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荣筋拈痛方含药血清对骨关节炎大鼠SDF-1/CXCR4信号通路的影响

2021-08-10郑若曦戴雨婷叶锦霞吴广文

福建中医药 2021年7期
关键词:滑膜软骨关节

陈 俊,郑若曦,张 婷,戴雨婷,叶锦霞,3,吴广文,3*

(1.福建中医药大学中西医结合学院,福建 福州350122;2.福建中医药大学中西医结合研究院,福建 福州350122;3.福建省中西医结合老年性疾病重点实验室,福建 福州350122)

骨关节炎(osteoarthritis,OA)是中老年人群中常见的一种关节疾患,发病部位可位于膝关节等全身多处关节,常表现为关节疼痛、肿胀和活动受限,严重者可致畸致残,对患者日常的工作生活带来极大困扰[1]。相关研究发现,OA与炎症和内质网应激有关[2-3]。因此,调控炎症环境和应激是治疗OA的有效途径,而基质细胞衍生因子-1(stromal cell-derived faceor-1,SDF-1)与趋化因子CXC基序受体4(chemokine C-X-C motif receptor 4,CXCR4)信号通路在炎症反应方面具有重要作用[4]。荣筋拈痛方源于国医大师陈可冀院士《清宫配方集成》[5]中治疗骨痹的高频、核心用药组方,包括牛膝、当归、独活等六味药,具有补肝肾、壮筋骨、祛风湿、止痹痛的功效[6]。前期研究发现,荣筋拈痛方可有效改善膝骨关节炎(knee osteoarthritis,KOA)患者的临床症状[7],延 缓 软 骨 退 变[8-9],但 是 否 通 过 调 节SDF-1/CXCR4信号通路发挥作用,尚不明确。本研究以SD大鼠OA滑膜细胞和退变软骨细胞为研究对象,观察荣筋拈痛方含药血清对SDF-1/CXCR4信号通路相关调节因子的影响,探讨荣筋拈痛方治疗OA的作用机制,为其临床应用提供依据。

1 实验材料

1.1 实验动物2月龄SPF级SD大鼠45只和4周龄SPF级SD大鼠6只均购自上海斯莱克实验动物有限责任公司,合格证号:SCXK(沪)2019-0007。

1.2 实验药物 荣筋拈痛方包括牛膝、当归、独活等六味药,购于闽侯县上街致诚医药商店。制备方法:按固液比1∶10加入蒸馏水进行回流提取,提取3次,每次1.5 h,离心去除药渣后合并滤液,旋转蒸发浓缩至一定生药量后置于4℃存储备用。

1.3 实验试剂SDF-1 ELISA检测试剂盒(武汉云克隆科技股份有限公司);SDF-1、CXCR4、基质金属蛋白酶(matrix metallopeptidase,MMP)-3、MMP-9、MMP-13一抗(美国Abcam公司);二抗(美国Millipore公司);SDF-1、CXCR4、MMP-3、MMP-9、MMP-13引物(福州尚亚生物技术有限公司)。

1.4 实验仪器 酶标仪(Thermo Fisher Scientific公司);ABI实时荧光定量PCR仪(美国Applied Biosystems公司);蛋白核酸分析仪(美国Beckman Coulter公司)。

2 实验方法

2.1 含药血清制备 健康2月龄SPF级SD大鼠36只,雌雄各半。按1∶2的比例随机分为空白血清组12只与含药血清组24只,动物给药剂量根据“人和动物体表面积折算的等效剂量比率表”换算[10],含药血清组大鼠按4.5 g/(kg·d)予荣筋拈痛方药液灌胃,分上午、下午2次灌胃;空白血清组于同等条件下灌服等体积的生理盐水。连续灌胃7 d,采血前禁食12 h,分别在末次灌胃2 h后,于10%水合氯醛麻醉下腹主动脉采血,4℃冰箱过夜,3 000 r/min离心15 min,分离血清,56℃水浴灭活30 min,0.22 μm滤膜过滤除菌,分装,-20℃冰箱保存备用。

