3-磷酸甘油醛脱氢酶促进谷氨酸棒杆菌发酵生产L-精氨酸和L-鸟氨酸

阚宝军，董晋军，刘晖，占米林，许国超，韩瑞枝，倪晔*

1(江南大学 生物工程学院，生物催化与酶工程研究室，江苏 无锡，214122) 2(工业生物技术教育部重点实验室(江南大学)，江苏 无锡，214122)

L-鸟氨酸(L-Ornithine)和L-精氨酸(L-Arginine)作为尿素循环的中间代谢产物，具有多种重要的生理生化功能，在食品、医药和保健品等领域具有广泛的应用[1]。L-精氨酸是合成肌酸、蛋白质的重要原料，是体内信号分子NO的唯一前体，可用于治疗心绞痛、神经性疾病和肝硬化等[2]。L-鸟氨酸有益于创伤、烧伤、感染甚至癌症等疾病的恢复，对肝病也有治疗作用[3-4]，还具有良好的减肥保健作用[5]。L-精氨酸的生产方法主要有毛发水解液提取和微生物发酵法。目前，L-鸟氨酸可以通过精氨酸酶水解L-精氨酸和微生物好氧发酵2种方法来生产[6]。

谷氨酸棒杆菌(Corynebacteriumglutamicum)是一种环境友好的非致病性革兰氏阳性土壤细菌，已广泛应用于多种有机酸和氨基酸的工业生产[7]。在谷氨酸棒杆菌中，合成氨基酸通常需要消耗大量的NADPH。在L-精氨酸合成途径中每生产1 molL-精氨酸，需要消耗3 mol的NADPH[8]，对于L-鸟氨酸的合成，至少需要消耗2 mol NADPH才能合成1 molL-鸟氨酸[9]，因此，胞内NADPH的供给被认为是L-精氨酸及L-鸟氨酸合成的限制因素。

TAKENO等[10]用变异链球菌来源的NADP+依赖型甘油醛-3-磷酸脱氢酶(GAPDH)替代内源性NAD+依赖型甘油醛-3-磷酸脱氢酶，来改善谷氨酸棒杆菌NADPH水平和提高L-赖氨酸产量。郭雯等[11]通过加强胞内NAD+依赖型的GAPDH表达，L-丝氨酸的产量和生产强度均提高了17.4%[11]，说明GAPDH是谷氨酸棒杆菌中的限速酶，通过增加该酶的表达可以增强糖酵解途径代谢流。

谷氨酸棒状杆菌SNK118(C.glutamicumSNK118)是本实验室构建的L-精氨酸生产菌株[12]。如图1所示，在谷氨酸棒杆菌中，L-谷氨酸可以通过由ArgC、ArgJ、ArgB和ArgD组成的代谢途径生成L-鸟氨酸，再由ArgF、ArgG和ArgH 3个酶催化生成L-精氨酸。采用CRISPR-Cpf1技术[13]敲除argF基因以积累L-鸟氨酸，通过敲除argR(精氨酸操纵子阻遏蛋白基因[14])可增加L-鸟氨酸产量。本研究拟在谷氨酸棒杆菌中重组表达梭菌来源的NADP+依赖型的GAPDH编码基因，以增加糖酵解途径代谢流，同时提高胞内NADPH含量，提高L-精氨酸以及L-鸟氨酸的产量。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 菌种、质粒及引物

本研究中所涉及到的菌株与质粒和引物及其相关性质等描述见表1和表2。

表1 本文所用的菌株与质粒

表2 本研究所用的引物

1.1.2 试剂

非连接酶依赖型单片段快速一步克隆试剂盒，南京诺唯赞生物科技有限公司；Gibson无缝连接试剂盒，NEB公司；DL-三磷酸甘油醛，Sigma-Aldrich公司；限制性核酸内切酶、Primer STAR DNA聚合酶，Takara宝生物工程有限公司；其他试剂，国药集团(上海)化学试剂，有限公司。

1.1.3 培养基

(1)谷氨酸棒杆菌活化用BHI培养基(g/L)：NaCl 5，蛋白胨10，脑心浸液18.5，酵母粉5，pH值调至7.2～7.4。固体培养基添加17的琼脂粉，115 ℃灭菌20 min。

