174 （JF267651），肺炎克雷伯氏菌质粒IncA/C-LS6（JX442976）

3.2 blaCMY-2在奇异变形杆菌的传播方式

AmpC β-内酰胺酶可以由染色体介导，也可以由质粒介导。一般认为介导AmpC酶的基因起源于弗劳地枸橼酸杆菌的染色体，从染色体转座到质粒，再接合转移到肺炎克雷伯菌和大肠杆菌[20-22]。携带基因的质粒通过接合方式可以在不同细菌之间传递，这种方式是基因快速传播的一个重要途径[11]。CMY-2是基因的一种，与另外的基因BIL-1和LAT-2实际是同一个基因，与大多数的CMY和LAT一样都来自于弗劳地枸橼酸杆菌的[20]。CMY-2是肠杆菌科细菌携带中最流行的一种[23-24]。有研究显示，117株人源AmpC阳性的肠杆菌科细菌中有78株携带CMY-2（66.7%），包括19株CMY-2阳性奇异变形杆菌，其中7株奇异变形杆菌基因组中含有携带CMY-2的ICEs（3株可发生接合转移，4株不接合），8株奇异变形杆菌携带CMY-2阳性IncC质粒[2,24]。ABERKANE等[25]报道显示，分离自法国的64株禽源和7株人源AmpC阳性奇异变形杆菌携带的全部是CMY-2，其中67株奇异变形杆菌中的CMY-2位于ICEs上，另外4株的CMY-2位于接合性IncC质粒上。在中国，16株携带CMY-2的动物源奇异变形杆菌中检测到8株携带CMY-2的ICEs[13]。这些研究表明，SXT/R391型ICEs是CMY-2基因在奇异变形杆菌中传播的一种重要方式。本试验中5株CMY-2奇异变形杆菌接合失败，这些CMY-2的定位有待进一步研究。

3.3 blaCMY-2阳性IncC质粒的结构特征

早期一些研究常把质粒IncA和IncC命名为IncA/C，但实际上IncA和IncC质粒的骨架区有着显著的序列差异[26-27]。IncC型质粒属广宿主不相容群，在大肠杆菌、沙门菌、奇异变形杆菌等肠杆菌科细菌中分布广泛[23-24]。近年来，作为多重耐药质粒类型之一的IncC型质粒，由于常携带AmpC酶基因CMY和金属β-内酰胺酶基因NDM而备受关注[28-30]。IncC型质粒可分为1型和2型，目前也有1/2杂合型IncC质粒的报道[26,31]。根据1型IncC质粒与基因之间序列的单核苷酸多态性（SNP），该型质粒又进一步划分为1a和1b亚型[32]。ARI-B耐药区在1型和2型IncC质粒均有出现，但ARI-A和IS-CMY-2仅出现在1型IncC质粒中。1型IncC质粒是最流行的一种亚型，包含质粒骨架区和耐药区，其中质粒骨架区负责复制、接合、稳定等相关功能，3个耐药区分散在质粒骨架中，包括ARI-B、IS-CMY和ARI-A[26,30]。第一个耐药区ARI-B由一个常见的IS--(A)---结构组成。ARI-B被认为来源于一个15 kb的基因岛（genomic island GI）。整合入IncC骨架区的GI的右端被保留，中间片段被-(A)--耐药区取代，左端丢失，由于IS介导的插入或缺失导致产生不同大小的ARI-B[26]。第二个耐药区IS-CMY-2--是一个典型的结构，IS对CMY-2从弗劳地枸橼酸杆菌染色体转移到质粒和表达发挥了重要作用。IS可以是完整的，也可以被其他插入序列元件IS，IS，IS等截短[12,33]，部分IncC质粒在这个区域有两个拷贝的CMY-2，如pSN254、pCVM22425、pSD_174（图2）。第三个耐药区ARI-A由一个复合转座子构成。在pC12和其他IncC质粒pAR060302、pSN254、pCVM22425、pSD_174、pUMNK88和IncA/C-LS6中，ARI-A均由一个杂合的Tn-pDU转座子组成，并插入到质粒骨架区产生两个重复序列TTGTA（图2）。ARI-A是多重耐药IncC质粒进化的主要耐药区，主要包含I型整合子盒，汞抗性基因簇以及与IS相关的耐药模块。整合子是耐药基因的主要载体之一，可以携带多个不同耐药基因，进一步整合到IncC质粒的ARI-A耐药区，能够使质粒成为一个多重耐药基因散播的更大载体，加速耐药基因的扩散。冯福英等[19]从20株人源奇异变形杆菌中检测到10株携带CMY-2，阳性率达50%，19株携带I型整合子，阳性率达95%。杨睿等[4]对15株猪源奇异变形杆菌的分离鉴定与耐药基因分析中发现，奇异变形杆菌对β-内酰胺类抗生素、磺胺类抗生素、四环素类抗生素、氨基糖苷类抗生素和氯霉素类抗生素的耐药性主要是由CMY-2、、(A)、和耐药基因所导致，特别是CMY-2阳性率高达80%。本试验对一株禽源奇异变形杆菌携带的1型IncC质粒的全序列分析结果表明，IncC质粒是CMY-2、(A)、等多个耐药基因及整合子的重要载体之一，该质粒在动物源奇异变形杆菌的传播扩散进一步增加了治疗该菌感染的难度，应引起足够的重视。