2.2 滑膜细胞获取 参照文献[11]完整剥离滑膜组织,简要步骤如下:2月龄SD大鼠脱臼处死后,膝关节正中纵行切开皮肤,分离肌肉,露出髌骨,继续向下分离,可见平滑光亮滑膜组织,剪刀分离滑膜层和纤维层,取出滑膜层组织。将获取的滑膜组织放于装有含双抗的生理盐水中,备用,之后采用Ⅱ型胶原酶消化法获取滑膜细胞[12]。

2.3 分组与干预 采用4%木瓜蛋白酶注射关节腔的方法建立KOA模型大鼠,空白组为正常大鼠膝关节滑膜细胞,模型组和治疗组为KOA模型大鼠膝关节滑膜细胞。空白组与模型组细胞用体积分数10%空白血清培养,治疗组用体积分数10%含药血清培养,干预24 h后检测相关指标。

2.4 退变软骨细胞模型 参照课题组前期取材方法,无菌条件下游离并截取4周龄SD膝关节,置入无菌培养皿,带入超净工作台操作。先用PBS充分漂洗,刮除关节周围附着的肌肉、脂肪等组织后用PBS充分漂洗。用刀片削取每个关节表面的软骨,PBS充分漂洗软骨小块3次,采用酶消化法,消化、获取正常软骨细胞[13],培养、传代至第三代,再予10 ng/mL的IL-1β诱导24 h,获得退变软骨细胞[14]。

2.5 干预 建立退变软骨细胞模型后,分别更换空白和含药血清干预后的滑膜细胞上清液,即空白组,用10%空白血清干预后的空白组滑膜细胞上清液培养;模型组,用含10%空白血清干预后的模型组滑膜细胞上清液培养;治疗组,用含10%含药血清干预后的治疗组滑膜细胞上清液培养;培养24 h后检测相关指标。

2.6 ELISA法检测滑膜细胞上清液SDF-1含量

收取各组滑膜细胞上清液,参照试剂盒说明书测定各组样本SDF-1含量。

2.7 Real-time PCR法检测滑膜细胞SDF-1和退变软骨细胞中CXCR4、MMP-3、MMP-9和MMP-13 mRNA表达 收集各组细胞,TRIzol法提取总RNA,核酸分析仪检测各样本RNA浓度和OD260/280值。根据试剂盒说明书,取1 μg总RNA逆转录成cDNA。配置Real-time PCR反应体系:Mix(2×)10 μL,Rox(50×)0.4 μL,上下游引物各0.4 μL,DEPC水7.8 μL,cDNA 1 μL。引 物 序 列CXCR-4:上 游AACTGAACGCTCCAGAATGT,下游GAGAAACCAC ACAGCACAAC;SDF-1:上游GGCTTTGAGGGAGG GTTT,下游TGCGGAGGAATGACTTCTG;MMP-3:上游5'-GGCACCAGTCAACCTCAA-3',下游5'-CCAT CTACACAGAGACAGTTACTT-3';MMP-9:上游5'-GCTGCTCCAACTGCTGTA-3',下游5'-CATCCAAT AAATTCCTCTGTCCCTA-3';MMP-13:上游5'-GCT AAGGCAGACATAGTAAGGTAGAT-3',下游5'-ACA CATCAGTAAGCACCAAGT-3'。扩增条件为:95℃预变性10 min,95℃变性10 s,60℃退火34 s,持续40个循环,最后95℃15 s、60℃延伸1 min。以β-actin为内参基因,计算各目的基因2-ΔΔCt,比较各目的基因mRNA相对表达水平。

2.8 Western blot法检测各组滑膜细胞中SDF-1和退变软骨细胞中CXCR4、MMP-3、MMP-9、MMP-13蛋白表达 收集各组细胞,加入含1 mmol/mL PMSF的RIPA裂解液提取各组总蛋白,BCA法测定蛋白浓度,SDS-PAGE凝胶电泳,湿转法将蛋白转印至PVDF膜上,室温封闭1 h,分别用SDF-1、CXCR4、MMP-3、MMP-9、MMP-13一抗4℃孵育过夜,TBST洗膜3次,二抗室温孵育1 h,TBST洗膜3次,滴加ECL显影液曝光显影。