(2)谷氨酸棒状杆菌感受态细胞制备用EPO培养基(g/L)：蛋白胨10，酵母粉 5，NaCl 10，甘氨酸 25，吐温-80 1，异烟肼 0.4，脑心浸液18.5，121 ℃灭菌20 min。

(3)谷氨酸棒状杆菌电转恢复用LB-HIS培养基(g/L)：NaCl 5，蛋白胨20，脑心浸液18.5，酵母粉10，D-山梨醇91，pH值调至7.2～7.4。固体培养基添加17 g/L的琼脂粉，121 ℃灭菌20 min。

(4)种子培养基：葡萄糖30 g/L(115 ℃灭菌16 min，分消)，生物素 50 μg/L(滤膜过滤除菌)，玉米浆干粉25 g/L，(NH4)2SO45 g/L，尿素 0.8 g/L，MgSO4·7H2O 0.5 g/L，KH2PO41.5 g/L，K2HPO4·3H2O 0.5 g/L，pH值调至7.2～7.4，121 ℃灭菌20 min。

(5)发酵培养基：KH2PO41.5 g/L，K2HPO4·3H2O 0.5 g/L，尿素0.75 g/L，MgSO4·7H2O 1 g/L，玉米浆干粉20 g/L，(NH4)2SO440 g/L，MnSO4·H2O 22.38 mg/L，FeSO4·7H2O 18.3 mg/L，pH调至7.2～7.4，121 ℃灭菌20 min；葡萄糖100 g/L(115 ℃灭菌15 min，分消)，CaCO330 g/L(160 ℃干热灭菌1.5～2 h)，生物素 100 μg/L，维生素B1200 μg/L。装液量30 mL/500 mL。

1.2 试验方法

1.2.1 重组表达质粒的构建

本研究共克隆了3个GAPDH编码基因：CagapC、CbgapC和CsgapC，分别来源于梭菌C.beijerinckiiDSM 1739、C.acetobutylicum1.7和C.saccharobutylicumDSM 13864。以构建pXMJ19-CsgapC的方法为例，首先以pXMJ19为载体质粒，选取HindIII和XbaI双酶切质粒使其线性化，将酶切产物纯化回收。同时以ClostridiumsaccharobutylicumDSM 13864基因组为模板，以CsgapC-F/CsgapC-R为引物，PCR扩增得到CsgapC片段，其中片段两端带有质粒的同源臂片段，凝胶电泳验证并通过胶回收试剂盒纯化。将纯化好的CsgapC片段与pXMJ19片段通过快速一步克隆试剂盒连接。连接产物转化至E.coliJM109感受态细胞，通过pXMJ19多克隆位点上下游序列设计的通用引物pXMJ19-F/pXMJ19-R进行菌落PCR，验证并提取质粒测序确认。质粒pXMJ19-CbgapC和pXMJ19-CagapC的构建参考本方法。重组质粒pXMJ19-CsgapC构建流程见图1、图2。

图1 谷氨酸棒杆菌中L-鸟氨酸和L-精氨酸的合成途径

Fig.1 The biosynthesis pathway of L-ornithine and L-arginine in C. glutamicum

图2 pXMJ19-CsgapC质粒构建

Fig.2 Construction of pXMJ19-CsgapC plasmid

1.2.2 CRISPR-Cpf1系统基因敲除质粒pJYS3_ΔargFΔargR的构建

基因argF和argR在谷氨酸棒状杆菌基因组上的位置相距48 bp。首先以质粒pJYS3_ΔcrtYf作为模板，通过引物crRNA_argFR-F/crRNA_argFR-F引入定点突变，即通过全质粒PCR反应将crtYf基因的crRNA序列(GAATTTCTACTGTTGTAGATCAGGCAACCA-TAGGGCAGGAA)替换为argF基因的crRNA序列(GAATTTCTACTGTTGTAGATGTCCC-TCGAGTGGACGCTCCG)。DpnI消化掉PCR产物中的母本质粒，消化液转入克隆宿主E.coliJM109。测序验证正确后获得pJYS3-I质粒。然后，以pJYS3-F/pJYS3-R为引物，pJYS3-I为模板，PCR扩增得到不包含crtYf基因上下游同源臂的pJYS3-H片段。同时以C.glutamicumSNK118基因组为模板，分别以引物argFR-D-F/argFR-D-R与argFR-U-F/argFR-U-R扩增出基因的下游D与上游U同源片段。胶回收纯化以上3个目的片段，通过Gibson组装法[16]将这3个片段进行组装连接。构建成功获得质粒pJYS3_ΔargFΔargR。质粒的构建流程如图3所示。

