猪源抗菌肽PR-39的抗菌性能及其热稳定性的测定
2019-08-19付雪丽刘凯迪王浩杰刘保国李月涛胡建和
付雪丽 田 奎 刘凯迪 王浩杰 刘保国 李月涛 胡建和
(河南科技学院,河南新乡 453003)
抗菌肽(AMPs)是生物体内经诱导产生的一种具有生物活性的小分子多肽。天然生物抗菌肽抗菌谱相对较为广泛,在特性上表现出突出的水溶性、热稳定性,在高等动物正常细胞环境中,不存在毒害性,且不易产生耐药性。据统计,在各种动物组织中发现具备抗菌特性的多肽、蛋白质种类已超出千种,且有70余种的结构已被测定。猪源抗菌肽PR-39是抗菌肽中的重要一种,它是从猪体内分离得到的抗菌肽,具有良好的抑菌效果。本试验通过对抗菌肽的最小抑菌浓度进行测定,检测耐热性等,为该类产品应用于畜牧科研领域提供一定的数据与资料。
1 材料与方法
1.1 材料
试验用的抗菌肽PR-39通过质谱鉴定,其纯度指标超出了98%,系上海吉尔生化企业生产产品。在本分析中,选用的鼠伤寒沙门氏菌CVCC541、金黄色葡萄球菌(923)鼠 伤均购自中国兽医药品监察所。①液体培养基:MH液体培养基200ml高压灭菌20min,121℃②固体培养基:LB固体培养基每100ml需加胰蛋白胨10g,酵母提取物5g,氯化钠10g,另加琼脂粉1.5g(高压灭菌20min,121℃,备用)。
1.2 方法
1.2.1 产品配制
选取一定量的抗菌肽产品,要求使用无菌蒸馏水进行配置,配置溶液的标准浓度为1、2mg/ml。
1.2.2 抗菌肽产品抗菌活性的测定
(1)双层琼扩法测定抑菌活性
在这里应用的是LB固体培养基,即一般的琼脂培养基,进行4h时间的活化培养,然后对菌液浓度进行稀释处理,处理标准要求达到106~107CFU/ml。然后对活化后的细菌进行两次离心来达到纯化的目的。吸取纯化后的菌液于装有LB固体培养基中(此时为液体状态,温度大约50℃左右),每100ml培养基中加入334μl的菌液。将培养基倒入琼脂板中,等待凝固后进行打孔,每个板打三个孔,分别注入20μl浓度为2mg/mL的抗菌肽、20μl相同浓度的氨苄霉素、20μl的水(阴性对照)。将平板放入培养箱内,温度设定为37℃,在培养24h后对小孔周围作仔细观察,记录是否出现菌圈与菌圈具体的规模。
(2)最小抑菌浓度的测定(MIC测定)
将细菌在LB固体培养基平板上进行划线培养,然后放37℃恒温培养16-18h左右。挑取菌落接种到5mlMH液体培养基中,放摇床上,37℃,180rmp/min,大约摇12h左右。吸取100μl菌液于4.5mlMH液体培养基继续放在摇床上,180rmp/min摇4h活化(此时菌液浓度为108CFU/ml)。然后用MH液体培养基将上述菌悬液以1:1000比例进行稀释,使菌液浓度达到105.CFU/ml。向96孔板每孔中分别加入100μl混匀后的MH菌悬液至第11排。吸取100μl浓度为1mg/ml的抗菌肽溶液添加到第一个孔中,反复吹打均匀,尽量不要有气泡,(枪头最好在液面以下吹打),然后从第一个孔中吸取100μL液体至第二个孔中,吹打均匀,以此类推,重复此操作至第10孔,吸取100μl液体弃去,此时每孔中的抗菌肽浓度分别为:2-1、2-2、2-3、2-4、2-5、2-6、2-7、2-8、2-9、2-10、单位:mg/ml)。第11孔中不加抗菌肽,作阴性对照。第12孔中加入50μl浓度为1mg/ml的抗菌肽溶液与50μl的空白MH培养基,作阳性对照。将96孔板盖上盖子置于恒温培养箱中培养,培养温度设定为37℃,时间控制在16~18h范围内,对细菌最小抑制浓度进行分析与记录。
