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猪脾转移因子注射液异常毒性检查研究

2020-12-14游开铿林祚贵郜飞燕胡小榕傅光华施少华刘小龙许秀梅廖惠珍张渊魁

福建畜牧兽医 2020年6期
关键词:药典毒性小鼠

徐 磊 游开铿 郑 青 林祚贵 郜飞燕 胡小榕 傅光华 施少华 刘小龙 许秀梅 杜 君 廖惠珍 黄 瑜* 张渊魁*

(1.福建农业职业技术学院 福州 350119;2.福建省农业科学院畜牧兽医研究所 福州 350013;3.派生特(福州)生物科技有限公司 福州 350500;4.兆丰华生物科技(南京)有限公司 南京 211102;5.福州市长乐区农业农村局 福建长乐 350200)

转移因子(Transfer Factor,TF)是动物白细胞中具有免疫活性的T 淋巴细胞所释放的一类能够转移致敏信息的可透析小分子量物质。 作为多肽类物质,TF 的肽分子量相比蛋白质小很多, 但具有较高的生物学活性,具有无毒副作用、无药物残留、无抗原性、分子质量小、不产生对抗抗体、不引起过敏反应、使用安全、作用迅速、效果显著、来源广、无种属特异性和可超越种系界限应用的优点, 具有十分重要的研究价值和应用价值[1-6]。 在人类医学中,TF 不仅已成为当前无法治疗的疾病的标准疗法, 而且已成为现有疗法具有毒副作用的疾病的标准疗法。 此外,TF 还作为与抗菌药或抗病毒药联合使用的辅助药物, 已被广泛用于无确切疗法的细菌病和病毒病的治疗[7-8]。 1979 年TF 被引入到兽医免疫和临床治疗中,可以提高猪、鸡、羊等多种动物的细胞免疫水平和体液免疫水平[9-14]。

有别于药品本身具有的毒性特征, 异常毒性是指由生产制造过程中引入或其它原因所致的毒性。异常毒性检查法,不仅可用于检查药品在生产制造、制剂过程中引入的外来异物, 而且可用于检查药物降解产生的不正常毒性反应, 适用于对多组分多成分制品中有毒杂质和有毒成分的检测[15-16]。

本研究旨在建立TF 的异常毒性检查方法,并对本发明专利TF 制造技术进行工艺验证, 按照本课题组已授权国家发明专利TF 制造技术制备3 批TF[17-20],通过小鼠动物模型建立异常毒性检查方法,并对3 批TF 开展异常毒性检查, 以期明确本发明专利TF 制造技术对异常毒性的控制效果, 为规模化制造兽用TF 提供依据。

1 材料和方法

1.1 试验动物 体重17~20 g 健康昆明小鼠,由福建医科大学实验动物中心提供。

1.2 TF 制备 按照本课题组已授权的国家发明专利制备3 批TF[17-20]:以健康猪脾脏为原料,经匀浆、细胞破碎、灭活、微滤、超滤、除菌后精制而成,3 批TF 分别为 TF-1、TF-2、TF-3。 经检验, 所制备 3 批TF 的多肽含量分别为 2.92 mg/mL、2.68 mg/mL 和2.60 mg/mL, 脱 E 受体法效力分别为 15.7%、15.4%和 17.1%,核糖含量分别为 59.8 μg/mL、58.4 μg/mL和 56.3 μg/mL, 细菌内毒素含量均不超过10 EU/mL,pH 值 分 别 为 6.88、6.92 和 6.96, 在253 nm 处均有最大吸收峰,OD260nm/OD280nm的比值分别为 2.29、2.30 和 2.32(均大于 1.9),无菌检验、支原体检验、外源病毒检验、安全检验、过敏反应检查、蛋白质定性检验、热原检查均合格。