图3 敲除质粒pJYS3_ΔargFΔargR的构建

Fig.3 Construction of knockout plasmid pJYS3_ΔargFΔargR

1.2.3 异源基因表达重组菌株的构建

(1)重组大肠杆菌的构建

参考SAMBROOK的方法[17]，将构建成功的异源基因重组表达质粒转化到感受态宿主表达细胞E.coliBL21(DE3)中，并涂布于30 mg/L氯霉素平板上，37 ℃培养12 h后菌落PCR验证。

(2)重组谷氨酸棒状杆菌的构建

将上述初筛到的2种重组质粒电转到C.glutamicum感受态细胞中，获得4株重组谷氨酸棒状杆菌菌株SNK118/pXMJ19-CagapC、SNK118/pXMJ19-CsgapC、SNK118 ΔargFΔargR/pXMJ19-CagapC、SNK118ΔargFΔargR/pXMJ19-CsgapC。谷氨酸棒杆菌电转方法与感受态制备见REST的方法[18]。

1.2.4 基因敲除菌SNK118ΔargRΔargF的构建

将成功构建的基因敲除质粒电转至C.glutamicumSNK118感受态细胞中，均匀涂布于含卡那霉素平板，30 ℃静置培养3～4 d，培养过程中Cpf1会对crRNA进行加工，成熟的crRNA会引导Cpf1结合到DNA的特异性位点上,对目标基因进行切割，在菌体内重组酶的作用下，通过同源重组将基因argF、argR进行敲除，培养结束后菌落PCR验证筛选出成功敲除的突变株。对成功敲除的突变株划线于无抗平板，34 ℃培养16 h以消除pJYS3_ΔargFΔargR。

1.2.5 GAPDH酶活力的测定

在30 ℃条件下，通过分光光度法测量340 nm波长下NADP(或NAD+)还原的吸光值变化来计算GAPDH活力[19]。标准反应混合物含有300 μL 100 mmol/L Tris-HCl(pH 8.5)，60 μL 10 mmol/L H3PO4，60 μL 10 mmol/L NADP+(或NAD+)，60 μL 10 mmol/L甘油醛3-磷酸，50 μL的β-巯基乙醇和70 μL粗酶液。通过添加细胞破碎粗酶液引发催化反应。1单位GAPDH活力定义为在上述条件下1 min内还原1 μmol NAD(或NADP+)所需的酶量。

使用牛血清蛋白标准液，通过Bradford方法计算蛋白质浓度,按公式(1)计算：

(1)

1.2.6 胞内辅酶水平的测定

30 ℃培养46 h后收获菌体细胞，并洗涤2次。使用NADP+/NADPH试剂盒(BioAssay Systems，Hayward，CA)抽提并测定胞内NADPH/NADP+的辅酶参数。

1.2.7 菌体浓度、氨基酸浓度、葡萄糖浓度的测定

菌体浓度的测定：取一定量的菌液用0.2 mol/L盐酸稀释50～100倍后，用分光光度计在660 nm波长下测定吸光值。

氨基酸浓度测定：采用高效液相色谱(high performance liquid chromatography, HPLC)分析仪进行邻苯二甲醛(O-phthalaldehyde,OPA)在线衍生化法测定[20]。

葡萄糖浓度的测定：发酵上清液稀释100倍，采用SBA-40C生物传感器分析仪进行测定。

2 结果与分析

2.1 NADP+依赖型的GAPDH的克隆与表达筛选

在NCBI数据库中，通过BLAST搜索，选择不同梭菌的3个编码NADP+依赖型的GAPDH基因：CagapC、CbgapC、CsgapC。将这3个基因克隆到穿梭载体pXMJ19中，并在大肠杆菌BL21(DE3)中诱导表达。之后测定细胞提取物中重组GAPDH的比活力，如表3所示。