1.2.3 抗菌肽产品热稳定性的测定
完成各种浓度药液配置之后,将溶液置于99.2℃的沸水环境中进行水浴,水浴时间分别设定为5、10、20、30min,然后分别记录其对鼠伤寒沙门氏菌所表现出的抑制效果。
2 结果与分析
2.1 抗菌肽抗菌活性的测定
2.1.1 抗菌肽的抗菌活性效果
经过仔细对比,同浓度下抗菌肽PR-39的抑菌圈的直径长度发现,如图1所示,图(a)直径长度约11mm,图(b)直径长度约为12.6mm,图(c)直径长度约为14.6mm,说明抗菌肽PR-39的抑菌效果确实明显。金黄色葡萄球菌加入抗菌肽PR-39的抑菌效果如图2所示。
图1 鼠伤寒沙门氏菌标准菌株
图2 金黄色葡萄球菌标准菌株
鼠伤寒沙门氏菌和金黄色葡萄球菌加入抗菌肽(A表示2mg/ml的氨苄霉素,P表示2mg/ml抗菌肽产品PR-39,水是阴性对照)
2.1.2 PR-39最小抑菌浓度的测定
采用2-10~2-1mg/ml10个浓度梯度,运用二倍稀释法,结果发现第1~5孔中的菌液变得清澈透明,第6~11孔中菌液浑浊,所以鼠伤寒沙门氏菌的最小抑菌浓度为2-5mg/mL,试验结果如图3。
图3 最小抑菌浓度测定试验
2.2 抗菌肽产品热稳定性的测定
完成各种浓度药液配置之后,将溶液置于99.2℃的沸水环境中进行水浴,水浴时间分别设定为5、10、15、20、30min,然后分别记录其对鼠伤寒沙门氏菌所表现出的抑制效果。具体可以观看图4。分析了解到,水浴分别为5、10、15min时,抗菌肽所表现出的抗菌效果是较为突出的,抑菌圈相对偏大。而在水浴20、30min时,虽仍存在有抑菌圈,但很明显抑菌圈变小。这意味着,抗菌肽产品在高温条件下仍可以发挥作用,但随时间增加,其对鼠伤寒沙门氏菌的抑制性能有所减弱。
图4 不同温度对抗菌肽产品抗菌活性的影响
3 讨论
3.1 抗菌肽产品抗菌性能和最小抑菌浓度
依据试验观察可知,该抗菌肽产品具备相当好的抗菌性能,对鼠伤寒沙门氏菌表现出十分优秀的抑制性能,而对于金黄色葡萄球菌而言,其抑菌圈并不显著,这也表明,这两种细菌对抗菌肽产品的敏感性是存在着明显差异的。本次试验是用双层琼扩法测出抗菌肽PR-39在浓度为2mg/ml时对金黄色葡萄球菌和鼠伤寒沙门氏菌都具有抑菌性,但对鼠伤寒沙门氏菌的抑制效果较好。随后以鼠伤寒沙门氏菌为试验菌做抗菌肽PR-39最小抑菌浓度测定,试验结果最小抑制浓度表现为10-5mg/ml。在对多种指标进行全面考虑的基础上,可以将10-5mg/ml界定为最佳浓度。该浓度标准不仅可以降低抗菌肽产品的应用量,还可以有效保障抗菌效果达到预期。彭荣在分析过程中,通过粉纹夜蛾离体细胞对抗菌肽性能作了进一步分析,其试验发现,这类抗菌肽的抗微生物活性相对较广,抑菌活性较为突出,尤其是针对植物病原真菌中的小麦赤霉病菌、花生白绢病菌,革兰氏阴性菌中的大肠杆菌、沙门氏菌,酵母菌的白色念珠茵等作用突出。