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蔓三七叶多糖的柱层析纯化及理化性质研究

2020-03-07李华勇胡居吾

生物化工 2020年1期
关键词:氯乙酸柱层析葡聚糖

李华勇,胡居吾

(1.江西省吉安市食品药品检验检测中心,江西吉安 343000;2.江西省科学院应用化学研究所,江西南昌 330096)

蔓三七,又名平卧菊三七,为多年生草本药食两用植物。蔓三七茎叶营养丰富,富含粗多糖和绿原酸等成分,多利用其消炎止咳、通经活络、消肿止痛,可用于治疗肺结核、支气管肺炎等[1]。现代生物化学和医学研究证明,蔓三七具有消炎止咳,散淤消肿等功效[2],还具有提高人体免疫力、改善机体免疫功能的作用[3],降血糖、降血压和抑制乙型肝炎的显著效果[4]。蔓三七又和木耳菜同属,食味柔滑,清香可口,具有极好的营养价值;可清炒、凉拌、氽汤,其叶也可生吃,或取鲜叶开水冲泡当茶饮,具有较高的经济价值。其中含有的多糖具有复杂的化学结构及丰富的生物活性,包括抗肿瘤[5]、抗炎[6]、抑制血管生成[7]、抗感染[8]、改善免疫功能[9]、调节血糖血脂[10]、保肝[11]等多种功效。

植物多糖经提取后,提取液中常含有蛋白质、色素、单糖、无机盐和各种小分子杂质,需要对粗多糖进行分离纯化。由于色素、小分子杂质在原料预处理(石油醚脱脂、乙醇浸泡)和醇沉过程中几乎被除去,因此除蛋白是多糖纯化过程中的重要环节,常用除蛋白的主要方法为Sevage法、木瓜蛋白酶法、三氯乙酸法等[12-13]。为了获得纯多糖组分,还需通过色谱柱法或分级沉淀法对除蛋白多糖进一步分离。

本研究采用三氯乙酸法对蔓三七叶粗多糖进行除蛋白,并利用DEAE-52纤维素柱和Sephadex G-75葡聚糖凝柱对除去蛋白的蔓三七叶多糖分离纯化,同时对纯化后的蔓三七叶多糖的理化性质进行测定。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

蔓三七叶,购买自江西华紫仁农业开发有限公司,烘干、粉碎后过20目筛备用。

三氯乙酸、考马斯亮蓝G-250、碘化钾、牛血清蛋白、氯化钠,均为分析纯,国药集团化学试剂有限公司生产;纤维素填料 DEAE-52、葡聚糖凝胶G-75均为索莱宝生物科技有限公司生产。

1.2 仪器与设备

DZF-6090Z型真空干燥箱,上海跃进医疗器械有限公司;UV-1800 紫外可见分光光度计,日本岛津仪器有限公司;METTLER-TOLEDOAL104型电子天平,瑞士梅特勒-托利多公司;FD-1C-50冷冻干燥机,上海豫明仪器有限公司;层析柱(3 cm×30 cm),上海沪西分析仪器厂;CTO-20A柱温箱、RLO-10Z示差折光检测器,日本岛津公司。

1.3 试验方法

1.3.1 蔓三七叶粗多糖的提取

取烘干、粉碎后的蔓三七叶,按料液比1∶15加入蒸馏水,于65 ℃恒温水浴2.5 h,离心、抽滤,滤渣部分继续用同样方法浸提,上清液合并浓缩后缓慢加入4倍体积的无水乙醇沉淀粗多糖,于4 ℃低温静置24 h,再以 4 800 r/min 离心 10 min,收集下层粗多糖沉淀,最后用无水乙醇洗涤2次,沉淀物用65 ℃超纯水溶解、备用[14]。

1.3.2 蔓三七叶粗多糖中蛋白的去除

1.3.2.1 蛋白去除

采用三氯乙酸法除去蔓三七叶粗多糖中的蛋白质。将1.3.1下提取的蔓三七叶粗多糖溶解于蒸馏水并置于冰浴中,缓慢加入15%的三氯乙酸,不断搅拌直至溶液的pH为2~3,4 ℃下保持1 h,以达到蛋白质与多糖分离的效果。将溶液取出,离心15 min,收集上清液,浓缩,冷冻干燥得蔓三七叶除蛋白多糖样品[15]。