表3 重组GAPDH在E. coli和C. glutamicum的酶活力

结果显示,重组CaGapC和CsGapC在30 ℃下的比活力分别为2 000 mU/mg和5 263 mU/mg，而CbGapC没有显示出催化活性。基于以上结果，将重组质粒pXMJ19-CagapC、pXMJ19-CsgapC分别转入SNK118菌株，评估这2个重组酶在谷氨酸棒杆菌中合成NADPH的催化活性。据报道，丙酮丁醇梭菌来源的编码NADP+依赖型GAPDH的gapC的表达改善了谷氨酸棒杆菌胞内NADPH的供应[21]。然而，在甘油醛-3-磷酸和NADP+作为底物时，只有CsGapC显示出77 mU/mg的酶活力(表3)，表明CsGapC具有催化3-磷酸甘油醛生成3-磷酸甘油酸的活性，同时可以为C.glutamicumSNK118提供额外的NADPH来源。

2.2 重组菌发酵产L-精氨酸性能评价

将重组菌LA4(SNK118/pXMJ19-CsgapC)与对照菌LA1(SNK118/pXMJ19)的种子液接种于发酵培养基中进行发酵，考察CsgapC的重组表达对谷氨酸棒杆菌产L-精氨酸的影响。结果如图4所示，发酵过程中菌浓并无明显差异。在40 h时重组菌LA4的L-精氨酸浓度超过对照菌LA1；最终发酵至70 h，LA4的L-精氨酸产量为11.55 g/L，较LA1(9.17 g/L)对照菌株L-精氨酸产量提高了26%，糖酸转化率提高了10%(见表4)，说明CsgapC的表达能有效提高谷氨酸棒杆菌产L-精氨酸的能力。同时，通过测定对数生长期时胞内NADPH/NADP+参数，发现重组菌LA4中的NADPH/NADP+比值为0.31，显著高于对照菌LA1(0.21)，说明重组菌LA4的胞内NADPH水平得到了提高。KABUS等[22]和ZHAN等[12]在谷氨酸棒杆菌中异源表达烟酰胺核苷酸转氢酶PntAB催化NADP+生成NADPH，分别提高了L-赖氨酸和L-精氨酸产量。YAMAMOTO等[23]在谷氨酸棒杆菌中过表达GAPDH编码基因，增加了从3-磷酸甘油醛到1,3-二磷酸甘油酸代谢流的流量，从而提高了L-丙氨酸产量。因此，L-精氨酸积累量的提高可能是糖酵解途径代谢流的增加和胞内NADPH水平的提高共同作用的结果。

图4 对照菌LA1(SNK118/pXMJ19)和重组菌LA4(SNK118/pXMJ19-CsgapC)发酵产L-精氨酸的比较

Fig.4 Fermentative production of L-arginine by SNK118/ pXMJ19 and SNK118/pXMJ19-CsgapC

2.3 构建L-鸟氨酸生产菌株SNK118ΔargFΔargR

L-鸟氨酸是L-精氨酸合成的中间代谢产物。C.glutamicumSNK118可用作合成L-鸟氨酸代谢改造的出发菌株。将菌落PCR验证成功敲除argF和argR的C.glutamicumSNK118ΔargFΔargR进行L-鸟氨酸摇瓶发酵，结果如图5所示。经过68 h的发酵，菌株LO1(SNK118ΔargFΔargR)的L-鸟氨酸产量达到22.3 g/L，L-精氨酸产量为0.14 g/L。对照菌株LR1(SNK118ΔargR)L-鸟氨酸产量仅为0.23 g/L，而L-精氨酸积累了8.62 g/L。说明敲除编码鸟氨酸氨基甲酰基转移酶的基因argF可以阻断L-鸟氨酸降解为L-瓜氨酸和L-精氨酸，从而有效积累L-鸟氨酸。此外，argF与精氨酸操纵子阻遏蛋白基因argR在基因组上毗邻，可同时被敲除，以解除反馈抑制。

图5 SNK118ΔargR与SNK118ΔargFΔargR的L-鸟氨酸和L-精氨酸产量的比较

Fig.5 Production of L-arginine and L-ornithine by SNK118ΔargR and SNK118ΔargFΔargR