1.3 试剂 磷酸二氢钾、磷酸氢二钠、氯化钠、碳酸氢钠、碳酸钠、生理盐水均购自国药集团化学试剂有限公司。

1.4 仪器 光学显微镜为Nikon 公司产品, 型号:ECLIPSE E100; 紫外分光光度计为日本岛津产品,型号:UVmini-1240;离心机为湖南湘仪实验室仪器开发有限公司产品,型号:TDZ5-WS;电子天平为上海精科天美科学仪器有限公司产品, 型号:JA2603B; 水浴锅为上海上登实验设备有限公司产品,型号:HH-S2。

1.5 试验设计 按照现行《中国兽药典》附录“异常毒性检查法”对3 批TF 进行异常毒性检查,具体如下:取小鼠 15 只,随机分成 3 组:第 1 组、第 2 组和第 3 组,每组 5 只,分别编号 1~15。 3 批 TF 各随机抽取 3 瓶,TF-1、TF-2 和 TF-3 分别对应混匀后作为待检样品。第1、2 及3 组小鼠分别以0.5 mL/只剂量腹腔注射待检样品,进行异常毒性检查,试验设计见表1。

表1 异常毒性检查试验设计

1.6 结果判定 48 h 内小鼠应全部健活;如果小鼠有死亡, 应选取加倍数量小鼠开展重检,48 h 内重检小鼠应全部健活。

2 结 果

结果显示,3 组小鼠于腹腔注射后48 h 内均健活,15 只小鼠全部没有出现异常情况,见表2。因此,判定3 批TF 无异常毒性,3 批TF 的异常毒性检查结果均符合现行《中国兽药典》规定。

表2 试验结果

3 结 论

目前, 我国的兽用药品检验是按照 《中国兽药典》2015 年版的标准来执行的。 在兽药典中安全性检查包括有无菌、微生物限度、热原、细菌内毒素、异常毒性、过敏等检查项目。 异常毒性、过敏检查是生物类药物所特有。 其中, 异常毒性检查法是用于检查药物的生产工艺水平, 而不是检查药物本身毒性[21]。

常规 TF 制备技术利用透析法回收 TF,即Lawrence 方法。 该法工艺简单易于实现、操作简单、设施设备投入少。 但是,Lawrence 方法依靠透析袋内外浓度差完成透过分离,属于无动力分离,不仅具有透过效率差、 分离收率低、 物料浪费大等工艺劣势,而且Lawrence 方法工艺时间长、制备周期长、容易细菌繁殖导致所获得TF 容易腐败、 内毒素含量高。 此外,Lawrence 方法制备 TF,机械化程度低,主要依靠人员手工操作将透析原液转移至透析袋内进行透析,在人工装袋过程中,透析原液中的外源细菌和外源病毒极易污染透析袋外壁, 并且所用透析袋的完整性无法验证,容易出现不易察觉的轻微损伤,这些均导致TF 异常毒性检验容易出现不合格。 因此, 生产稳定性差,Lawrence 方法不适合规模化生产。

本课题组已授权的国家发明专利TF 制备技术,采用切向流过滤方法制备TF[17-20]。 有别于Lawrence方法及其他常规垂直过滤方法, 切向流过滤方法采用液体流动方向与过滤方向垂直的工艺流程,即:液体流动方向与过滤膜平面平行, 部分液体在侧向跨膜压力的作用下垂直穿过膜孔,实现组分分离。切向流过滤方法会产生二次流,即湍流。在二次流的作用下,流动液体会在过滤介质表面产生剪切力,使过滤介质表面的沉淀从膜表面剥离,减少了凝胶层(滤饼层)在膜表面的堆积,降低了过滤介质表面堵塞和污染的机率,保证了稳定的过滤速度[22]。

本试验按照现行《中国兽药典》附录中“异常毒性检查法”,对本课题组已授权国家发明专利TF 制备技术所制备的3 批猪脾转移因子注射液开展异常毒性检查。 结果显示,3 批猪脾转移因子注射液腹腔注射后48 h 内全部小鼠均健活,符合现行《中国兽药典》规定。 结果表明,本发明专利制备的猪脾转移因子注射液无异常毒性, 制造工艺异常毒性的控制效果良好,保证TF 制品的安全性。

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