1.3.2.2 除蛋白多糖中蛋白质含量的测定

参照考马斯亮蓝法并稍作修改。配置0.1 mg/mL的牛血清蛋白溶液,分别称取 0.0 mL、0.1 mL、0.2 mL、0.4 mL、0.6 mL、0.8 mL和1.0 mL至7个试管中,依次加蒸馏水补充到1 mL,再分别加入5 mL考马斯亮蓝试剂,立即摇匀,静置10 min。以第1只试管中的溶液作参比,测定595 nm处的吸光度,绘制牛血清蛋白溶液和吸光度的标准曲线。

将多糖样品配置成一定浓度,取1 mL按照上述操作测定样品中蛋白质含量。根据公式1和公式2计算蛋白质去除率和多糖保留率。

1.3.3 蔓三七叶多糖的DEAE-52纤维素柱层析

1.3.3.1 DEAE-52纤维素的预处理及装柱

将干燥的DEAE-52纤维素用蒸馏水浸泡24 h,使其充分溶胀,并不断搅拌以除去泡沫和杂质。将溶胀好的DEAE-52纤维素放置于0.5 mol/L的NaOH溶液中浸泡30 min,反复用蒸馏水洗至中性;再将碱处理后的DEAE-52纤维素置于0.5 mol/L的HCl溶液中浸泡30 min,用蒸馏水洗至中性,最后再置于0.5 mol/L的NaOH溶液浸泡30 min,蒸馏水洗至中性备用[12]。将预处理好的DEAE-52纤维素用适量蒸馏水溶解,搅拌均匀,缓慢地倒入层析柱(3.0 cm×30 cm),尽量避免装柱过程产生气泡,必要时可进行加压装填。为了使柱料稳定,需用蒸馏水平衡过夜。

1.3.3.2 多糖的DEAE-52纤维素柱层析

准确称取200 mg去除蛋白的蔓三七叶多糖样品,用极少量的蒸馏水溶解。将溶解的蔓三七叶多糖样品用胶头滴管沿着层析柱壁缓慢加入,待样品进入柱层析稳定后,依次用蒸馏水和NaCl溶液(0.05 moL/L、0.10 moL/L、0.20 moL/L)以 1 mL/min的流速进行洗脱。每管收集5 mL,并通过苯酚-硫酸法对每管中多糖的含量进行监测,绘制洗脱管数和吸光度值的洗脱曲线。根据洗脱曲线的峰形,分别收集洗脱液。然后对洗脱液进行浓缩、冷冻干燥,获得初步分离的蔓三七叶多糖组分,进行下一步SephadexG-75葡聚糖凝胶柱层析分离研究[15]。

1.3.4 蔓三七叶多糖的Sephadex G-75葡聚糖凝胶柱层析

1.3.4.1 Sephadex G-75葡聚糖凝胶的预处理及装柱

将干燥的Sephadex G-75葡聚糖凝胶粉末用蒸馏水煮沸3 h,使其充分溶胀。采用湿法装柱,将预处理好的葡聚糖凝胶用适量蒸馏水溶解并搅拌均匀,缓慢地倒入层析柱(3.0 cm×50 cm),避免柱内产生气泡和流干水分。装好的层析柱用蒸馏水平衡过夜。

1.3.4.2 蔓三七叶多糖的Sephadex G-75葡聚糖凝胶柱层析

将通过DEAE-52纤维素柱收集到的蔓三七叶多糖组分溶解于蒸馏水,并利用胶头滴管沿柱壁缓慢加入,待样品溶液稳定后,用蒸馏水以0.5 mL/min的流速进行洗脱。每管收集2 mL,共收集60管。再次用苯酚-硫酸法进行检测,绘制洗脱曲线。收集蔓三七叶多糖含量较高的组分,浓缩、冷冻干燥获得蔓三七叶纯多糖组分[15]。

1.3.5 蔓三七叶纯多糖理化性质的测定

1.3.5.1 物理状态检测

对蔓三七叶纯多糖的颜色、形态以及溶解性进行观察。

1.3.5.2 化学检测

考马斯亮蓝试验:参照1.3.2.2蛋白质含量的测定方法,将蔓三七叶纯多糖组分用蒸馏水溶解,加入5 mL考马斯亮蓝,混合均匀后观察其颜色变化。

苯酚-硫酸试验:参照胡居吾等[14]测定多糖含量的方法,将蔓三七叶纯多糖组分用蒸馏水溶解,加入1 mL苯酚,再缓慢加入浓硫酸,混合后观察颜色变化,并测定其多糖含量。