2.9 统计学方法 运用SPSS 22.0软件进行分析。数据符合正态分布,用(±s)表示,采用one-way ANOVA分析,方差齐用LSD检验,方差不齐用Games-Howell法检验;不符合正态分布以中位数(四分间距位)表示,采用非参数检验。

3 结 果

3.1 3组大鼠滑膜细胞上清液中SDF-1含量比较

见图1。

图1 3组大鼠滑膜细胞上清液中SDF-1含量比较

3.2 3组大鼠滑膜细胞SDF-1 mRNA和蛋白表达比较 见图2、图3。

图2 3组大鼠滑膜细胞SDF-1 mRNA表达比较

图3 3组大鼠滑膜细胞SDF-1蛋白表达比较

3.3 3组退变软骨细胞CXCR4、MMP-3、MMP-9和MMP-13 mRNA和蛋白表达比较 见图4、图5。

图4 3组退变软骨细胞CXCR4、MMP-3、MMP-9和MMP-13 mRNA表达比较

图5 3组退变软骨细胞CXCR4、MMP-3、MMP-9和MMP-13蛋白表达比较

4 讨 论

OA通常为关节内的局部炎症常伴随关节滑膜炎,滑膜通过分泌各类因子进入关节腔内,从而参与调节软骨及软骨细胞外基质的代谢活动。滑膜的肥大通常预示着关节的炎症和软骨及其基质的降解[15]。滑膜可以分泌基质降解酶直接参与软骨细胞外基质的降解,同时可启动其他软骨降解的信号通路,使得软骨破坏[16]。

SDF-1是骨髓基质细胞产生的CXC类趋化蛋白,可由骨髓基质细胞、骨髓内皮细胞等产生[17-18]。SDF-1在人体内有两种受体,CXCR4和CXCR7。在趋化因子中,SDF-1是CXCR4的唯一配体,KOA患者关节滑膜细胞会分泌SDF-1到滑液中[19],SDF-1可与软骨细胞上已存在的CXCR4结合从而影响软骨细胞的增殖、分化和成熟。有研究指出SDF-1可通过结合软骨细胞表面的CXCR4受体,从而激活细胞外信号调节酶(Erk)及细胞外信号调节酶相关激酶(p38 MAPK)等信号通路,导致基质金属蛋白酶(MMP)-3、9、13的合成增加,使得软骨细胞外基质破坏[19-20]。OA患者关节液中SDF-1的浓度显著高于健康人,且浓度与严重程度成正比[21]。但SDF-1对相关MMP的诱导只对软骨细胞有效而对滑膜细胞无作用[22-23]。总之,SDF-1/CXCR4信号通路在KOA患者的病理进程中具有重要作用。

本研究发现OA滑膜细胞上清液中SDF-1含量明显高于正常滑膜细胞上清液组,经过荣筋拈痛方含药血清干预后SDF-1含量降低。进一步采用Real-time PCR和Western blot法,从基因和蛋白两个方面检测滑膜细胞中SDF-1表达情况,发现与空白组相比,模型SDF-1表达明显增多,而经过荣筋拈痛方含药血清治疗后SDF-1表达量明显下降。与此同时,本研究同时采用Real-time PCR和Western blot法检测血清干预后的滑膜细胞上清液对退变软骨 细 胞CXCR4、MMP-3、MMP-9、MMP-13 mRNA和蛋白的影响,结果发现与空白组相比,模型组CXCR4、MMP-3、MMP-9和MMP-13表 达 明 显 增多,经过滑膜细胞上清液干预后CXCR4、MMP-3、MMP-9和MMP-13表达量明显下降。可见,荣筋拈痛方可能是通过调节滑膜细胞中SDF-1和软骨细胞中CXCR4表达,进而调节软骨细胞中MMP-3、MMP-9和MMP-13表达,起到防治KOA的作用,但是否是唯一途径,尚需要后期研究进一步验证。

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