在这些抑菌活性中,效果最佳的是白色念珠菌、大肠杆菌,其次则是金黄色普通球菌,其他菌种效果偏弱。在2008年,刘慧明等人针对鲎抗菌肽作了深入的试验与分析,发现其对枯草杆菌、隐球菌有着十分突出的抑制作用,但分析也发现,该类抗菌肽对于变形杆菌没有作用。此外,更多的分析与大量的数据也表明,抗菌肽种类不同,在实际应用中的抗菌性能也表现出一定的差异,且所对应的最小抑制浓度也并不一致。从抗菌机理的视角来阐释,即抗菌肽可以对细菌质膜结构作出改变或破坏,继而引起膜穿孔,从而生成溶质通道或离子,促使细胞内容物大量渗出,继而让细菌失去活性并死亡,也可以对细菌的呼吸进行抑制,或阻碍细菌蛋白质的合成等。
3.2 温度对抗菌肽产品抑菌活性的影响
许兵红等在深入分析之后了解到,对于果丝光绿蝇幼虫,选择应用针刺诱导的方式获得抗菌肽,然后在100℃沸水中进行一分钟水浴,此时其仍存在着良好的抗菌活性,但在水浴持续三分钟时间后,其活性会丧失。如选择在80℃与60℃水温中进行水浴,持续五分钟后仍存在着抗菌活性。这也表明,该类抗菌肽抑菌活性存在着一定热稳定性,温度不同,热稳定性也存在着变化。针对稻蝗抗菌肽、乳酪蛋白来源抗菌肽也做了相应的分析,发现温度过高,也会导致其抑菌效果下降。在本分析中使用的抗菌肽PR-39,通过高温处理仍存在着较好作用,表明其热稳定性较为优秀。在100℃沸水中进行水浴,持续30min依然对鼠伤寒沙门氏菌表现出突出的抑制性能,但超出30min后,其抗菌圈已是十分小,且周围分布有细菌,这也意味着其抗菌性逐渐丧失,这些研究成果与以上学者分析结果一致。
3.3 抗菌肽PR-39的抗菌机理
对于细菌本身而言,其存在着细胞壁与细胞膜,这也会对抗菌肽构成抵抗力,细胞中的脂多糖在抵抗抗菌肽中发挥着突出作用,为此,在应用中需要思考采取一定的方法,将革兰氏阴性菌脂多糖净负电荷减少,这样便可以降低脂多糖的抵抗作用。抗菌肽抗菌机理的分析较多,主要表现为:其一,对细菌呼吸作用进行抑制处理,继而引起线粒体空泡化、肿胀与排列不规则,导致核膜缺乏界限,引起细胞内容物流出;其二,对细胞壁合成进行抑制,即抑制细胞正常生长,促使细胞壁穿孔,继而让细胞死亡,但这种方式对已存在的细胞壁不发挥作用[10];其三,穿模,即对细胞内结构或膜进行破坏;其四,对蛋白质合成进行抑制,即降低蛋白质合成,抑制细胞正常生长。几乎所有的抗菌肽都是阳离子型,大多具有α螺旋和/或两亲β折迭结构。由于PR-39杀死正在生长的细菌比处于非生长状态的细菌要快的多,所以PA-39的杀菌机理可能是通过阻断细菌蛋白质和DNA的合成而杀灭细菌。因抗菌肽分子α-2螺旋存在着两亲性特征,为此,在抗菌肽分子聚合的过程中,会生成一定的离子通道,继而引起阳离子向外流动,从而让细菌防护丧失,无法维持正常的渗透压,从而促使细菌死亡。
4 结论
通过一系列的试验与分析可知,抗菌肽PR-39特性主要表现为:①抗菌性能显著,特别是对鼠伤寒沙门氏菌,有着优秀的灭杀效果,对于金黄色葡萄球菌也存在着一定的抑制性,对鼠伤寒沙门氏菌的最低抑菌浓度为10-5mg/ml。②热稳定性较为突出,在高温环境中持续5~15min时,其抗菌活性仍较为显著,但随时间延长,活性会逐渐下降并最终丧失。