碘化钾试验:将蔓三七叶纯多糖组分用蒸馏水溶解,加入几滴碘-碘化钾溶液,观察其颜色变化,判断是否为淀粉类多糖[16]。

2 结果与分析

2.1 粗多糖中蛋白质去除率的测定

2.1.1 蛋白质标准曲线

以牛血清蛋白标准溶液的浓度为横坐标,吸光度值为纵坐标,制作标准曲线,结果如图1所示。回归方程y=7.794 5x+0.065 6(R2=0.999 7)。

图1 蛋白质标准曲线

2.1.2 粗多糖蛋白质去除率

蔓三七叶粗多糖被三氯乙酸除蛋白后,多糖中大部分蛋白质已被除去。经计算,蔓三七叶粗多糖中的蛋白质去除率为93.35%,蔓三七叶粗多糖保留率为84.27%。

2.2 DEAE-52纤维素柱纯化结果

从洗脱曲线(图2)可以看出,在本试验洗脱条件下得到4个洗脱峰,分别是以蒸馏水及0.05 mol/L、0.10 mol/L、0.20 mol/L 的 NaCl溶液洗脱得到。这是由于蔓三七叶多糖在以蒸馏水作洗脱溶液时,有些不带电多糖或者带有很弱的负电荷多糖不能被DEAE-52纤维素吸附或者吸附很弱,首先随着蒸馏水洗脱下来,即是图中的第1个洗脱峰。而多糖中带有负电荷的部分,被DEAE-52纤维素所吸附,必须用比DEAE-52纤维素吸附更强的Cl-、OH-来洗脱,才能将这部分蔓三七叶多糖洗脱下来。由图2洗脱曲线可以看出,在以不同浓度NaCl洗脱时均能得到或高或低的洗脱峰,考虑到节省时间和节约成本等因素,选取第1个峰位置与第4个峰位置进行收集,即分别以蒸馏水和0.2 mol/L的NaCl溶液作为洗脱液,洗脱下的多糖分别为蔓三七叶中性多糖(GPLP-D1)和蔓三七叶酸性多糖(GPLP-D2)。

图2 DEAE-52洗脱曲线

2.3 Sephadex G-75葡聚糖凝胶柱层析洗脱

蔓三七叶多糖组分中性多糖(GPLP-D1)和蔓三七叶酸性多糖(GPLP-D2)分别经过Sephadex G-75葡聚糖凝胶柱层析的洗脱结果如图3a和图3b所示。由图3a和图3b可知,蔓三七叶中性多糖(GPLP-D1)和蔓三七叶酸性多糖(GPLP-D2)经蒸馏水洗脱后均出现单一的吸收峰,分别收集两种洗脱液,浓缩、冷冻干燥后分别得到蔓三七叶中性纯多糖(GPLP-S1)和蔓三七叶酸性纯多糖(GPLP-S2)。

图3 Sephadex G-75 洗脱曲线

2.4 GPLP-S1和GPLP-S2理化性质的测定

GPLP-S1和GPLP-S2的理化性质如表1所示。GPLP-S1和GPLP-S2均为白色粉末,都易溶于水,不易溶于乙醇、丙酮等有机试剂。GPLP-S1、GPLP-S2与苯酚-硫酸反应后均显示出多糖成分,与考马斯亮蓝和碘化钾反应后颜色均无明显改变,表明两种多糖是非淀粉多糖且不含蛋白质,多糖纯度分别为91.65%和92.06%。

3 结论

本研究首先在最佳条件下对蔓三七叶粗多糖进行提取,然后采用三氯乙酸法除蛋白,再通过DEAE-52纤维素柱层析和Sephadex G-75葡聚糖凝胶柱层析进一步分离纯化,最后测定了蔓三七叶纯多糖组分GPLP-S1和GPLP-S2的理化性质。主要结论如下:

(1)经过三氯乙酸除蛋白后,蔓三七叶多糖中蛋白质去除率为92.35%,多糖保留率为82.74%,表明蔓三七叶多糖中的蛋白质可通过三氯乙酸法除去。

表1 GPLP-S1和GPLP-S2理化性质

(2)蔓三七叶粗多糖经DEAE-52纤维素柱层析和Sephadex G-75葡聚糖凝胶柱层析分离纯化后得到纯多糖组分GPLP-S1和GPLP-S2。

(3)GPLP-S1和GPLP-S2的物理状态检测显示,两者形态均为白色粉末,易溶于水,不易溶有机试剂;GPLP-S1和GPLP-S2的化学试验结果显示,两者均不含蛋白质,都具有多糖成分且是非淀粉类多糖,多糖纯度分别为91.56%和90.78%。

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