4 结论

本研究中，21株禽源奇异变形杆菌中有6株产AmpC β-内酰胺酶且均携带CMY-2，检出率为28.6%。6株CMY-2阳性菌株中有5株菌的CMY-2不发生接合转移，1株菌的CMY-2可以通过接合而发生水平传递。PFGE分型显示有3种型，CMY-2在同一场区中有垂直传播现象。序列分析表明，接合菌包含一个1b型IncC多重耐药质粒。该质粒携带了、(A)、、、、CMY-2和一个杂合的Tn-pDU转座子，其中转座子又携带了一个包含、、、、的1型整合子盒。应该注意的是，虽然头孢西丁在兽医临床应用很少，但在其他药物的选择压力下，动物源奇异变形杆菌中携带CMY-2的多重耐药IncC质粒会通过和其他基因的共转移而得到传播和扩散。

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Analysis of Plasmid-Mediated AmpC β-lactamases Gene and Plasmid in PoultryStrains

1College of Animal Science and Veterinary Medicine, Henan Agricultural University, Zhengzhou 450002;2College of Life Sciences, Henan Agricultural University, Zhengzhou 450002

【】 The aim of this study was to probe the genotype of AmpC β-lactamases gene and the complete nucleotide sequence of the conjugative plasmid carryingCMY-2 in poultry P. mirabilis strains, so as to provide a theoretical basis for the prevent spreading ofmultidrug-resistant poultrystrains. 【】 Twenty-onestrains were characterized for the confirmation of AmpC β-lactamases genes by using three-dimensional test, polymerase chain reaction (PCR) amplification and sequencing. TheCMY-2-carryingstrains were further evaluated using pulse field gel electrophoresis (PFGE) and conjugation experiments. The complete nucleotide sequence of conjugative plasmid pC12 was determined by using high-throughput sequencing platform and compared with closely related plasmids. 【】 Six of twenty-onestrains produced AmpC enzymes, all of which carried theCMY-2gene and the detection rate was 28.6%. Antimicrobial susceptibility testing showed that sixstrains exhibited high resistance to ampicillin, cefoxitin,doxycycline, florfenicol and colistin, but were susceptible to ceftazidime and amikacin. Conjugation assay revealed theCMY-2gene was successfully transferred fromC12 toC600 recipient strain, however, conjugation experiments failed to obtain transconjugants for otherCMY-2-bearing strains, despite repeated attempts. Three PFGE patterns of sixstrains were determined. The findings demonstrated the vertical and horizontal dissemination ofCMY-2gene in poultryisolates. Sequence analysis revealed theC12 harbored a conjugative plasmid, designated as pC12. pC12 was found to be a multi-drug resistant type 1b IncC plasmid with 161 319-bp size and an average GC content of 52.45%, and had at least 161 predicted open reading frames. The complete sequence of pC12 has been submitted to GenBank with the accession number MT320534. The pC12 harbored three antibiotic resistance regions: the first region, antibiotic resistance island ARI-B, carried,(A),,, andgenes; the second region, IS-CMY-2--, was a typical structure, and the ISEwas truncated by IS; the third region, ARI-A, was a hybrid Tn-pDUmodule. The ARI-A contained a-containing class 1 integron with cassette array(),and a mercury resistance cluster, and inserted into the plasmid backbone generating 5-bp direct repeats (TTGTA). 【】All the AmpC-producingstrains carried theCMY-2gene, and one of them harbored an epidemic type 1 IncC conjugative plasmid. Three PFGE patterns were identified. The findings demonstrated the vertical and horizontal dissemination ofCMY-2gene in poultryisolates. IncC plasmid was one of the predominant vehicles for the dissemination of multiple resistance genes, such asCMY-2,(A),or class 1 integron cassette, which further increased the difficulty for the treatment of the infection caused by. More attention should be paid on the epidemiology of IncC plasmid in pathogenic bacteria.

; IncC plasmid; AmpC β-lactamases;CMY-2; Tntransposon