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毛竹屑多糖分离纯化及抗炎活性研究

2020-12-31许子竞杨玉琼

湖南师范大学自然科学学报 2020年6期
关键词:精制纤维素凝胶

许子竞,杨玉琼,刘 茜

(1.贵州工程应用技术学院天然产物协同创新中心,中国 毕节 551700;2.毕节市民族药用植物研究重点实验室,中国 毕节 551700;3.梧州学院化学工程与资源再利用学院,中国 梧州 543000)

毛竹(Phyllostachysheterocycla(Carr.)Mitfordcv.Pubescens),又叫楠竹,体形笔直修长,是我国长江以南栽种的主要经济林之一。随着工业化的发展,毛竹常被制作成各种竹板材,各地生产企业用量大;然而在竹材加工过程中,产生了大量的锯屑和碎片,大多被当做废弃物而污染环境。随着现代天然产物化工技术的发展,毛竹被发现全身是宝。竹叶中含有黄酮类、酚酸、内酯、生物碱、生物活性多糖、氨基酸肽类、蒽醌类、萜类内酯等[1-3],大都有较强的生物活性作用[4-6]。目前,对竹叶的成分和开发应用研究得较多,竹叶中一些黄酮类提取物在食品、药品和化妆品中已得到了一定的应用[7,8];但对废弃的竹屑化学成分研究较少,尤其是竹屑中含有的具有生物活性的多糖[9,10],鲜见研究和报道。本试验利用微波水提竹屑中的多糖,然后进行分离、纯化、纯度检测及分子质量测定[11,12],并将精制的竹屑多糖(Polysachaide ofPhyllostachyspubescenschip, PPCP)对致炎小白鼠进行抗炎症试验[13-15],为竹屑多糖在食品、保健、日化等行业的应用提供理论依据,以期进一步开发竹类资源。

1 材料与方法

1.1 材料试剂与仪器

竹屑由贵州赤水赤化集团提供。

乙酸乙酯、无水乙醇、葡萄糖、苯酚、浓硫酸、氯仿、正丁醇、氯化钠、磷酸、磷酸氢钠,均为分析纯;D101 大孔树脂 (河北翔蓝化工公司);透析袋(上海华美生物工程公司);DEAE-纤维素(上海化学试剂一厂);Sephadex G-15,Sepharose 6 Fast Flow (Pharmacia公司);巴豆油合剂、昆明系小鼠(均购自贵州医科大学),葡聚糖标样(美国Sigma公司);吲哚美辛(Sigma-Aldrich)。

中速台式离心机(上海安亭科学仪器厂);2102PCS 紫外-可见分光光度计(尤尼科(上海)仪器有限公司);冷冻真空干燥器(北京博医康技术有限公司);旋转蒸发仪系列(河南益华设备有限公司);微波提取设备(10 L)(天水华源微波设备有限公司);BSZ-100B 型自动部分收集器(上海青浦泸西仪器公司);Waters 515型凝胶色谱仪(美国Waters 公司)。

1.2 试验方法

1.2.1 竹屑多糖PPCP的提取、分离、纯化[16,17]

1.2.1.1 提取 取烘干恒重的竹屑粉末6 kg,用微波提取器分2批次,在80 ℃下提取3次,每次40 min;提取液离心去杂、减压浓缩至原体积的1/10左右,加乙醇至含醇80%~85%,静置过夜,离心,得PPCP沉淀物。PPCP冷冻干燥,得粗多糖干燥物,用索氏提取器,以乙酸乙酯回流提取PPCP干燥物,去除非糖脂溶性物质。

1.2.1.2 脱色 将1.2.1.1所得PPCP配成水溶液,直至沉淀物不再溶解,过滤,取滤液过D101大孔树脂,用纯化水洗脱,收集水洗脱液,浓缩至稀流膏状。

1.2.1.3 分离 将1.2.1.2稀流膏稀释,DEAE-纤维素柱梯度洗脱,依次用纯化水和NaCl溶液(0.16,0.26,0.36 mol·L-1)洗脱,用苯酚-硫酸显色检测,紫外检测吸光度,收集水和NaCl溶液洗脱液,依次命名PPCP-0,PPCP-0.16,PPCP-0.26和PPCP-0.36。

1.2.1.4 脱蛋白 用水、NaCl溶液洗脱液,采用Sevage(V(氯仿)∶V(正丁醇)=4∶1)法脱蛋白,在紫外260~280 nm处检测,无明显吸收峰,表明脱蛋白已符合试验要求。

1.2.1.5 脱盐 脱蛋白后的PPCP溶液过葡聚糖凝胶Sephadex G-15柱,脱盐。

1.2.1.6 透析 将1.2.1.5的PPCP溶液浓缩,装入精密透析袋(1.0 kDa)内,活水透析3日以上,去除残留盐及色素。

1.2.1.7 凝胶纯化 由于PPCP-0,PPCP-0.26和PPCP-0.36质量过少,不足以支撑后续研究。将透析后质量较多的PPCP-0.16溶液浓缩,过0.45 μm微孔滤膜,经琼脂糖凝胶Sepharose 6 FF柱纯化水洗脱,自动收集器收集,收集管用苯酚-硫酸显色检测,依据吸光度强弱绘制洗脱曲线,根据曲线峰形收集合并试管收集液,得3个组分PPCP-0.16-1,PPCP-0.26-2和PPCP-0.36-3,冷冻干燥。