2.4 重组菌发酵产L-鸟氨酸性能评价

NADPH的供给被认为是L-精氨酸、L-瓜氨酸和L-鸟氨酸等氨基酸合成的至关重要因素[9]。GAPDH是糖酵解途径中的关键酶，其催化的反应是糖酵解途径的限速步骤[11]。因此，为了评估CsgapC的表达对发酵生产L-鸟氨酸的影响，构建了重组菌株LO3(SNK118ΔargFΔargR/pXMJ19-CsgapC)和空白对照菌株LO2(SNK118ΔargFΔargR/pXMJ19)。在L-鸟氨酸发酵培养基中比较了菌株LO2和LO3的发酵性能。结果如图6所示，发酵30 h后重组菌LO3的L-鸟氨酸产量高于对照菌LO2。发酵70 h后对照菌株LO2的L-鸟氨酸产量为23.11 g/L，糖酸转化率为0.237 g/g葡萄糖。LO3的L-鸟氨酸产量为27.76 g/L，糖酸转化率为0.274 g/g葡萄糖(表4)，较对照菌株LO2分别提高了20.1%和15.6%。在细胞生长方面，菌株LO2和LO3相差不大，最终OD660均达到41。同时重组菌LO3胞内NADPH/NADP+比值较对照菌株LO2提高了60%。说明重组表达NADP+依赖型的GAPDH基因CsgapC可提高辅酶NADPH的含量，增强糖酵解途径的代谢流量，从而提高重组谷氨酸棒杆菌的L-鸟氨酸产量。

图6 菌株LO2(SNK118ΔargFΔargR/pXMJ19)和LO3(SNK118ΔargFΔargR/pXMJ19-CsgapC)发酵产L-鸟氨酸的比较

Fig.6 Fermentative production of L-ornithine by SNK118 ΔargFΔargR/pXMJ19 and SNK118ΔargFΔargR/ pXMJ19-CsgapC

在L-鸟氨酸生产菌SNK118ΔargFΔargR中，L-鸟氨酸产量可达22.3 g/L(168.7 mmol/L)，在L-精氨酸生产菌SNK118ΔargR中，L-精氨酸产量为8.62 g/L(49.5 mmol/L)，可以推断在C.glutamicumSNK118中，L-精氨酸合成途径中由ArgF、ArgG、和ArgH组成的代谢途径是限制步骤，后续研究在以上的基础上围绕提高ArgG和ArgH的酶活力来提高L-精氨酸的产量。

表4 谷氨酸棒状杆菌生产L-精氨酸、L-鸟氨酸的发酵参数

3 结论

本文以C.glutamicumSNK118为出发菌株，考察了糖丁基梭菌来源的NADP+依赖型的GAPDH基因CsgapC的表达对发酵产L-精氨酸和L-鸟氨酸的影响。重组菌SNK118/pXMJ19-CsgapC的L-精氨酸产量比对照菌株SNK118/pXMJ19提高了26%，糖酸转化率提高了10%。采用CRISPR-Cpf1基因编辑工具成功敲除了SNK118的基因argF和argR，构建了L-鸟氨酸生产菌株SNK118ΔargFΔargR，有效实现了L-鸟氨酸的积累，产量可达22.3 g/L。进一步将糖丁基梭菌来源的CsgapC引入SNK118ΔargFΔargR得到重组菌LO3，评估了CsgapC的重组表达对谷氨酸棒杆菌产L-鸟氨酸的影响。与对照菌相比，重组菌LO3的L-鸟氨酸产量为27.76 g/L，糖酸转化率为0.274 g/g，较对照菌株LO2分别提高了20.1%和15.6%。说明重组表达梭菌来源的NADP+依赖型的GAPDH编码基因可增强糖酵解途径的代谢流量，并提高胞内NADPH的含量，从而提高L-精氨酸和L-鸟氨酸的产量。本文首次报道了通过异源表达糖丁基梭菌来源的CsgapC改造策略实现谷氨酸棒状杆菌更高效合成L-精氨酸及L-鸟氨酸，也为提高其他氨基酸产量提供了依据。