1.2.2 PPCP组分纯度鉴定和相对分子质量测定 采用凝胶渗透色谱法,Waters 600型凝胶色谱仪,TOSOH BIOSEP G4000SWXL柱(7.8 mm×300 mm ),柱温:40 ℃,检测器温度:40 ℃;流动相:0.05 mol·L-1H3PO4-Na2HPO4缓冲液(pH6.7,加质量分数为0.05%的NaN3);流速:1.0 mL·min-1;示差折光检测,进样体积20 μL;以平均分子量(Mp)为2.14×103,4.35×103,1.248×104,2.96×105,4.77×104,8.010×104,1.12×105和2.25×105的葡聚糖为对照品检测。

1.3 精制多糖PPCP消炎活性研究

将精制多糖(脱蛋白后的多糖),对昆明种小鼠做抗炎活性试验。小鼠50只,体重19~21 g,雌雄各半,按体重随机分为模型组(纯化水10 mL·kg-1),阳性对照(吲哚美辛 5 mg·kg-1)组,按低(0.1 mg·kg-1)、中(0.5 mg·kg-1)、高(1.0 mg·kg-1)剂量药给小鼠灌胃,连续3 d给药,最后一次给药后30 min于各鼠左耳用2%巴豆油合剂0.05 mL致炎,右耳作对照[18,19],4 h后将小鼠拉断颈椎处死,剪下两耳,用直径8 mm打孔器分别在同一部位打圆耳片,分析天平称取小鼠左右耳质量,以其差值作为炎性肿胀程度,并计算肿胀抑制率,计算公式为:肿胀率=(右耳质量-左耳质量)/左耳质量;抑制率=(1-给药组平均肿胀率/模型组平均肿胀率)×100%。

2 结果与分析

2.1 竹屑多糖微波辅助提取及脱蛋白

6.0 kg竹屑在微波辅助下水提,得粗多糖PPCP 144.03 g,苯酚-硫酸检测,粗多糖提取率为 2.04%,粗多糖PPCP经脱色、脱蛋白,得精制PPCP 62.29 g。PPCP脱蛋白前后经紫外线检测,在250~280 nm处无吸收峰,如图1所示,表明PPCP脱蛋白很好。

2.2 PPCP上DEAE-纤维素柱梯度洗脱

PPCP溶液上DEAE-纤维素柱洗脱分离,分别用纯化水,NaCl溶液(0.16,0.26,0.36 mol·L-1)梯度洗脱,苯酚-硫酸显色,依据紫外线吸收强度,绘制洗脱曲线。图2为0.16 mol·L-1NaCl溶液洗脱PPCP的吸光度曲线图,其中1 BV=10 mL。

图1 紫外检测PPCP脱蛋白前后图谱Fig. 1 UV spectra of PPCP before and after removing protein

图2 0.16 mol·L-1 NaCl溶液在DEAE—纤维素柱上洗脱曲线Fig. 2 Elution curve of 0.16 mol·L-1 NaCl solution on DEAE-cellulose column

2.3 PPCP-0.16上琼脂糖凝胶Sepharose 6 FF柱纯化

将0.16 mol·L-1NaCl溶液洗脱DEAE-纤维素柱的收集液,用Sepharose 6 FF柱进一步分离纯化,纯化水洗脱,依据紫外吸光度强弱与对应收集的试管数(每支试管容量10 mL,计1 BV),绘制吸光度与试管数的洗脱曲线,如图3所示,依据曲线形状从左至右依序分别命名为PPCP-0.16-1,PPCP-0.16-2和PPCP-0.16-3。

2.4 PPCP组分纯度鉴定和相对分子质量测定

采用高效凝胶过滤色谱法进行鉴定分析,同时测定PPCP-0.16-1,PPCP-0.16-2和PPCP-0.16-3相对分子质量,由图4可知,3个组分经高效凝胶过滤色谱检测,得相对对称的单一洗脱峰型,表明竹屑粗多糖PPCP经树脂脱色、脱蛋白、DEAE-纤维素柱分离、Sephadex G-15和透析脱盐、Sepharose 6 FF进一步纯化,得相对均一的多糖组分,其相对分子质量及分布参数如表1所示。

图3 0.16 mol·L-1NaCl洗脱液上Sepharose 6 FF柱分离组分曲线Fig. 3 Separation curve of 0.16 mol·L-1 NaCl eluent on Sepharose 6 FF column

表1 PPCP-0.16 纯化3个组分的相对分子质量和分布参数

图4 PPCP-0.16-1,PPCP-0.16-2和PPCP-0.16-3 分子过凝胶的色谱检测图Fig. 4 Chart of PPCP-0.16-1,PPCP-0.16-2 and PPCP-0.16-3 through the chromatographic detection gel

2.5 精制多糖PPCP的抗消炎活性试验

精制多糖PPCP高、中剂量及阳性对照药(吲哚美辛)能降低巴豆油致小鼠耳廓肿胀,且与模型对照组相比有显著性差异(P<0.05),见表2.

表2 PPCP对小鼠耳片肿胀的影响

3 结论

竹屑在微波辅助下水提获得粗多糖PPCP,粗多糖提取率为 2.04%,再经树脂D101脱色和Sevage法脱蛋白,得精制PPCP。用0.16 mol·L-1NaCl溶液洗脱DEAE-纤维素柱,洗脱液经Sephadex G-15和透析脱盐,再经Sepharose 6 FF进一步纯化,得3个相对均一的多糖组分PPCP-0.16-1,PPCP-0.16-2和PPCP-0.16-3,其峰值分子量分别为5 782,5 845,4 731。精制多糖PPCP对致炎小白鼠进行抗炎试验,结果表明,精制PPCP对炎症有一定的抑制率。目前,国内外对竹屑多糖的研究鲜有报道,本研究将为竹屑的开发利用提供理论依据。

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